Avis juridique important

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31985L0490

Quatrième directive 85/490/CEE de la Commission du 11 octobre 1985 concernant le rapprochement des législations des États membres relatives aux méthodes d'analyse nécessaires au contrôle de la composition des produits cosmétiques

Journal officiel n° L 295 du 07/11/1985 p. 0030 - 0045 édition spéciale finnoise: chapitre 13 tome 14 p. 0192  édition spéciale espagnole: chapitre 15 tome 6 p. 0115  édition spéciale suédoise: chapitre 13 tome 14 p. 0192  édition spéciale portugaise: chapitre 15 tome 6 p. 0115

*****QUATRIÈME  DIRECTIVE DE LA COMMISSION  du 11 octobre 1985  concernant le rapprochement des législations des États membres relatives aux méthodes d'analyse nécessaires au contrôle de la composition des produits cosmétiques  (85/490/CEE)  LA COMMISSION DES COMMUNAUTÉS  EUROPÉENNES,  vu le traité instituant la Communauté économique européenne,  vu la directive 76/768/CEE du Conseil, du 27 juillet 1976, concernant le rapprochement des législations des États membres relatives aux produits cosmétiques (1), modifiée en dernier lieu par la directive 85/391/CEE (2), et notamment son article 8 paragraphe 1,  considérant que la directive 76/768/CEE prévoit des contrôles officiels des produits cosmétiques visant à constater que les conditions prévues par les dispositions communautaires concernant la composition des produits cosmétiques sont respectées;  considérant qu'il convient d'établir le plus rapidement possible toutes les méthodes d'analyse nécessaires et que, trois étapes pour atteindre ce but ayant été réalisées par la fixation de certaines méthodes dans les directives 80/1335/CEE (3), 82/434/CEE (4) et 83/514/CEE (5) de la Commission, la fixation des méthodes d'identification et de dosage du 1-(4-aminobenzoate) de glycérol, de dosage du chlorobutanol, d'identification et de dosage de la quinine, d'identification et de dosage des sulfites inorganiques et bisulfites inorganiques, d'identification et de dosage des chlorates de métaux alcalins, d'identification et de dosage de l'iodate sodique constituent une quatrième étape;  considérant que les mesures prévues à la présente directive sont conformes à l'avis du comité pour l'adaptation au progrès technique de la directive 76/768/CEE,  A ARRÊTÉ LA PRÉSENTE DIRECTIVE:  Article premier  Les États membres prennent toutes les mesures utiles pour que, lors des contrôles officiels des produits cosmétiques:  - l'identification et le dosage du 1-(4-aminobenzoate) de glycérol,  - le dosage du chlorobutanol,  - l'identification et le dosage de la quinine,  - l'identification et le dosage des sulfites inorganiques et bisulfites inorganiques,  - l'identification et le dosage des chlorates de métaux alcalins,  - l'identification et le dosage de l'iodate sodique  soient effectués selon les méthodes décrites à l'annexe.  Article 2  Les États membres mettent en vigueur les dispositions législatives, réglementaires ou administratives nécessaires pour se conformer aux dispositions de la présente directive, au plus tard le 31 décembre 1986.  Ils en informent immédiatement la Commission.  Article 3  Les États membres sont destinataires de la présente directive.  Fait à Bruxelles, le 11 octobre 1985.  Par la Commission  Stanley CLINTON DAVIS  Membre de la Commission  ANNEXE  IDENTIFICATION ET DOSAGE DU 1-(4-AMINOBENZOATE) DE GLYCÉROL  A. IDENTIFICATION  1.2 // 1.   // OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //   // Cette méthode est destinée à mettre en évidence le 1-(4-aminobenzoate) de glycérol ou 4-aminobenzoate d'a -monoglycéryle. Elle permet également d'identifier le 4-aminobenzoate d'éthyle (benzocaïne DCI) éventuellement présent comme impureté.   // 2.   // PRINCIPE   //  // L'identification se fait par chromatographie sur couche mince de silicagel avec indicateur fluorescent et mise en évidence de la fonction amine primaire libre par formation sur la plaque d'un colorant diazoïque.   // 3.   // RÉACTIFS   //  // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.  // 3.1.   // Mélange solvant: cyclohexane/isopropanol/dichlorométhane stabilisé: 48/64/9 (v/v/v).   // 3.2.   // Solvant de développement: éther de pétrole/benzène/acétone ammoniaque (minimum 25 % NH3): 35/35/35/1 (v/v/v/v).   // 3.3.   // Révélateur: solution a): nitrite de sodium: 1,0 g dans 100 ml HCl 1 M, à préparer extemporanément,  //  // solution b): 2-naphtol: 0,2 g dans 100 ml KOH 1 M.  // 3.4.   // Solutions étalons:   //   // - 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle: 0,050 g dans 100 ml du mélange solvant (3.1),   //   // - 4-aminobenzoate d'éthyle: 0,050 g dans 100 ml du mélange solvant (3.1).   // 3.5.  // Plaque de silicagel 60 F254 d'épaisseur 0,25 mm et du format 20 × 20 cm.   // 4.   // APPAREILLAGE   // 4.1.  // Équipement courant de chromatographie sur couche mince.  // 4.2.   // Appareil vibreur à ultra-sons.   // 4.3.  // Filtre Millipore FH 0,5 mm ou équivalent.   // 5.   // MODE OPÉRATOIRE   // 5.1.   // Préparation de l'échantillon   //  // Peser 1,5 g d'échantillon dans une fiole jaugée bouchée à l'émeri de 10 ml. Porter à 10 ml avec le mélange solvant (3.1). Boucher et laisser pendant 1 heure à température ambiante dans un appareil vibreur à ultra-sons (4.2). Filtrer sur filtre millipore (4.3). Utiliser le filtrat pour la chromatographie.  // 5.2.   // Chromatographie sur couche mince   //  // Déposer sur la plaque (3.5) 10 ml du filtrat 5.1 et 10 ml de chaque solution étalon (3.4). Développer le chromatogramme sur 15 cm dans une cuve préalablement saturée avec le solvant (3.2). Laisser sécher à la température ambiante.   // 5.3.  // Révélation   // 5.3.1.   // Observer la plaque sous ultraviolets à 254 nm.   // 5.3.2.   // Sur la plaque parfaitement sèche, vaporiser la solution (3.3 a).   //  // Laisser sécher à la température ambiante pendant 1 mn et vaporiser immédiatement la solution (3.3 b).   //   // Sécher la plaque à l'étuve à 60 °C. Les tâches apparaissent colorées en orange avec les Rf suivants: 4-aminobenzoate d'a -monoglycéryle: 0,07; 4-aminobenzoate d'éthyle: 0,55.  B. DOSAGE  1.2 // 1.   // OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //   // Cette méthode décrit le dosage du 1-(4-aminobenzoate) de glycérol (4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle). Elle permet également le dosage du 4-aminobenzoate d'éthyle. Elle convient pour doser au maximum 5 % (m/m) de 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle et 1 % (m/m) de 4-aminobenzoate d'éthyle.   // 2.   // DÉFINITION  //   // La teneur en 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle et en 4-aminobenzoate d'éthyle mesurée par cette méthode est exprimée en pourcentage de masse (% m/m) du produit.   // 3.  // PRINCIPE   //   // Le produit à analyser est mis en suspension dans du méthanol et, après traitement approprié, le dosage est effectué par chromatographie liquide à haute pression (CLHP).   // 4.   // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique et, notamment, convenir pour la chromatographie liquide à haute pression.  // 4.1.   // Méthanol.   // 4.2.  // Dihydrogénoorthophosphate de potassium KH2PO4   // 4.3.  // Di(acétate) de zinc Zn(CH3C00)2 ; 2H2O   // 4.4.   // Acide acétique: d 20 4 = 1,05.   // 4.5.   // Hexacyanoferrate de tétrapotassium: K4(Fe(CN)6) ; 3H2O   // 4.6.  // 4-hydroxybenzoate d'éthyle.   // 4.7.   // 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle.   // 4.8.   // 4-aminobenzoate d'éthyle (benzocaïne).   // 4.9.   // Solution tampon (0,02 M): dissoudre 2,72 g de dihydrogénoorthophosphate de potassium (4.2) dans 1 l d'eau.   // 4.10.   // Éluant: solution tampon (4.9) méthanol (4.1): 61/39 (v/v). La composition de cette phase mobile peut être modifiée de telle manière que le facteur de résolution R soit égal ou supérieur à 1,5:  1.2.3.4 //   //  // R = 2   // d'R2 - d'R1 W1 + W2   //   // où:   //   // 1.2.3 //   // R1 et R2   // = temps de rétention exprimé en minute de deux pics,   //   // W1 et W2   // = largeur exprimée en mm des mêmes pics à mi-hauteur,   //   // d'   // = vitesse de déroulement du papier en mm/mn.  1.2 // 4.11.  // Solution-mère de 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle: peser exactement environ 40 mg de 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle. Les introduire dans une fiole jaugée de 100 ml. Dissoudre dans 40 ml de méthanol (4.1). Compléter jusqu'au trait avec la solution tampon (4.9) et mélanger.   // 4.12.  // Solution-mère de 4-aminobenzoate d'éthyle: peser exactement environ 40 mg de 4-aminobenzoate d'éthyle. Les introduire dans une fiole jaugée de 100 ml. Dissoudre dans 40 ml de méthanol (4.1). Compléter jusqu'au trait avec la solution tampon (4.9) et mélanger.   // 4.13.   // Solution étalon interne: peser exactement environ 50 mg de 4-hydroxybenzoate d'éthyle (4.6), les dissoudre par 40 ml de méthanol (4.1). Introduire la solution dans une fiole jaugée de 100 ml, compléter jusqu'au trait avec la solution tampon (4.9) et mélanger.   // 4.14.  // Solutions étalons: par dissolution dans 100 ml d'éluant (4.10), préparer quatre solutions étalons selon le tableau suivant:  1.2,3.4,5.6,7 //    //   //   //   // Solution étalon  // 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle  // 4-aminobenzoate d'éthyle  // 4-hydroxybenzoate d'éthyle  //  //  // 1.2.3.4.5.6.7 //  // ml (4.11)   // mg/ml (*)  // ml (4.12)   // mg/ml (*)   // ml (4.13)   // mg/ml (*)  //    //   //   //   //   //   //   // I   // 2   // 8   // 2  // 8   // 10   // 50   // II   // 4   // 16   // 3   // 12  // 10   // 50   // III   // 6   // 24   // 4   // 16   // 10  // 50   // IV   // 10   // 40   // 5   // 20   // 10   // 50  //    //   //   //   //   //   //  1.2 //   // (*) Ces valeurs sont données à titre indicatif et correspondent à une pesée exacte des solutions 4.11, 4.12 et 4.13.   //   // Note: Ces solutions peuvent être obtenues de façon différente.   //  //   // 4.15   // Solution de Carrez I: dissoudre 26,5 g de hexacyanoferrate de tétrapotassium (4.5) dans l'eau et compléter à 250 ml.   // 4.16   // Solution de Carrez II: dissoudre 54,9 g de di(acétate) de zinc (4.3) et 7,5 ml d'acide acétique (4.4) dans l'eau et compléter à 250 ml.   // 4.17  // Lichrosorb RP-18, ou équivalent, de 5 mm.   // 5.  // APPAREILLAGE   // 5.1.   // Matériel courant de laboratoire.   // 5.2.   // Chromatographe en phase liquide, à haute pression avec détecteur ultraviolets, à longueur d'onde variable et chambre thermostatique à 45 °C.   // 5.3.  // Colonne en acier inoxydable: longueur 250 mm, diamètre intérieur 4,6 mm. La colonne est remplie de Lichrosorb RP-18 (4.17).   // 5.4.   // Bain à ultra-sons.   // 6.   // MODE OPÉRATOIRE   // 6.1.   // Préparation de l'échantillon  // 6.1.1.   // Peser exactement environ 1 g d'échantillon dans un bécher de 100 ml et ajouter 10 ml de méthanol (4.1).  // 6.1.2.   // Placer le bécher pendant 20 minutes dans un bain à ultra-sons (5.4). Transvaser quantitativement la suspension ainsi obtenue dans un ballon jaugé de 100 ml avec 75 ml d'éluant (4.10) au maximum. Ajouter successivement 1 ml de solution de Carrez I (4.15) et 1 ml de solution de Carrez II (4.16) en mélangeant après chaque opération. Compléter jusqu'au trait avec l'éluant (4.10), mélanger de nouveau et filtrer sur un filtre plissé.   // 6.1.3.   // Au moyen d'une pipette, introduire, dans une fiole jaugée de 50 ml, 3,0 ml du filtrat obtenu en 6.1.2 et 5,0 ml de la solution étalon interne (4.13). Compléter au trait avec l'éluant (4.10) et mélanger. Utiliser la solution ainsi obtenue pour procéder à l'analyse chromatographique décrite au point 6.2.   // 6.2.  // Chromatographie   // 6.2.1.   // Régler le débit de la phase mobile (4.10) à 1,2 ml/mn et fixer la température de la colonne à 45 °C.   // 6.2.2.   // Régler le détecteur (5.2) sur 274 nm.   // 6.2.3.   // Au moyen d'une microseringue, faire au moins deux injections de 20 ml de la solution (6.1.3) et mesurer la surface des pics.   // 6.3.   // Courbes d'étalonnage   // 6.3.1.   // Injecter 20 ml de chacune des solutions étalons (4.14) et mesurer la surface des pics.  // 6.3.2.   // Pour chaque concentration, calculer le rapport entre la surface du pic de 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle et la surface du pic de l'étalon interne. Tracer la courbe d'étalonnage en plaçant ce rapport en ordonnée et le rapport des masses correspondantes en abscisse.   // 6.3.3.  // Procéder de la même manière pour le 4-aminobenzoate d'éthyle.   // 7.   // CALCUL   // 7.1.   // Sur les courbes d'étalonnage obtenues au point 6.3, lire les rapports de masse RP1 et RP2 correspondant aux rapports entre les surfaces des pics calculés au point 6.2.3 où:   //   // RP1 = rapport des masses de 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle et 4-hydroxybenzoate d'éthyle,  //  // RP2 = rapport des masses de 4-aminobenzoate d'éthyle et 4-hydroxybenzoate d'éthyle.  // 7.2.   // À partir des rapports de masse ainsi obtenus, calculer la teneur en 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle et en 4-aminobenzoate d'éthyle, en pourcentage de masse (% m/m), au moyen des formules:   //   // g % (m/m) 4-aminobenzoate d'a -monoglycéryle = RP 1 × q  6 p   //   // g % (m/m) 4-aminobenzoate d'éthyle = RP 1 × q  6 p   //   // où:   //  // q = quantité en mg de 4-hydroxybenzoate d'éthyle (étalon interne) pesée au point 4.13,   //   // p = quantité en g d'échantillon pesée au point 6.1.1.   // 8.   // RÉPÉTABILITÉ (1)   // 8.1.   // Pour une teneur de 5 % (m/m) en 4-aminobenzoate d'a-monoglycéryle, la différence entre les résultats de deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas dépasser 0,25 %.   // 8.2.   // Pour une teneur de 1 % (m/m) de 4-aminobenzoate d'éthyle, la différence entre les résultats de deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas dépasser 0,10 %.  // 9.   // REMARQUES   // 9.1.   // Avant d'entreprendre l'analyse proprement dite, il convient de déterminer si l'échantillon ne contient pas de composé susceptible de coïncider avec le pic de l'étalon interne (4-aminobenzoate d'éthyle) sur le chromatogramme.   // 9.2.   // Pour vérifier l'absence d'interférences éventuelles, répéter le dosage en modifiant de plus ou moins 10 % la proportion de méthanol dans la phase mobile.  DOSAGE DU CHLOROBUTANOL  1.2 // 1.   // OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //   // La présente méthode convient pour le dosage du chlorobutanol à la concentration maximale de 0,5 % (m/m) pour tous les produits cosmétiques, à l'exception des aérosols.   // 2.  // DÉFINITION   //   // La teneur en chlorobutanol mesurée par cette méthode est exprimée en pourcentage de masse (% m/m) du produit.   // 3.   // PRINCIPE   //   // Après traitement approprié du produit à analyser, le dosage est effectué par chromatographie en phase gazeuse en utilisant le 2,2,2-trichloroéthanol comme étalon interne.   // 4.  // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.   // 4.1.   // Chlorobutanol 1,1,1-trichloro-2-méthyl propanol-2.   // 4.2.  // 2,2,2-trichloroéthanol.   // 4.3.   // Éthanol absolu.  // 4.4.   // Solution étalon de chlorobutanol: 0,025 g dans 100 ml d'éthanol (4.3) (m/v).   // 4.5.   // Solution étalon de 2,2,2-trichloroéthanol: 0,004 g dans 100 ml d'éthanol (4.3) (m/v).   // 5.   // APPAREILLAGE   // 5.1.   // Matériel courant de laboratoire.   // 5.2.   // Chromatographe en phase gazeuse avec détecteur à capture d'électrons 63Ni.   // 6.  // MODE OPÉRATOIRE   // 6.1.   // Préparation de l'échantillon   //   // Peser exactement de 0,1 g à 0,3 g d'échantillon (p g). L'introduire dans une fiole jaugée de 100 ml, le dissoudre dans l'éthanol (4.3), ajouter 1 ml de la solution étalon interne (4.5) et compléter au trait avec de l'éthanol (4.3).  // 6.2.   // Conditions de la chromatographie en phase gazeuse   // 6.2.1.   // Les conditions opératoires doivent être telles que le facteur de résolution R de la colonne soit égal ou supérieur à 1,5:  1.2.3.4 //   //   // R = 2   // d'R2 - d'R1 W1 + W2   //   // où:   //   //  1.2.3 //   // R1 et R2   // = temps de rétention exprimé en minute de deux pics consécutifs,  //   // W1 et W2   // = largeur des pics à mi-hauteur exprimée en mm,   //   // d'   // = vitesse de déroulement du papier en mm/mn.  1.2 // 6.2.2.   // À titre d'exemple, les conditions opératoires suivantes fournissent le résultat recherché: 1.2.3 //    //   //   // Colonne  // I  // II  //  //  //  // Nature   // Verre   // Acier inoxydable  // Longueur   // 1,80 m   // 3 m   // Diamètre   // 3 mm  // 3 mm   // Remplissage   // 10 % carbowax 20 M TPA sur Gaschrom Q 80-100 mesh   // 5 % OV 17 sur Chromosorb WAW DMCS 80-100 mesh   // Conditionnement   // 2 à 3 jours à 190 °C  //   // Températures:   //   //   // - injecteur   // 200 °C  // 150 °C   // - colonne   // 150 °C   // 100 °C   // - détecteur   // 200 °C   // 150 °C   // Gaz vecteur   // Azote  // Argon/méthane (95/5 v/v)   // Débit   // 35 ml/mn   // 32 ml/mn   //    //   //  1.2 // 6.3.   // Courbe étalon   //  // Dans 5 fioles jaugées de 100 ml, ajouter à 1 ml de la solution étalon interne (4.5) respectivement 0,20, 0,30, 0,40, 0,50 et 0,60 ml de la solution (4.4) et compléter à 100 ml avec de l'éthanol (4.3). Injecter 1 ml de chacune de ces solutions dans le chromatographe selon les conditions opératoires décrites au point 6.2.2 et tracer la courbe étalon en portant en abscisse le rapport des masses du chlorobutanol au 2,2,2-trichloroéthanol et en ordonnée le rapport des surfaces correspondantes.   // 6.4.   // Injecter 1 ml de la solution obtenue en 6.1 et opérer selon les conditions décrites au point 6.2.2.   // 7.   // CALCUL   // 7.1.   // Calculer à partir de la courbe étalon (6.3) la quantité « a » exprimée en mg de chlorobutanol de la solution (6.1).   // 7.2.   // La teneur en chlorobutanol de l'échantillon % m/m est calculée selon la formule:  1.2.3.4.5.6 //   //   // % chlorobutanol m/m =   // a × 102 p × 106   // =   // a p × 104  1.2 // 8.  // RÉPÉTABILITÉ (1)   //   // Pour une teneur en chlorobutanol de 0,5 % (m/m), la différence entre les résultats de deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas dépasser 0,01 %.   //   // Note   //   // Si le résultat est égal ou supérieur à la concentration maximale autorisée, il convient de vérifier l'absence d'interférences.   IDENTIFICATION ET DOSAGE DE LA QUININE  A. IDENTIFICATION  1.2 // 1.   // OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //   // Cette méthode est destinée à mettre en évidence la présence de quinine dans les shampooings et lotions capillaires.   // 2.  // PRINCIPE   //   // L'identification s'effectue par chromatographie sur couche mince de silicagel et mise en évidence de la fluorescence bleue de la quinine en milieu acide à 360 nm.   //   // Pour confirmation ultérieure, on peut supprimer cette fluorescence au moyen de vapeurs de brome et faire apparaître une fluorescence jaunâtre par les vapeurs d'ammoniac.   // 3.   // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.   // 3.1.   // Plaques de silicagel d'une épaisseur de 0,25 mm sans indicateur de fluorescence, format 20 × 20 cm.   // 3.2.   // Solvant de développement: toluène/éther diéthylique/dichlorométhane/diéthylamine: 20/20/20/8 (v/v/v/v).   // 3.3.   // Méthanol.   // 3.4.   // Acide sulfurique 96 % (d 20 4 = 1,84).   // 3.5.   // Éther diéthylique.   // 3.6.   // Réactif révélateur: ajouter avec précaution 5 ml d'acide sulfurique (3.4) à 95 ml d'éther diéthylique (3.5) dans un récipient réfrigéré.   // 3.7.  // Brome.   // 3.8.   // Ammoniaque à 28 % (d 20 4 = 0,90).  // 3.9.   // Quinine anhydre.   // 3.10   // Solution étalon: peser exactement environ 100 mg de quinine anhydre (3.9) et les dissoudre avec du méthanol (3.3) dans une fiole jaugée de 100 ml.   // 4.   // APPAREILLAGE   // 4.1.   // Équipement courant de chromatographie sur couche mince.   // 4.2.   // Bain à ultra-sons.   // 4.3.   // Filtres Millipore FH 0,5 mm ou équivalent avec appareillage de filtration adéquat.   // 5.  // MODE OPÉRATOIRE   // 5.1.   // Préparation de l'échantillon   //   // Peser avec précision une quantité de produit cosmétique susceptible de contenir environ 100 mg de quinine. L'introduire dans une fiole jaugée de 100 ml, dissoudre et porter au trait de jauge avec du méthanol (3.3). Boucher et laisser pendant 1 heure à température ambiante dans le bain à ultra-sons (4.2). Filtrer sur filtre (4.3) et utiliser ce filtrat pour la chromatographie.   // 5.2.   // Chromatographie sur couche mince   //   // Déposer sur la plaque de silicagel (3.1) 1,0 ml de solution étalon (3.10) et 1,0 ml de solution échantillon (5.1). Développer le chromatogramme sur 15 cm dans une cuve préalablement saturée aux vapeurs du solvant (3.2).  // 5.3.   // Révélation   // 5.3.1.   // Sécher la plaque à température ambiante.   // 5.3.2.   // Pulvériser le réactif (3.6).   // 5.3.3.   // Laisser sécher la plaque pendant 1 heure à température ambiante.   // 5.3.4.   // Observer la plaque sous rayonnement ultraviolet à 360 nm. La quinine apparaît sous forme d'une tache fluorescente bleu intense.  //   // À titre d'exemple, le tableau ci-après reproduit les Rf des principaux alcaloïdes du quinquina, développés au moyen du solvant (3.2).  1.2.3 //    //   //   //   // Alcaloïdes  // Rf   //    //   //   //   // Quinine   // 0,20   //  // Quinidine   // 0,29   //   // Cinchonine   // 0,33   //  // Cinchonidine   // 0,27   //   // Hydroquinidine   // 0,17  //    //   //  1.2 // 5.3.5.   // Pour confirmation ultérieure de l'identification de la quinine, on expose pendant environ 1 heure la plaque aux vapeurs de brome (3.7); la fluorescence disparaît. En exposant ensuite la même plaque aux vapeurs d'ammoniaque (3.8), les taches réapparaissent avec une coloration brune et, si l'on réexamine la plaque sous ultraviolets à 360 nm, on constate une fluorescence jaunâtre.  //   // Limite d'identification: 0,1 mg de quinine.  B. DOSAGE  1.2 // 1.   // OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //   // Cette méthode décrit le dosage de la quinine dans les shampooings et les lotions capillaires. Elle convient pour doser au maximum 0,5 % m/m dans les shampooings et 0,2 % m/m dans les lotions.  // 2.   // DÉFINITION   //   // La teneur en quinine mesurée par cette méthode est exprimée en pourcentage de masse (% m/m) du produit.   // 3.   // PRINCIPE   //   // Après traitement approprié du produit à analyser, le dosage est effectué par chromatographie liquide à haute pression (CLHP).   // 4.  // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique. Ils doivent notamment convenir pour la chromatographie liquide à haute pression.   // 4.1.  // Acétonitrile.   // 4.2.   // Dihydrogénoorthophosphate de potassium KH2PO4   // 4.3.   // Acide orthophosphorique à 85 % (d 20 4 = 1,7).   // 4.4.   // Bromure de tétraméthylammonium.  // 4.5.   // Quinine anhydre.   // 4.6.   // Méthanol.  // 4.7.   // Solution d'acide orthophosphorique 0,1 M: dissoudre 11,53 g d'acide orthophosphorique (4.3) dans  1 000 ml d'eau distillée dans une fiole jaugée.   // 4.8.  // Solution de dihydrogénoorthophosphate de potassium 0,1 M: dissoudre 13,6 g de dihydrogénoorthophosphate de potassium (4.2) dans 1 000 ml d'eau distillée dans une fiole jaugée.  // 4.9.   // Solution de bromure de tétraméthylammonium 0,1 M: dissoudre 15,40 g de bromure de tétraméthylammonium (4.4) dans 1 000 ml d'eau distillée dans une fiole jaugée.   // 4.10.  // Éluant: acide orthophosphorique 0,1 M (4.7) / dihydrogénoorthophosphate de potassium 0,1 M (4.8) / bromure de tétraméthylammonium 0,1 M (4.9) / eau pour CLHP / acétonitrile (4.1): 10/50/100/340/90 (v/v/v/v/v). La composition de la phase mobile peut être modifiée de telle manière que le facteur de résolution R soit égal ou supérieur à 1,5:  1.2.3.4 //   //  // R = 2   // d'R2 - d'R1 W1 + W2   //   // où:   //   // 1.2.3 //   // R1 et R2   // = temps de rétention exprimé en minute de deux pics consécutifs,   //   // W1 et W2   // = largeur des pics à mi-hauteur exprimée en mm,   //   // d'  // = vitesse de déroulement du papier en mm/mn.  1.2 // 4.11.  // Silice octadécylsilanisée de granulométrie 10 mm.  // 4.12.   // Solution étalon: dans une série de fioles jaugées de 100 ml, peser successivement avec précision 5,0, 10,0, 15,0 et 20,0 mg de quinine anhydre (4.5). Ajuster avec du méthanol (4.6) et agiter jusqu'à dissolution. Filtrer chaque solution sur filtre (5.5) de 0,5 mm.   // 5.   // APPAREILLAGE  // 5.1.   // Matériel courant de laboratoire.   // 5.2.  // Bain à ultra-sons.   // 5.3.   // Chromatographe en phase liquide à haute pression avec détecteur ultraviolets à longueur d'onde variable.   // 5.4.   // Colonne en acier inoxydable: longueur 25 cm, diamètre intérieur: 4,6 mm, remplissage: silice octadécylsilanisée (4.11).   // 5.5.   // Filtre Millipore FH 0,5 mm ou équivalent avec appareil de filtration adéquat.  // 6.   // MODE OPÉRATOIRE   // 6.1.   // Préparation de l'échantillon   //   // Peser avec précision dans une fiole jaugée de 100 ml une quantité d'échantillon correspondant à environ 10 mg de quinine anhydre. Ajouter 20 ml de méthanol (4.6) et placer la fiole pendant 20 minutes dans un bain à ultra-sons (5.2). Compléter au trait au moyen de méthanol (4.6). Homogénéiser la solution et filtrer une partie aliquote sur le filtre (5.5).   // 6.2.   // Conditions de la chromatographie   //   // - Débit de la phase mobile (4.10): 1,0 ml/mn.   //   // - Détection: 332 nm.   //   // - Quantité à injecter: 10,0 ml de la solution filtrée (6.1).   //   // - Mesure de la surface du pic.   // 6.3.   // Courbe d'étalonnage   //   // Introduire au moins trois fois 10,0 ml de chacune des solutions étalons (4.12). Mesurer la surface du pic et en calculer la valeur moyenne pour chaque concentration.   //  // Tracer la droite d'étalonnage.   // 7.   // CALCUL  // 7.1.   // À partir de la courbe d'étalonnage (6.3), calculer la quantité de quinine anhydre, exprimée en mg, contenue dans le volume injecté.   // 7.2.   // La concentration en quinine anhydre dans l'échantillon, en pourcentage de masse, est obtenue par la formule suivante:  //   // % (m/m) de quinine anhydre = B  A   //   // où:   //  // B = quantité en mg de quinine anhydre contenue dans 10 ml de la solution filtrée (6.1.1),  //  // A = masse de l'échantillon 6.1 exprimée en g.   // 8.   // RÉPÉTABILITÉ (1)  //   // Pour une teneur en quinine anhydre de l'ordre de 0,5 % (m/m), la différence entre les résultats de deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas être supérieure à 0,02 %.   //   // Pour une teneur en quinine anhydre de l'ordre de 0,2 % (m/m), la différence entre les résultats de deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas être supérieure à 0,01 %.  IDENTIFICATION ET DOSAGE DES SULFITES ET BISULFITES INORGANIQUES  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION  La méthode décrit l'identification et le dosage des sulfites et des hydrogénosulfites inorganiques dans les produits cosmétiques. Elle est applicable seulement aux produits contenant une phase aqueuse ou alcoolique et pour des teneurs jusqu'à 0,2 % exprimé en SO2.  A. IDENTIFICATION  1.2 // 1.   // PRINCIPE   //   // L'échantillon est chauffé dans de l'acide chlorhydrique et l'anhydride sulfureux libéré est identifié par son odeur ou à l'aide d'un papier indicateur.   // 2.   // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.   // 2.1.   // Acide hydrochlorique (4 M).   // 2.2.   // Papier indicateur à l'iodate de potassium-amidon, ou autre papier indicateur.   // 3.  // APPAREILLAGE   // 3.1.   // Matériel courant de laboratoire.   // 3.2.   // Ballon de 25 ml pourvu d'un réfrigérant à reflux court.   // 4.   // MODE OPÉRATOIRE  // 4.1.   // Introduire dans le flacon (3.2) 2,5 g d'échantillon et 10 ml d'acide hydrochlorique (2.1).   // 4.2.  // Mélanger et porter à ébullition.   // 4.3.   // Détecter l'anhydride sulfureux à l'odeur ou au moyen du papier indicateur (2.2).  B. DOSAGE  1.2 // 1.   // DÉFINITION   //   // La teneur de l'échantillon en sulfite ou en hydrogénosulfite déterminée selon cette méthode est exprimée en pourcentage de la masse de dioxyde de soufre.   // 2.   // PRINCIPE   //   // Après acidification de l'échantillon, le dioxyde de soufre libéré est distillé et recueilli dans une solution de peroxyde d'hydrogène. L'acide sulfurique formé est titré à l'aide d'une solution titrée d'hydroxyde de sodium.   // 3.   // RÉACTIFS  //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.  // 3.1.   // Peroxyde d'hydrogène 0,2 % (m/v). Ce réactif doit être préparé quotidiennement.   // 3.2.   // Acide orthophosphorique (d 25  4 = 1,75).   // 3.3.   // Méthanol.  // 3.4.   // Solution titrée d'hydroxyde de sodium: 0,01 M.  // 3.5.   // Azote.   // 3.6.   // Indicateur: mélange 1: 1 (v/v) de rouge de méthyle (0,03 % m/v dans de l'éthanol) et de bleu de méthylène (0,05 % m/v dans de l'éthanol). Filtrer la solution.   // 4.   // APPAREILLAGE   // 4.1.   // Matériel courant de laboratoire.   // 4.2.   // Appareil à distiller (voir schéma).   // 5.   // MODE OPÉRATOIRE   // 5.1.  // Peser avec précision environ 2,5 g d'échantillon et les introduire dans le ballon de distillation A (voir schéma).  // 5.2.   // Ajouter 60 ml d'eau et 50 ml de méthanol (3.3), et mélanger.   // 5.3.   // Introduire 10 ml de peroxyde d'hydrogène (3.1), 60 ml d'eau et quelques gouttes d'indicateur (3.6) dans le récipient D destiné à recevoir le distillat (voir schéma). Ajouter quelques gouttes d'hydroxyde de sodium (3.4) jusqu'à ce que l'indicateur vire au vert.   // 5.4.  // Procéder de même dans le flacon laveur E (voir schéma).  // 5.5.   // Assembler l'appareil et régler le débit d'azote (3.5) à environ 60 bulles par minute.   // 5.6.   // Introduire par l'entonnoir 15 ml d'acide orthophosphorique (3.2) dans le flacon de distillation A.   // 5.7.   // Porter rapidement à ébullition et laisser bouillir régulièrement pendant 30 minutes.   // 5.8.   // Déconnecter le récipient D contenant le distillat. Rincer le tube et, ensuite, titrer au moyen d'une solution d'hydroxyde de sodium (3.4) jusqu'à ce que l'indicateur (3.6) vire au vert.   // 6.   // CALCUL   //  // Calculer la teneur en sulfite ou en hydrogénosulfite de l'échantillon en pourcentage de masse à l'aide de la formule suivante:  1.2.3.4 //   //   // % m/m de dioxyde de soufre =  // 3,2 MV m   //   // où:   //   //  1.2.3 //   // M   // = concentration molaire de la solution d'hydroxyde de sodium (3.4),   //   // V   // = volume (en ml) d'hydroxyde de sodium (3.4) nécessaire pour le titrage (5.8),   //   // m   // = masse (en g) de l'échantillon (5.1).  1.2 // 7.  // RÉPÉTABILITÉ (1)   //   // Pour une teneur en dioxyde de soufre de 0,2 % m/m, la différence entre les résultats de deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas dépasser 0,006 %.   Appareil à distillation de l'anhydride sulfureux selon Tanner  Toutes les dimensions sont données en millimètres  IDENTIFICATION ET DOSAGE DES CHLORATES DE MÉTAUX ALCALINS  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION  La méthode décrit l'identification et le dosage des chlorates dans les dentifrices et autres produits cosmétiques.  A. IDENTIFICATION  1.2 // 1.   // PRINCIPE   //   // Les chlorates sont séparés des autres halogénates par chromatographie sur couche mince et détectés par formation de l'iode obtenue par oxydation de l'iodure de potassium.   // 2.   // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.   // 2.1.  // Solution de référence: solutions aqueuses de chlorate, bromate et iodate de potassium (0,2 % m/v) fraîchement préparées.   // 2.2.   // Solvant de développement: solution d'ammoniaque (28 % m/v)/acétone/butanol (60/130/30 v/v/v).  // 2.3.   // Solution aqueuse d'iodure de potassium (5 % m/v).   // 2.4.   // Solution d'amidon (1 à 5 % m/v).   // 2.5.  // Acide chlorhydrique M.   // 2.6.   // Plaques de chromatographie sur couche mince prêtes à l'emploi, revêtues de cellulose (épaisseur:  0,25 mm).   // 3.   // APPAREILLAGE  //   // Matériel courant de laboratoire pour chromatographie sur couche mince.   // 4.   // MODE OPÉRATOIRE   // 4.1.  // Extraire environ 1 g de l'échantillon avec de l'eau, filtrer et diluer jusqu'à 25 ml environ.   // 4.2.   // Déposer sur la plaque (2.6) 2 ml de la solution (4.1) et 2 ml de chacune des trois solutions de référence (2.1).   // 4.3.  // Introduire la plaque dans une cuve et développer par chromatographie ascendante sur trois quarts environ de la longueur de la plaque à l'aide du solvant (2.2).   // 4.4.  // Retirer la plaque de la cuve et laisser évaporer le solvant (2 heures environ).   // 4.5.   // Pulvériser sur la plaque la solution d'iodure de potassium (2.3) et laisser sécher pendant environ 5 minutes.   // 4.6.   // Pulvériser sur la plaque la solution d'amidon (2.4) et laisser sécher pendant environ 5 minutes.   // 4.7.   // Pulvériser sur la plaque de l'acide chlorhydrique (2.5).   // 5.   // LECTURE   //   // En présence de chlorate, il apparaît une tache bleue (éventuellement brune) après une demi-heure.   //   // Les valeurs de Rf sont les suivantes:  1.2.3 //    //   //   //   //   // Rf   //    //  //   //   // Iodate   // 0 - 0,2   //   // Bromate   // 0,5 - 0,6   //   // Chlorate   // 0,7 - 0,8   //    //   //  1.2 //  // On notera que les bromates et les iodates produisent des réactions immédiates et on veillera à ne pas confondre les taches de bromate et de chlorate.  B. DOSAGE  1.2 // 1.   // DÉFINITION   //   // La teneur de l'échantillon en chlorate déterminée selon cette méthode est exprimée en pourcentage de masse de chlorate.   // 2.  // PRINCIPE   //   // Le chlorate est réduit par du zinc en poudre en milieu acide. Le chlorure formé est titré potentiométriquement par le nitrate d'argent. Un dosage similaire avant la réduction permet de déceler la présence éventuelle d'halogénures.   // 3.   // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.   // 3.1.  // Acide acétique 80 % m/m.   // 3.2.   // Zinc en poudre.  // 3.3.   // Solution titrée de nitrate d'argent 0,1 M.  // 4.   // APPAREILLAGE   // 4.1.   // Matériel courant de laboratoire.   // 4.2.   // Potentiographe équipé d'une électrode indicatrice d'argent.   // 5.   // MODE OPÉRATOIRE  // 5.1.   // Préparation de l'échantillon   //   // Peser avec précision une quantité (m) de 2 g environ dans un tube à centrifuger. Ajouter environ 15 ml d'acide acétique (3.1) et mélanger soigneusement. Attendre 30 minutes et centrifuger pendant 15 minutes à 2 000 tours/mn. Transvaser la solution surnageante dans une fiole jaugée de 50 ml. Répéter deux fois la centrifugation en ajoutant 15 ml d'acide acétique (3.1) au résidu. Recueillir les solutions contenant le chlorate dans la même fiole jaugée. Compléter au trait de jauge avec de l'acide acétique (3.1).   // 5.2.   // Réduction du chlorate   //  // Prélever 20 ml de la solution (5.1) et ajouter 0,6 g de zinc en poudre (3.2). Porter à ébullition dans un ballon surmonté d'un réfrigérant ascendant. Après 30 minutes d'ébullition, laisser refroidir et filtrer. Rincer le ballon avec de l'eau, filtrer et combiner le filtrat et les eaux de rinçage.   // 5.3.   // Dosage du chlorure   //   // Titrer la solution (5.2) avec du nitrate d'argent (3.3) au moyen du potentiographe (4.2). Titrer de la même manière 20 ml de solution (5.1) avec du nitrate d'argent (3.3).   //   // Si le produit contient des dérivés de brome ou d'iode susceptibles de libérer des bromures ou des iodures après la réduction, la courbe de titrage présente plusieurs points d'inflexion. Dans ce cas, le volume de la solution titrée (3.3) correspondant au chlorure est représenté par la différence entre les volumes correspondant aux dernier et avant-dernier points d'inflexion.  // 6.   // CALCUL   //   // La teneur en chlorate de l'échantillon (% m/m) est calculée selon la formule: 1.2.3.4 //   //   // % chlorate m/m =   // 20,9 (V - V') M m  //   // où:   //   //  1.2.3 //   // V   // = volume en ml de la solution de nitrate d'argent (3.3) utilisée pour le titrage de la solution (5.2),   //   // V'   // = volume en ml de la solution de nitrate d'argent (3.3) utilisée pour le titrage de la solution (5.1),   //   // M   // = molarité de la solution de nitrate d'argent (3.3),   //   // m   // = masse en g de l'échantillon (5.1).  1.2 // 7.   // RÉPÉTABILITÉ (1)   //  // Pour une teneur en chlorate de 3 à 5 % m/m, la différence entre les résultats des deux dosages parallèles effectués sur le même échantillon ne doit pas dépasser 0,07 % m/m.  IDENTIFICATION ET DOSAGE DE L'IODATE SODIQUE  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION  La méthode convient à l'identification et au dosage de l'iodate sodique dans les produits cosmétiques rincés après usage.  A. IDENTIFICATION  1.2 // 1.   // PRINCIPE   //   // L'iodate sodique est séparé des autres halogénates par chromatographie sur couche mince et identifié par l'oxydation de l'iodure en iode.   // 2.  // RÉACTIFS   //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique.   // 2.1.   // Solutions de référence: solutions aqueuses de chlorate, de bromate et d'iodate de potassium (0,01 % m/v) fraîchement préparées.   // 2.2.  // Solvant de développement: solution d'ammoniaque (28 % m/v)/acétone/butanol (60/130/30 v/v/v).   // 2.3.   // Solution aqueuse d'iodure de potassium (5 % m/v).   // 2.4.  // Solution d'amidon (1 à 5 % m/v).   // 2.5.   // Acide chlorhydrique M.   // 3.   // APPAREILLAGE   // 3.1.  // Plaques de chromatographie sur couche mince prêtes à l'emploi revêtues de cellulose (0,25 mm).   // 3.2.  // Matériel courant de chromatographie sur couche mince.  // 4.   // MODE OPÉRATOIRE   // 4.1.   // Extraire environ 1 g de l'échantillon avec de l'eau, filtrer et diluer à environ 10 ml.   // 4.2.   // Déposer 2 ml de cette solution sur la ligne de base de la plaque (3.1) ainsi que 2 ml de chacune des trois solutions de référence (2.1).   // 4.3.   // Placer la plaque dans une cuve de développement et développer par chromatographie ascendante sur les trois quarts environ de la longueur de la plaque à l'aide du solvant (2.2).   // 4.4.  // Retirer la plaque de la cuve et laisser s'évaporer le solvant à la température ambiante. (Note: L'opération peut demander 2 heures.)   // 4.5.   // Pulvériser la plaque avec de l'iodure de potassium (2.3) et laisser sécher pendant environ 5 minutes.   // 4.6   // Pulvériser ensuite avec la solution d'amidon (2.4) et laisser sécher pendant environ 5 minutes.  // 4.7.   // Pulvériser finalement avec de l'acide chlorhydrique (2.5).   // 5.   // ÉVALUATION   //   // En présence d'iodate, une tache bleue (éventuellement brune ou le devenant) apparaît immédiatement, la valeur Rf étant approximativement de 0 à 0,2.   //   // On notera que les bromates réagissent immédiatement à des valeurs Rf de 0,5 à 0,6 et que les chlorates réagissent, après 30 minutes environ, à des valeurs de Rf correspondant à 0,7 à 0,8.  B. DOSAGE  1.2 // 1.   // DÉFINITION   //   // La teneur de l'échantillon en iodate sodique déterminée par cette méthode est exprimée en pourcentage de la masse d'iodate sodique.  // 2.   // PRINCIPE   //   // L'iodate sodique est dissous dans l'eau et dosé par chromatographie liquide à haute pression, en utilisant (en série) une colonne phase inverse C 18 et une colonne échangeuse d'anions.   // 3.   // RÉACTIFS  //   // Tous les réactifs doivent être de qualité analytique. Ils doivent notamment convenir pour la chromatographie liquide à haute pression.   // 3.1.   // Acide chlorhydrique, 4 M.  // 3.2.   // Solution aqueuse de sulfite sodique, 5 % m/v.  // 3.3.   // Solution-mère d'iodate sodique: préparer une solution contenant 50 mg d'iodate de sodium par 100 ml d'eau.  // 3.4.   // Dihydrogénoorthophosphate de potassium.   // 3.5.   // Hydrogénoorthophosphate disodique 2H2O.   // 3.6.  // Phase mobile de chromatographie en phase liquide à haute pression. Dissoudre 3,88 g de dihydrogénoorthophosphate de potassium (3.4) et 1,19 g d'hydrogénoorthophosphate disodique 2H2O (3.5) dans 1 l d'eau.   //   // Le pH de la solution obtenue est 6,2.   // 3.7.   // Papier indicateur universel, pH 1-11.   // 4.   // APPAREILLAGE   //   // Matériel courant de laboratoire.   // 4.1.   // Papier filtre de 110 mm de diamètre, Schleicher et Schull no 575 ou équivalent.   // 4.2.  // Chromatographe liquide à haute pression muni d'un détecteur à longueur d'onde variable.   // 4.3.   // Colonnes: d'une longueur de 120 mm et d'un diamètre interne de 4,6 mm, au nombre de 2, en série, première colonne conditionnée en nucléosil (R) 5 C18 ou équivalent, deuxième colonne conditionnée en Vydac, TM - 301-SB ou équivalent.   // 5.  // MODE OPÉRATOIRE   // 5.1.   // Préparation des échantillons   // 5.1.1.   // Échantillons fluides (shampooings)   //  // Peser avec précision une prise d'essai d'environ 1,0 g dans un tube de verre gradué et bouché à l'émeri ou dans une fiole jaugée de 10 ml. Compléter au trait avec de l'eau et mélanger. Si besoin, filtrer la solution. Déterminer la quantité d'iodate dans la solution au moyen de la chromatographie liquide à haute pression comme décrit au point 5.2.   // 5.1.2.  // Échantillons solides (savon)   //   // Diviser finement une partie de l'échantillon et peser avec précision une prise d'essai d'environ 1,0 g, et l'introduire dans un tube en verre gradué et bouché à l'émeri de 100 ml.   //   // Remplir d'eau jusqu'à 50 ml et agiter énergiquement pendant 1 minute; centrifuger ou filtrer à travers un filtre en papier ou laisser reposer le mélange pendant une nuit au moins, agiter énergiquement la solution gélatineuse et filtrer celle-ci à travers un filtre en papier (4.1).   //   // Doser l'iodate dans le filtrat par chromatographie liquide à haute pression comme décrit au point 5.2.   // 5.2.   // Chromatographie   //  // Débit: 1ml/mn.   //   // Longueur d'onde de détecteur: 210 nm.   //   // Volume injecté: 10 ml.   //   // Mesure: surface du pic.   // 5.3.   // Étalonnage   //   // Pipeter respectivement 1,0, 2,0, 5,0, 10,0 et 20,0 ml de la solution-mère d'iodate sodique (3.3) dans des fioles jaugées de 50 ml. Porter au trait et agiter. Les solutions ainsi obtenues contiennent respectivement 0,01, 0,02, 0,05, 0,10 et 0,20 mg d'iodate sodique par ml. Injecter 10 ml de chaque solution de référence dans le chromatographe liquide (4.3). Déterminer la surface du pic pour l'iodate et établir une courbe d'étalonnage: surface de pic - concentration d'iodate.   // 6.  // CALCUL   //   // Calculer en iodate sodique, en pourcentage de la masse (% m/m) en utilisant la formule:  1.2.3.4 //   //  // % (m/m) d'iodate sodique =   // Vc 10 m   //   // où:   //  //  1.2.3 //   // m   // = la masse, exprimée en g, de la prise d'essai (5.1),   //   // V   // = le volume total de la solution d'échantillon, exprimé en ml, obtenu comme décrit au point 5.1,   //   // c   // = la concentration, exprimée en mg/ml, d'iodate sodique obtenue à partir de la courbe d'étalonnage.  1.2 // 7.   // RÉPÉTABILITÉ (1)   //   // Pour une teneur en iodate sodique de 0,1 % (m/m), la différence entre les résultats de deux dosages effectués en parallèle sur le même échantillon ne doit pas dépasser 0,002 %.   // 8.  // CONFIRMATION   // 8.1.   // Principe   //   // En solution acide, l'iodate (IO3-) est réduit en iodure (I-) par le sulfite et la solution obtenue est examinée par chromographie en phase liquide à haute pression. Si un pic ayant un temps de rétention correspondant au temps de rétention de l'iodate disparaît après traitement au sulfite, le pic original peut être considéré comme de l'iodate.   // 8.2.   // Mode opératoire   //  // Pipeter dans une fiole conique une prise d'essai de 5 ml de la solution d'échantillon obtenue au  point 5.1. Ajuster le pH de la solution à une valeur inférieure ou égale à 3 à l'aide d'acide chlorhydrique (3.1) et du papier universel indicateur de pH (3.7) Ajouter trois gouttes de la solution de sulfite sodique (3.2) et agiter. Injecter 10 ml de la solution dans le chromatographe liquide (4.2). Comparer le chromatogramme avec celui obtenu de la manière décrite au point 5 pour le même échantillon.REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  4.1 .  