Candida krusei
Candida krusei, eine anamorphe Form von Issatchenkia orientalis, ist ein diploider Hefepilz, der ubiquitär verbreitet ist und in Wein, Bier, Konfitüre, Fleisch, Joghurt, Obstsäften und Zucker, aber auch im Boden und im Abwasser gefunden wurde (Do Carmo-Sousa, 1969). Er ist als Erreger von Candidosen und Candidämien (systemischer Befall innerer Organe über die Blutbahn) bekannt und wird auch vereinzelt industriell verwendet. Durch C. krusei verursachte Candidämien, Endophthalmitis (McQuillen, 1992), Endokarditis (Rubinstein, 1975) und Arthritis (Ngyuen und Penn, 1987) treten vor allem bei immunsupprimierten Patienten wie Krebs- und AIDS-Patienten, Transplantat-Empfängern sowie Diabetikern, Drogensüchtigen und Patienten mit hämatologischen Malignomen auf. C. krusei. kann bei immunkompetenten Personen Windeldermatitiden, Haut- und Nagelmykosen, Vaginalsoor (Singh u. a., 2002) und Infektionen der Mundhöhle bei Gebissträgern (Holmstrup, 1999) auslösen. 2018 wurde die industriell verwendete Species Pichia kudriavzevii als identisch mit Candida krusei (syn. C. glycerinogenes und Issatchenkia orientalis) festgestellt.

Merkmale 
Die Hefezellen sind ellipsoid bis zylindrisch und 4–5 × 2–5 µm groß. Auf Sabouraud-Agar bilden sich bei 37 °C cremefarbene, raue Kolonien mit einem Pseudomycel.

Industrielle Anwendung 
Kakaobohnen müssen bei der Schokoladenproduktion, zwecks Beseitigung des bitteren Geschmacks und um bestimmte Inhaltsstoffe aufzuschließen, fermentiert werden. Dieses findet mit zwei Pilzen statt, C. krusei und Geotrichum candidum, die meistens bereits auf den Samen anwesend sind. Die Hefezellen produzieren Enzyme, die das Fruchtfleisch der Kakaofrucht (die Pulpe) zersetzen. Dabei wird Essigsäure gebildet, wobei sich ein Schokoladenaroma entwickelt und die Bitterkeit in den Bohnen beseitigt wird.

C. krusei eignet sich ebenfalls zur Verbesserung der Reifung von Harzer Käse, zur Entsäuerung von Sauermilchkäse und zur Unterstützung der Produktion von Bäckerhefe. C. krusei produziert Ethanol ohne Erzeugung von Bernsteinsäure, ein Vorteil bei der Gewinnung von Ethanol.
Seine thermische Toleranz weist auf weitere Verwendbarkeit bei industriellen Anwendungen hin.

Diagnose 
Zum Nachweis von C. krusei bieten sich mehrere Methoden an:

 Nachweis aus Abstrichen und deren mikroskopische Untersuchung
 Nachweis aus Sputum
 Blutuntersuchung per Antikörper bzw. der Leukozyten
 Kultur auf Sabouraud-Agar: weiße bis cremefarbene Kolonie mit faltigen Verwerfungen, unregelmäßige Kolonieränder, zusätzlich ein Pilz-Antibiogramm
 Antigen-Test, der bei systemischer Infektion keine Aussage hat
 Feine Längsstreifen im Fingernagel bei Nagelmykose
 Polymerase-Kettenreaktion (PCR)

Gentechnik 
Die typische Pilz-Enolase-Gen codierende Sequenz ist 1.300 bp lang und codiert für ein 440 Aminosäuren umfassendes Polypeptid. Unter Ausschluss der Primersequenzen enthielt das amplifizierte PCR-Produkt 1264 bp der C. krusei Enolase Gen-Sequenz, von der eine 353 Aminosäuresequenz abgeleitet wurde. Dies entspricht 92 % der gesamten C. krusei Gen-Sequenz. Das C. krusei Enolase-Gen ist durch Introns unterbrochen. Eine derartige Unterbrechung des Enolase-Gens durch ein Intron wurde erstmals in Neocallimastix frontalis erwähnt.

Behandlung 
C. krusei weist eine höhere Resistenz gegen Fluconazol und Itraconazol als andere Candida-Arten auf.
Er wird sehr oft bei Patienten gefunden, die bereits mit Fluconazol therapiert wurden, was die Diskussion einer prophylaktischen Verwendung von Fluconazol entfachte.

C. krusei ist aber empfindlich gegen Voriconazol, Amphotericin B, Miconazol und Pilzmittel wie die Echinocandine Micafungin, Caspofungin und Anidulafungin sowie das Polyen Nystatin. In der Zahnmedizin ist nach neusten Forschungen Chitosan wirksam.

Die Sterblichkeitsrate bei C. krusei ist sehr viel höher als bei Candida albicans.
Weitere Candida-Arten dieser Kategorie sind: Candida parapsilosis, Candida glabrata, Candida tropicalis, Candida guillermondii und Candida rugosa.

Einzelnachweise

Literatur 
 M. A. Pfaller: Candida krusei. a multidrug-resistant opportunistic fungal pathogen: geographic and temporal trends from the ARTEMIS DISK Antifungal Surveillance Program, 2001 to 2005. In: J Clin Microbiol. 46(2), Feb 2008, S. 515–521.
 S. D. Rao, S. Wavare, S. Patil: Onycholysis caused by Candida krusei. In: Indian J. Med Microbiol. 22(4), 2004, S. 258–259.
 E. G. Evans: Resistance of Candida species to antifungal agents used in the treatment of onychomycosis: a review of current problems. In: Br J. Dermatol. 141 Suppl 56, 1999, S. 33–35.
 E. Rubinstein, E. R. Noriega, M. S. Simberkoff, R. Holzman, J. J. Rahal: Fungal endocarditis: analysis of 24 cases and review of the literature. In: Medicine. 54, 1975, S. 331–334.
 Werner Mendling: Vaginose, Vaginitis, Zervizitis und Salpingitis. Springer, Berlin 10/2006, S. 77: Candida krusei ist die nichtsexuelle, anamorphe Form von Issatchenkia orientalis.
 W. G. Merz u. a.: Increased incidence of fungemia caused by Candida crusei. In: J Clin Micro. 24, 1986, S. 581.

Weblinks 
 Onycholysis caused by Candida Krusei (PDF; 3,4 MB)
 Antifungal activities of selected Venda medicinal plants (PDF; 163 kB)
 
 Candida krusei fungemia in an immunocompromised patient
 Characterization of sequence and structural features of the Candida krusei enolase

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