CHLOROBUTANOL 1,1,1-TRICHLORO-2-METHYL PROPANOL-2 .  4.2 .  2,2,2-TRICHLOROETHANOL .  4.3 .  ETHANOL ABSOLU .  4.4 .  SOLUTION ETALON DE CHLOROBUTANOL : 0,025 G DANS 100 ML D'ETHANOL ( 4.3 ) ( M/V ).  4.5 .  SOLUTION ETALON DE 2,2,2-TRICHLOROETHANOL : 0,004 G DANS 100 ML D'ETHANOL ( 4.3 ) ( M/V ).  5 .  APPAREILLAGE  5.1 .  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE .  5.2 .  CHROMATOGRAPHE EN PHASE GAZEUSE AVEC DETECTEUR A CAPTURE D'ELECTRONS 63NI .  6 .  MODE OPERATOIRE  6.1 .  PREPARATION DE L'ECHANTILLON   //  PESER EXACTEMENT DE 0,1 G A 0,3 G D'ECHANTILLON ( P G ). L'INTRODUIRE DANS UNE FIOLE JAUGEE DE 100 ML, LE DISSOUDRE DANS L'ETHANOL ( 4.3 ), AJOUTER 1 ML DE LA SOLUTION ETALON INTERNE ( 4.5 ) ET COMPLETER AU TRAIT AVEC DE L'ETHANOL ( 4.3 ).  6.2 .  CONDITIONS DE LA CHROMATOGRAPHIE EN PHASE GAZEUSE  6.2.1 .  LES CONDITIONS OPERATOIRES DOIVENT ETRE TELLES QUE LE FACTEUR DE RESOLUTION R DE LA COLONNE SOIT EGAL OU SUPERIEUR A 1,5 :  1.2.3.4 //  //  R = 2  D'R2 - D'R1 W1 + W2   //  OU :   //  //  1.2.3 //  R1 ET R2  = TEMPS DE RETENTION EXPRIME EN MINUTE DE DEUX PICS CONSECUTIFS,   //  W1 ET W2  = LARGEUR DES PICS A MI-HAUTEUR EXPRIMEE EN MM,   //  D'  = VITESSE DE DEROULEMENT DU PAPIER EN MM/MN .  1.26.2.2 .  A // TITRE D'EXEMPLE, LES CONDITIONS OPERATOIRES SUIVANTES FOURNISSENT LE RESULTAT RECHERCHE :  1.2.3 //   //  //  COLONNE  I  II  NATURE  VERRE  ACIER INOXYDABLE  LONGUEUR  1,80 M  3 M  DIAMETRE  3 MM  3 MM  REMPLISSAGE  10 % CARBOWAX 20 M TPA SUR GASCHROM Q 80-100 MESH  5 % OV 17 SUR CHROMOSORB WAW DMCS 80-100 MESH  CONDITIONNEMENT  2 A 3 JOURS A 190 *C   //  TEMPERATURES :   //  //  - INJECTEUR  200 *C  150 *C  - COLONNE  150 *C  100 *C  - DETECTEUR  200 *C  150 *C  GAZ VECTEUR  AZOTE  ARGON/METHANE ( 95/5 V/V )  DEBIT  35 ML/MN  32 ML/MN   //   //  //  1.26.3 .  COURBE ETALON   //  DANS 5 FIOLES JAUGEES DE 100 ML, AJOUTER A 1 ML DE LA SOLUTION ETALON INTERNE ( 4.5 ) RESPECTIVEMENT 0,20, 0,30, 0,40, 0,50 ET 0,60 ML DE LA SOLUTION ( 4.4 ) ET COMPLETER A 100 ML AVEC DE L'ETHANOL ( 4.3 ). INJECTER 1 *L DE CHACUNE DE CES SOLUTIONS DANS LE CHROMATOGRAPHE SELON LES CONDITIONS OPERATOIRES DECRITES AU POINT 6.2.2 ET TRACER LA COURBE ETALON EN PORTANT EN ABSCISSE LE RAPPORT DES MASSES DU CHLOROBUTANOL AU 2,2,2-TRICHLOROETHANOL ET EN ORDONNEE LE RAPPORT DES SURFACES CORRESPONDANTES .  6.4 .  INJECTER 1 *L DE LA SOLUTION OBTENUE EN 6.1 ET OPERER SELON LES CONDITIONS DECRITES AU POINT 6.2.2 .  7 .  CALCUL  7.1 .  CALCULER A PARTIR DE LA COURBE ETALON ( 6.3 ) LA QUANTITE " A " EXPRIMEE EN *G DE CHLOROBUTANOL DE LA SOLUTION ( 6.1 ).  7.2 .  LA TENEUR EN CHLOROBUTANOL DE L'ECHANTILLON % M/M EST CALCULEE SELON LA FORMULE :  1.2.3.4.5.6 //  //  % CHLOROBUTANOL M/M =  A X 102 P X 106  =  A P X 104  1.28 .  REPETABILITE ( 1 )   //  POUR UNE TENEUR EN CHLOROBUTANOL DE 0,5 % ( M/M ), LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DE DEUX DOSAGES PARALLELES EFFECTUES SUR LE MEME ECHANTILLON NE DOIT PAS DEPASSER 0,01 %.  //  NOTE   //  SI LE RESULTAT EST EGAL OU SUPERIEUR A LA CONCENTRATION MAXIMALE AUTORISEE, IL CONVIENT DE VERIFIER L'ABSENCE D'INTERFERENCES .   IDENTIFICATION ET DOSAGE DE LA QUININE  A . IDENTIFICATION  1.21 .  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //  CETTE METHODE EST DESTINEE A METTRE EN EVIDENCE LA PRESENCE DE QUININE DANS LES SHAMPOOINGS ET LOTIONS CAPILLAIRES .  2 .  PRINCIPE   //  L'IDENTIFICATION S'EFFECTUE PAR CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE DE SILICAGEL ET MISE EN EVIDENCE DE LA FLUORESCENCE BLEUE DE LA QUININE EN MILIEU ACIDE A 360 NM .   //  POUR CONFIRMATION ULTERIEURE, ON PEUT SUPPRIMER CETTE FLUORESCENCE AU MOYEN DE VAPEURS DE BROME ET FAIRE APPARAITRE UNE FLUORESCENCE JAUNATRE PAR LES VAPEURS D'AMMONIAC .  3 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  3.1 .  PLAQUES DE SILICAGEL D'UNE EPAISSEUR DE 0,25 MM SANS INDICATEUR DE FLUORESCENCE, FORMAT 20 X 20 CM .  3.2 .  SOLVANT DE DEVELOPPEMENT : TOLUENE/ETHER DIETHYLIQUE/DICHLOROMETHANE/DIETHYLAMINE : 20/20/20/8 ( V/V/V/V ).  3.3 .  METHANOL .  3.4 .  ACIDE SULFURIQUE 96 % ( D 20 4 = 1,84 ).  3.5 .  ETHER DIETHYLIQUE .  3.6 .  REACTIF REVELATEUR : AJOUTER AVEC PRECAUTION 5 ML D'ACIDE SULFURIQUE ( 3.4 ) A 95 ML D'ETHER DIETHYLIQUE ( 3.5 ) DANS UN RECIPIENT REFRIGERE .  3.7 .  BROME .  3.8 .  AMMONIAQUE A 28 % ( D 20 4 = 0,90 ).  3.9 .  QUININE ANHYDRE .  3.10  SOLUTION ETALON : PESER EXACTEMENT ENVIRON 100 MG DE QUININE ANHYDRE ( 3.9 ) ET LES DISSOUDRE AVEC DU METHANOL ( 3.3 ) DANS UNE FIOLE JAUGEE DE 100 ML .  4 .  APPAREILLAGE  4.1 .  EQUIPEMENT COURANT DE CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE .  4.2 .  BAIN A ULTRA-SONS .  4.3 .  FILTRES MILLIPORE FH 0,5 *M OU EQUIVALENT AVEC APPAREILLAGE DE FILTRATION ADEQUAT .  5 .  MODE OPERATOIRE  5.1 .  PREPARATION DE L'ECHANTILLON   //  PESER AVEC PRECISION UNE QUANTITE DE PRODUIT COSMETIQUE SUSCEPTIBLE DE CONTENIR ENVIRON 100 MG DE QUININE . L'INTRODUIRE DANS UNE FIOLE JAUGEE DE 100 ML, DISSOUDRE ET PORTER AU TRAIT DE JAUGE AVEC DU METHANOL ( 3.3 ). BOUCHER ET LAISSER PENDANT 1 HEURE A TEMPERATURE AMBIANTE DANS LE BAIN A ULTRA-SONS ( 4.2 ). FILTRER SUR FILTRE ( 4.3 ) ET UTILISER CE FILTRAT POUR LA CHROMATOGRAPHIE .  5.2 .  CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE   //  DEPOSER SUR LA PLAQUE DE SILICAGEL ( 3.1 ) 1,0 *L DE SOLUTION ETALON ( 3.10 ) ET 1,0 *L DE SOLUTION ECHANTILLON ( 5.1 ). DEVELOPPER LE CHROMATOGRAMME SUR 15 CM DANS UNE CUVE PREALABLEMENT SATUREE AUX VAPEURS DU SOLVANT ( 3.2 ).  5.3 .  REVELATION  5.3.1 .  SECHER LA PLAQUE A TEMPERATURE AMBIANTE .  5.3.2 .  PULVERISER LE REACTIF ( 3.6 ).  5.3.3 .  LAISSER SECHER LA PLAQUE PENDANT 1 HEURE A TEMPERATURE AMBIANTE .  5.3.4 .  OBSERVER LA PLAQUE SOUS RAYONNEMENT ULTRAVIOLET A 360 NM . LA QUININE APPARAIT SOUS FORME D'UNE TACHE FLUORESCENTE BLEU INTENSE .   // A // TITRE D'EXEMPLE, LE TABLEAU CI-APRES REPRODUIT LES RF DES PRINCIPAUX ALCALOIDES DU QUINQUINA, DEVELOPPES AU MOYEN DU SOLVANT ( 3.2 ).  1.2.3 //   //  //  //  ALCALOIDES  RF   //   //  //  //  QUININE  0,20   //  QUINIDINE  0,29   //  CINCHONINE  0,33   //  CINCHONIDINE  0,27   //  HYDROQUINIDINE  0,17   //   //  //  1.25.3.5 .  POUR CONFIRMATION ULTERIEURE DE L'IDENTIFICATION DE LA QUININE, ON EXPOSE PENDANT ENVIRON 1 HEURE LA PLAQUE AUX VAPEURS DE BROME ( 3.7 ); LA FLUORESCENCE DISPARAIT . EN EXPOSANT ENSUITE LA MEME PLAQUE AUX VAPEURS D'AMMONIAQUE ( 3.8 ), LES TACHES REAPPARAISSENT AVEC UNE COLORATION BRUNE ET, SI L'ON REEXAMINE LA PLAQUE SOUS ULTRAVIOLETS A 360 NM, ON CONSTATE UNE FLUORESCENCE JAUNATRE .   //  LIMITE D'IDENTIFICATION : 0,1 *G DE QUININE .  B . DOSAGE  1.21 .  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION   //  CETTE METHODE DECRIT LE DOSAGE DE LA QUININE DANS LES SHAMPOOINGS ET LES LOTIONS CAPILLAIRES . ELLE CONVIENT POUR DOSER AU MAXIMUM 0,5 % M/M DANS LES SHAMPOOINGS ET 0,2 % M/M DANS LES LOTIONS .  2 .  DEFINITION   //  LA TENEUR EN QUININE MESUREE PAR CETTE METHODE EST EXPRIMEE EN POURCENTAGE DE MASSE (% M/M ) DU PRODUIT .  3 .  PRINCIPE   //  APRES TRAITEMENT APPROPRIE DU PRODUIT A ANALYSER, LE DOSAGE EST EFFECTUE PAR CHROMATOGRAPHIE LIQUIDE A HAUTE PRESSION ( CLHP ).  4 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE . ILS DOIVENT NOTAMMENT CONVENIR POUR LA CHROMATOGRAPHIE LIQUIDE A HAUTE PRESSION .  4.1 .  ACETONITRILE .  4.2 .  DIHYDROGENOORTHOPHOSPHATE DE POTASSIUM KH2PO4  4.3 .  ACIDE ORTHOPHOSPHORIQUE A 85 % ( D 20 4 = 1,7 ).  4.4 .  BROMURE DE TETRAMETHYLAMMONIUM .  4.5 .  QUININE ANHYDRE .  4.6 .  METHANOL .  4.7 .  SOLUTION D'ACIDE ORTHOPHOSPHORIQUE 0,1 M : DISSOUDRE 11,53 G D'ACIDE ORTHOPHOSPHORIQUE ( 4.3 ) DANS  1 000 ML D'EAU DISTILLEE DANS UNE FIOLE JAUGEE .  4.8 .  SOLUTION DE DIHYDROGENOORTHOPHOSPHATE DE POTASSIUM 0,1 M : DISSOUDRE 13,6 G DE DIHYDROGENOORTHOPHOSPHATE DE POTASSIUM ( 4.2 ) DANS 1 000 ML D'EAU DISTILLEE DANS UNE FIOLE JAUGEE .  4.9 .  SOLUTION DE BROMURE DE TETRAMETHYLAMMONIUM 0,1 M : DISSOUDRE 15,40 G DE BROMURE DE TETRAMETHYLAMMONIUM ( 4.4 ) DANS 1 000 ML D'EAU DISTILLEE DANS UNE FIOLE JAUGEE .  4.10 .  ELUANT : ACIDE ORTHOPHOSPHORIQUE 0,1 M ( 4.7 ) / DIHYDROGENOORTHOPHOSPHATE DE POTASSIUM 0,1 M ( 4.8 ) / BROMURE DE TETRAMETHYLAMMONIUM 0,1 M ( 4.9 ) / EAU POUR CLHP / ACETONITRILE ( 4.1 ): 10/50/100/340/90 ( V/V/V/V/V ). LA COMPOSITION DE LA PHASE MOBILE PEUT ETRE MODIFIEE DE TELLE MANIERE QUE LE FACTEUR DE RESOLUTION R SOIT EGAL OU SUPERIEUR A 1,5 :  1.2.3.4 //  //  R = 2  D'R2 - D'R1 W1 + W2   //  OU :   //  //  1.2.3 //  R1 ET R2  = TEMPS DE RETENTION EXPRIME EN MINUTE DE DEUX PICS CONSECUTIFS,   //  W1 ET W2  = LARGEUR DES PICS A MI-HAUTEUR EXPRIMEE EN MM,   //  D'  = VITESSE DE DEROULEMENT DU PAPIER EN MM/MN .  1.24.11 .  SILICE OCTADECYLSILANISEE DE GRANULOMETRIE 10 *M .  4.12 .  SOLUTION ETALON : DANS UNE SERIE DE FIOLES JAUGEES DE 100 ML, PESER SUCCESSIVEMENT AVEC PRECISION 5,0, 10,0, 15,0 ET 20,0 MG DE QUININE ANHYDRE ( 4.5 ). AJUSTER AVEC DU METHANOL ( 4.6 ) ET AGITER JUSQU'A DISSOLUTION . FILTRER CHAQUE SOLUTION SUR FILTRE ( 5.5 ) DE 0,5 *M .  5 .  APPAREILLAGE  5.1 .  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE .  5.2 .  BAIN A ULTRA-SONS .  5.3 .  CHROMATOGRAPHE EN PHASE LIQUIDE A HAUTE PRESSION AVEC DETECTEUR ULTRAVIOLETS A LONGUEUR D'ONDE VARIABLE .  5.4 .  COLONNE EN ACIER INOXYDABLE : LONGUEUR 25 CM, DIAMETRE INTERIEUR : 4,6 MM, REMPLISSAGE : SILICE OCTADECYLSILANISEE ( 4.11 ).  5.5 .  FILTRE MILLIPORE FH 0,5 *M OU EQUIVALENT AVEC APPAREIL DE FILTRATION ADEQUAT .  6 .  MODE OPERATOIRE  6.1 .  PREPARATION DE L'ECHANTILLON   //  PESER AVEC PRECISION DANS UNE FIOLE JAUGEE DE 100 ML UNE QUANTITE D'ECHANTILLON CORRESPONDANT A ENVIRON 10 MG DE QUININE ANHYDRE . AJOUTER 20 ML DE METHANOL ( 4.6 ) ET PLACER LA FIOLE PENDANT 20 MINUTES DANS UN BAIN A ULTRA-SONS ( 5.2 ). COMPLETER AU TRAIT AU MOYEN DE METHANOL ( 4.6 ). HOMOGENEISER LA SOLUTION ET FILTRER UNE PARTIE ALIQUOTE SUR LE FILTRE ( 5.5 ).  6.2 .  CONDITIONS DE LA CHROMATOGRAPHIE   //  - DEBIT DE LA PHASE MOBILE ( 4.10 ): 1,0 ML/MN .   //  - DETECTION : 332 NM .   //  - QUANTITE A INJECTER : 10,0 *L DE LA SOLUTION FILTREE ( 6.1 ).  //  - MESURE DE LA SURFACE DU PIC .  6.3 .  COURBE D'ETALONNAGE   //  INTRODUIRE AU MOINS TROIS FOIS 10,0 *L DE CHACUNE DES SOLUTIONS ETALONS ( 4.12 ). MESURER LA SURFACE DU PIC ET EN CALCULER LA VALEUR MOYENNE POUR CHAQUE CONCENTRATION .   //  TRACER LA DROITE D'ETALONNAGE .  7 .  CALCUL  7.1 .  A // PARTIR DE LA COURBE D'ETALONNAGE ( 6.3 ), CALCULER LA QUANTITE DE QUININE ANHYDRE, EXPRIMEE EN *G, CONTENUE DANS LE VOLUME INJECTE .  7.2 .  LA CONCENTRATION EN QUININE ANHYDRE DANS L'ECHANTILLON, EN POURCENTAGE DE MASSE, EST OBTENUE PAR LA FORMULE SUIVANTE :   //  % ( M/M ) DE QUININE ANHYDRE = B  A   //  OU :   //  B = QUANTITE EN *G DE QUININE ANHYDRE CONTENUE DANS 10 *L DE LA SOLUTION FILTREE ( 6.1.1 ),  A = MASSE DE L'ECHANTILLON 6.1 EXPRIMEE EN G .8 .  REPETABILITE ( 1 )   //  POUR UNE TENEUR EN QUININE ANHYDRE DE L'ORDRE DE 0,5 % ( M/M ), LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DE DEUX DOSAGES PARALLELES EFFECTUES SUR LE MEME ECHANTILLON NE DOIT PAS ETRE SUPERIEURE A 0,02 %.   //  POUR UNE TENEUR EN QUININE ANHYDRE DE L'ORDRE DE 0,2 % ( M/M ), LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DE DEUX DOSAGES PARALLELES EFFECTUES SUR LE MEME ECHANTILLON NE DOIT PAS ETRE SUPERIEURE A 0,01 %.  IDENTIFICATION ET DOSAGE DES SULFITES ET BISULFITES INORGANIQUES  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION  LA METHODE DECRIT L'IDENTIFICATION ET LE DOSAGE DES SULFITES ET DES HYDROGENOSULFITES INORGANIQUES DANS LES PRODUITS COSMETIQUES . ELLE EST APPLICABLE SEULEMENT AUX PRODUITS CONTENANT UNE PHASE AQUEUSE OU ALCOOLIQUE ET POUR DES TENEURS JUSQU'A 0,2 % EXPRIME EN SO2 .  A . IDENTIFICATION  1.21 .  PRINCIPE   //  L'ECHANTILLON EST CHAUFFE DANS DE L'ACIDE CHLORHYDRIQUE ET L'ANHYDRIDE SULFUREUX LIBERE EST IDENTIFIE PAR SON ODEUR OU A L'AIDE D'UN PAPIER INDICATEUR .  2 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  2.1 .  ACIDE HYDROCHLORIQUE ( 4 M ).  2.2 .  PAPIER INDICATEUR A L'IODATE DE POTASSIUM-AMIDON, OU AUTRE PAPIER INDICATEUR .  3 .  APPAREILLAGE  3.1 .  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE .  3.2 .  BALLON DE 25 ML POURVU D'UN REFRIGERANT A REFLUX COURT .  4 .  MODE OPERATOIRE  4.1 .  INTRODUIRE DANS LE FLACON ( 3.2 ) 2,5 G D'ECHANTILLON ET 10 ML D'ACIDE HYDROCHLORIQUE ( 2.1 ).  4.2 .  MELANGER ET PORTER A EBULLITION .  4.3 .  DETECTER L'ANHYDRIDE SULFUREUX A L'ODEUR OU AU MOYEN DU PAPIER INDICATEUR ( 2.2 ).  B . DOSAGE  1.21 .  DEFINITION   //  LA TENEUR DE L'ECHANTILLON EN SULFITE OU EN HYDROGENOSULFITE DETERMINEE SELON CETTE METHODE EST EXPRIMEE EN POURCENTAGE DE LA MASSE DE DIOXYDE DE SOUFRE .  2 .  PRINCIPE   //  APRES ACIDIFICATION DE L'ECHANTILLON, LE DIOXYDE DE SOUFRE LIBERE EST DISTILLE ET RECUEILLI DANS UNE SOLUTION DE PEROXYDE D'HYDROGENE . L'ACIDE SULFURIQUE FORME EST TITRE A L'AIDE D'UNE SOLUTION TITREE D'HYDROXYDE DE SODIUM .  3 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  3.1 .  PEROXYDE D'HYDROGENE 0,2 % ( M/V ). CE REACTIF DOIT ETRE PREPARE QUOTIDIENNEMENT .  3.2 .  ACIDE ORTHOPHOSPHORIQUE ( D 25  4 = 1,75 ).  3.3 .  METHANOL .  3.4 .  SOLUTION TITREE D'HYDROXYDE DE SODIUM : 0,01 M .  3.5 .  AZOTE .  3.6 .  INDICATEUR : MELANGE 1 : 1 ( V/V ) DE ROUGE DE METHYLE ( 0,03 % M/V DANS DE L'ETHANOL ) ET DE BLEU DE METHYLENE ( 0,05 % M/V DANS DE L'ETHANOL ). FILTRER LA SOLUTION .  4 .  APPAREILLAGE  4.1 .  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE .  4.2 .  APPAREIL A DISTILLER ( VOIR SCHEMA ).  5 .  MODE OPERATOIRE  5.1 .  PESER AVEC PRECISION ENVIRON 2,5 G D'ECHANTILLON ET LES INTRODUIRE DANS LE BALLON DE DISTILLATION A ( VOIR SCHEMA ).  5.2 .  AJOUTER 60 ML D'EAU ET 50 ML DE METHANOL ( 3.3 ), ET MELANGER .  5.3 .  INTRODUIRE 10 ML DE PEROXYDE D'HYDROGENE ( 3.1 ), 60 ML D'EAU ET QUELQUES GOUTTES D'INDICATEUR ( 3.6 ) DANS LE RECIPIENT D DESTINE A RECEVOIR LE DISTILLAT ( VOIR SCHEMA ). AJOUTER QUELQUES GOUTTES D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 3.4 ) JUSQU'A CE QUE L'INDICATEUR VIRE AU VERT .  5.4 .  PROCEDER DE MEME DANS LE FLACON LAVEUR E ( VOIR SCHEMA ).  5.5 .  ASSEMBLER L'APPAREIL ET REGLER LE DEBIT D'AZOTE ( 3.5 ) A ENVIRON 60 BULLES PAR MINUTE .  5.6 .  INTRODUIRE PAR L'ENTONNOIR 15 ML D'ACIDE ORTHOPHOSPHORIQUE ( 3.2 ) DANS LE FLACON DE DISTILLATION A .  5.7 .  PORTER RAPIDEMENT A EBULLITION ET LAISSER BOUILLIR REGULIEREMENT PENDANT 30 MINUTES .  5.8 .  DECONNECTER LE RECIPIENT D CONTENANT LE DISTILLAT . RINCER LE TUBE ET, ENSUITE, TITRER AU MOYEN D'UNE SOLUTION D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 3.4 ) JUSQU'A CE QUE L'INDICATEUR ( 3.6 ) VIRE AU VERT .  6 .  CALCUL   //  CALCULER LA TENEUR EN SULFITE OU EN HYDROGENOSULFITE DE L'ECHANTILLON EN POURCENTAGE DE MASSE A L'AIDE DE LA FORMULE SUIVANTE :  1.2.3.4 //  //  % M/M DE DIOXYDE DE SOUFRE =  3,2 MV M   //  OU :   //  //  1.2.3 //  M  = CONCENTRATION MOLAIRE DE LA SOLUTION D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 3.4 ),   //  V  = VOLUME ( EN ML ) D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 3.4 ) NECESSAIRE POUR LE TITRAGE ( 5.8 ),   //  M  = MASSE ( EN G ) DE L'ECHANTILLON ( 5.1 ).  1.27 .  REPETABILITE ( 1 )   //  POUR UNE TENEUR EN DIOXYDE DE SOUFRE DE 0,2 % M/M, LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DE DEUX DOSAGES PARALLELES EFFECTUES SUR LE MEME ECHANTILLON NE DOIT PAS DEPASSER 0,006 %.   APPAREIL A DISTILLATION DE L'ANHYDRIDE SULFUREUX SELON TANNER  TOUTES LES DIMENSIONS SONT DONNEES EN MILLIMETRES  IDENTIFICATION ET DOSAGE DES CHLORATES DE METAUX ALCALINS  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION  LA METHODE DECRIT L'IDENTIFICATION ET LE DOSAGE DES CHLORATES DANS LES DENTIFRICES ET AUTRES PRODUITS COSMETIQUES .  A . IDENTIFICATION  1.21 .  PRINCIPE   //  LES CHLORATES SONT SEPARES DES AUTRES HALOGENATES PAR CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE ET DETECTES PAR FORMATION DE L'IODE OBTENUE PAR OXYDATION DE L'IODURE DE POTASSIUM .  2 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  2.1 .  SOLUTION DE REFERENCE : SOLUTIONS AQUEUSES DE CHLORATE, BROMATE ET IODATE DE POTASSIUM ( 0,2 % M/V ) FRAICHEMENT PREPAREES .  2.2 .  SOLVANT DE DEVELOPPEMENT : SOLUTION D'AMMONIAQUE ( 28 % M/V)/ACETONE/BUTANOL ( 60/130/30 V/V/V ).  2.3 .  SOLUTION AQUEUSE D'IODURE DE POTASSIUM ( 5 % M/V ).  2.4 .  SOLUTION D'AMIDON ( 1 A 5 % M/V ).  2.5 .  ACIDE CHLORHYDRIQUE M .  2.6 .  PLAQUES DE CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE PRETES A L'EMPLOI, REVETUES DE CELLULOSE ( EPAISSEUR :  0,25 MM ).  3 .  APPAREILLAGE   //  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE POUR CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE .  4 .  MODE OPERATOIRE  4.1 .  EXTRAIRE ENVIRON 1 G DE L'ECHANTILLON AVEC DE L'EAU, FILTRER ET DILUER JUSQU'A 25 ML ENVIRON .  4.2 .  DEPOSER SUR LA PLAQUE ( 2.6 ) 2 *L DE LA SOLUTION ( 4.1 ) ET 2 *L DE CHACUNE DES TROIS SOLUTIONS DE REFERENCE ( 2.1 ).  4.3 .  INTRODUIRE LA PLAQUE DANS UNE CUVE ET DEVELOPPER PAR CHROMATOGRAPHIE ASCENDANTE SUR TROIS QUARTS ENVIRON DE LA LONGUEUR DE LA PLAQUE A L'AIDE DU SOLVANT ( 2.2 ).  4.4 .  RETIRER LA PLAQUE DE LA CUVE ET LAISSER EVAPORER LE SOLVANT ( 2 HEURES ENVIRON ).  4.5 .  PULVERISER SUR LA PLAQUE LA SOLUTION D'IODURE DE POTASSIUM ( 2.3 ) ET LAISSER SECHER PENDANT ENVIRON 5 MINUTES .  4.6 .  PULVERISER SUR LA PLAQUE LA SOLUTION D'AMIDON ( 2.4 ) ET LAISSER SECHER PENDANT ENVIRON 5 MINUTES .  4.7 .  PULVERISER SUR LA PLAQUE DE L'ACIDE CHLORHYDRIQUE ( 2.5 ).  5 .  LECTURE   //  EN PRESENCE DE CHLORATE, IL APPARAIT UNE TACHE BLEUE ( EVENTUELLEMENT BRUNE ) APRES UNE DEMI-HEURE .   //  LES VALEURS DE RF SONT LES SUIVANTES :  1.2.3 //   //  //  //  //  RF   //   //  //  //  IODATE  0 - 0,2   //  BROMATE  0,5 - 0,6   //  CHLORATE  0,7 - 0,8   //   //  //  1.2 //  ON NOTERA QUE LES BROMATES ET LES IODATES PRODUISENT DES REACTIONS IMMEDIATES ET ON VEILLERA A NE PAS CONFONDRE LES TACHES DE BROMATE ET DE CHLORATE .  B . DOSAGE  1.21 .  DEFINITION   //  LA TENEUR DE L'ECHANTILLON EN CHLORATE DETERMINEE SELON CETTE METHODE EST EXPRIMEE EN POURCENTAGE DE MASSE DE CHLORATE .  2 .  PRINCIPE   //  LE CHLORATE EST REDUIT PAR DU ZINC EN POUDRE EN MILIEU ACIDE . LE CHLORURE FORME EST TITRE POTENTIOMETRIQUEMENT PAR LE NITRATE D'ARGENT . UN DOSAGE SIMILAIRE AVANT LA REDUCTION PERMET DE DECELER LA PRESENCE EVENTUELLE D'HALOGENURES .  3 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  3.1 .  ACIDE ACETIQUE 80 % M/M .  3.2 .  ZINC EN POUDRE .  3.3 .  SOLUTION TITREE DE NITRATE D'ARGENT 0,1 M .  4 .  APPAREILLAGE  4.1 .  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE .  4.2 .  POTENTIOGRAPHE EQUIPE D'UNE ELECTRODE INDICATRICE D'ARGENT .  5 .  MODE OPERATOIRE  5.1 .  PREPARATION DE L'ECHANTILLON   //  PESER AVEC PRECISION UNE QUANTITE ( M ) DE 2 G ENVIRON DANS UN TUBE A CENTRIFUGER . AJOUTER ENVIRON 15 ML D'ACIDE ACETIQUE ( 3.1 ) ET MELANGER SOIGNEUSEMENT . ATTENDRE 30 MINUTES ET CENTRIFUGER PENDANT 15 MINUTES A 2 000 TOURS/MN . TRANSVASER LA SOLUTION SURNAGEANTE DANS UNE FIOLE JAUGEE DE 50 ML . REPETER DEUX FOIS LA CENTRIFUGATION EN AJOUTANT 15 ML D'ACIDE ACETIQUE ( 3.1 ) AU RESIDU . RECUEILLIR LES SOLUTIONS CONTENANT LE CHLORATE DANS LA MEME FIOLE JAUGEE . COMPLETER AU TRAIT DE JAUGE AVEC DE L'ACIDE ACETIQUE ( 3.1 ).  5.2 .  REDUCTION DU CHLORATE   //  PRELEVER 20 ML DE LA SOLUTION ( 5.1 ) ET AJOUTER 0,6 G DE ZINC EN POUDRE ( 3.2 ). PORTER A EBULLITION DANS UN BALLON SURMONTE D'UN REFRIGERANT ASCENDANT . APRES 30 MINUTES D'EBULLITION, LAISSER REFROIDIR ET FILTRER . RINCER LE BALLON AVEC DE L'EAU, FILTRER ET COMBINER LE FILTRAT ET LES EAUX DE RINCAGE .  5.3 .  DOSAGE DU CHLORURE   //  TITRER LA SOLUTION ( 5.2 ) AVEC DU NITRATE D'ARGENT ( 3.3 ) AU MOYEN DU POTENTIOGRAPHE ( 4.2 ). TITRER DE LA MEME MANIERE 20 ML DE SOLUTION ( 5.1 ) AVEC DU NITRATE D'ARGENT ( 3.3 ).   //  SI LE PRODUIT CONTIENT DES DERIVES DE BROME OU D'IODE SUSCEPTIBLES DE LIBERER DES BROMURES OU DES IODURES APRES LA REDUCTION, LA COURBE DE TITRAGE PRESENTE PLUSIEURS POINTS D'INFLEXION . DANS CE CAS, LE VOLUME DE LA SOLUTION TITREE ( 3.3 ) CORRESPONDANT AU CHLORURE EST REPRESENTE PAR LA DIFFERENCE ENTRE LES VOLUMES CORRESPONDANT AUX DERNIER ET AVANT-DERNIER POINTS D'INFLEXION .  6 .  CALCUL   //  LA TENEUR EN CHLORATE DE L'ECHANTILLON (% M/M ) EST CALCULEE SELON LA FORMULE :  1.2.3.4 //  //  % CHLORATE M/M =  20,9 ( V - V ') M M   //  OU :   //  //  1.2.3 //  V  = VOLUME EN ML DE LA SOLUTION DE NITRATE D'ARGENT ( 3.3 ) UTILISEE POUR LE TITRAGE DE LA SOLUTION ( 5.2 ),   //  V'  = VOLUME EN ML DE LA SOLUTION DE NITRATE D'ARGENT ( 3.3 ) UTILISEE POUR LE TITRAGE DE LA SOLUTION ( 5.1 ),   //  M  = MOLARITE DE LA SOLUTION DE NITRATE D'ARGENT ( 3.3 ),   //  M  = MASSE EN G DE L'ECHANTILLON ( 5.1 ).  1.27 .  REPETABILITE ( 1 )   //  POUR UNE TENEUR EN CHLORATE DE 3 A 5 % M/M, LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DES DEUX DOSAGES PARALLELES EFFECTUES SUR LE MEME ECHANTILLON NE DOIT PAS DEPASSER 0,07 % M/M .  IDENTIFICATION ET DOSAGE DE L'IODATE SODIQUE  OBJET ET CHAMP D'APPLICATION  LA METHODE CONVIENT A L'IDENTIFICATION ET AU DOSAGE DE L'IODATE SODIQUE DANS LES PRODUITS COSMETIQUES RINCES APRES USAGE .  A . IDENTIFICATION  1.21 .  PRINCIPE   //  L'IODATE SODIQUE EST SEPARE DES AUTRES HALOGENATES PAR CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE ET IDENTIFIE PAR L'OXYDATION DE L'IODURE EN IODE .  2 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE .  2.1 .  SOLUTIONS DE REFERENCE : SOLUTIONS AQUEUSES DE CHLORATE, DE BROMATE ET D'IODATE DE POTASSIUM ( 0,01 % M/V ) FRAICHEMENT PREPAREES .  2.2 .  SOLVANT DE DEVELOPPEMENT : SOLUTION D'AMMONIAQUE ( 28 % M/V)/ACETONE/BUTANOL ( 60/130/30 V/V/V ).  2.3 .  SOLUTION AQUEUSE D'IODURE DE POTASSIUM ( 5 % M/V ).  2.4 .  SOLUTION D'AMIDON ( 1 A 5 % M/V ).  2.5 .  ACIDE CHLORHYDRIQUE M .  3 .  APPAREILLAGE  3.1 .  PLAQUES DE CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE PRETES A L'EMPLOI REVETUES DE CELLULOSE ( 0,25 MM ).  3.2 .  MATERIEL COURANT DE CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE .  4 .  MODE OPERATOIRE  4.1 .  EXTRAIRE ENVIRON 1 G DE L'ECHANTILLON AVEC DE L'EAU, FILTRER ET DILUER A ENVIRON 10 ML .  4.2 .  DEPOSER 2 *L DE CETTE SOLUTION SUR LA LIGNE DE BASE DE LA PLAQUE ( 3.1 ) AINSI QUE 2 *L DE CHACUNE DES TROIS SOLUTIONS DE REFERENCE ( 2.1 ).  4.3 .  PLACER LA PLAQUE DANS UNE CUVE DE DEVELOPPEMENT ET DEVELOPPER PAR CHROMATOGRAPHIE ASCENDANTE SUR LES TROIS QUARTS ENVIRON DE LA LONGUEUR DE LA PLAQUE A L'AIDE DU SOLVANT ( 2.2 ).  4.4 .  RETIRER LA PLAQUE DE LA CUVE ET LAISSER S'EVAPORER LE SOLVANT A LA TEMPERATURE AMBIANTE . ( NOTE : L'OPERATION PEUT DEMANDER 2 HEURES .)  4.5 .  PULVERISER LA PLAQUE AVEC DE L'IODURE DE POTASSIUM ( 2.3 ) ET LAISSER SECHER PENDANT ENVIRON 5 MINUTES .  4.6  PULVERISER ENSUITE AVEC LA SOLUTION D'AMIDON ( 2.4 ) ET LAISSER SECHER PENDANT ENVIRON 5 MINUTES .  4.7 .  PULVERISER FINALEMENT AVEC DE L'ACIDE CHLORHYDRIQUE ( 2.5 ).  5 .  EVALUATION   //  EN PRESENCE D'IODATE, UNE TACHE BLEUE ( EVENTUELLEMENT BRUNE OU LE DEVENANT ) APPARAIT IMMEDIATEMENT, LA VALEUR RF ETANT APPROXIMATIVEMENT DE 0 A 0,2 .   //  ON NOTERA QUE LES BROMATES REAGISSENT IMMEDIATEMENT A DES VALEURS RF DE 0,5 A 0,6 ET QUE LES CHLORATES REAGISSENT, APRES 30 MINUTES ENVIRON, A DES VALEURS DE RF CORRESPONDANT A 0,7 A 0,8 .  B . DOSAGE1.21 .  DEFINITION   //  LA TENEUR DE L'ECHANTILLON EN IODATE SODIQUE DETERMINEE PAR CETTE METHODE EST EXPRIMEE EN POURCENTAGE DE LA MASSE D'IODATE SODIQUE .  2 .  PRINCIPE   //  L'IODATE SODIQUE EST DISSOUS DANS L'EAU ET DOSE PAR CHROMATOGRAPHIE LIQUIDE A HAUTE PRESSION, EN UTILISANT ( EN SERIE ) UNE COLONNE PHASE INVERSE C 18 ET UNE COLONNE ECHANGEUSE D'ANIONS .  3 .  REACTIFS   //  TOUS LES REACTIFS DOIVENT ETRE DE QUALITE ANALYTIQUE . ILS DOIVENT NOTAMMENT CONVENIR POUR LA CHROMATOGRAPHIE LIQUIDE A HAUTE PRESSION .  3.1 .  ACIDE CHLORHYDRIQUE, 4 M .  3.2 .  SOLUTION AQUEUSE DE SULFITE SODIQUE, 5 % M/V .  3.3 .  SOLUTION-MERE D'IODATE SODIQUE : PREPARER UNE SOLUTION CONTENANT 50 MG D'IODATE DE SODIUM PAR 100 ML D'EAU .  3.4 .  DIHYDROGENOORTHOPHOSPHATE DE POTASSIUM .  3.5 .  HYDROGENOORTHOPHOSPHATE DISODIQUE 2H2O .  3.6 .  PHASE MOBILE DE CHROMATOGRAPHIE EN PHASE LIQUIDE A HAUTE PRESSION . DISSOUDRE 3,88 G DE DIHYDROGENOORTHOPHOSPHATE DE POTASSIUM ( 3.4 ) ET 1,19 G D'HYDROGENOORTHOPHOSPHATE DISODIQUE 2H2O ( 3.5 ) DANS 1 L D'EAU .   //  LE PH DE LA SOLUTION OBTENUE EST 6,2 .  3.7 .  PAPIER INDICATEUR UNIVERSEL, PH 1-11 .  4 .  APPAREILLAGE   //  MATERIEL COURANT DE LABORATOIRE .  4.1 .  PAPIER FILTRE DE 110 MM DE DIAMETRE, SCHLEICHER ET SCHULL NO 575 OU EQUIVALENT .  4.2 .  CHROMATOGRAPHE LIQUIDE A HAUTE PRESSION MUNI D'UN DETECTEUR A LONGUEUR D'ONDE VARIABLE .  4.3 .  COLONNES : D'UNE LONGUEUR DE 120 MM ET D'UN DIAMETRE INTERNE DE 4,6 MM, AU NOMBRE DE 2, EN SERIE, PREMIERE COLONNE CONDITIONNEE EN NUCLEOSIL ( R ) 5 C18 OU EQUIVALENT, DEUXIEME COLONNE CONDITIONNEE EN VYDAC, TM - 301-SB OU EQUIVALENT .  5 .  MODE OPERATOIRE  5.1 .  PREPARATION DES ECHANTILLONS  5.1.1 .  ECHANTILLONS FLUIDES ( SHAMPOOINGS )   //  PESER AVEC PRECISION UNE PRISE D'ESSAI D'ENVIRON 1,0 G DANS UN TUBE DE VERRE GRADUE ET BOUCHE A L'EMERI OU DANS UNE FIOLE JAUGEE DE 10 ML . COMPLETER AU TRAIT AVEC DE L'EAU ET MELANGER . SI BESOIN, FILTRER LA SOLUTION . DETERMINER LA QUANTITE D'IODATE DANS LA SOLUTION AU MOYEN DE LA CHROMATOGRAPHIE LIQUIDE A HAUTE PRESSION COMME DECRIT AU POINT 5.2 .  5.1.2 .  ECHANTILLONS SOLIDES ( SAVON )   //  DIVISER FINEMENT UNE PARTIE DE L'ECHANTILLON ET PESER AVEC PRECISION UNE PRISE D'ESSAI D'ENVIRON 1,0 G, ET L'INTRODUIRE DANS UN TUBE EN VERRE GRADUE ET BOUCHE A L'EMERI DE 100 ML .  //  REMPLIR D'EAU JUSQU'A 50 ML ET AGITER ENERGIQUEMENT PENDANT 1 MINUTE; CENTRIFUGER OU FILTRER A TRAVERS UN FILTRE EN PAPIER OU LAISSER REPOSER LE MELANGE PENDANT UNE NUIT AU MOINS, AGITER ENERGIQUEMENT LA SOLUTION GELATINEUSE ET FILTRER CELLE-CI A TRAVERS UN FILTRE EN PAPIER ( 4.1 ).   //  DOSER L'IODATE DANS LE FILTRAT PAR CHROMATOGRAPHIE LIQUIDE A HAUTE PRESSION COMME DECRIT AU POINT 5.2 .  5.2 .  CHROMATOGRAPHIE   //  DEBIT : 1ML/MN .   //  LONGUEUR D'ONDE DE DETECTEUR : 210 NM .   //  VOLUME INJECTE : 10 *L .   //  MESURE : SURFACE DU PIC .  5.3 .  ETALONNAGE   //  PIPETER RESPECTIVEMENT 1,0, 2,0, 5,0, 10,0 ET 20,0 ML DE LA SOLUTION-MERE D'IODATE SODIQUE ( 3.3 ) DANS DES FIOLES JAUGEES DE 50 ML . PORTER AU TRAIT ET AGITER . LES SOLUTIONS AINSI OBTENUES CONTIENNENT RESPECTIVEMENT 0,01, 0,02, 0,05, 0,10 ET 0,20 MG D'IODATE SODIQUE PAR ML . INJECTER 10 *L DE CHAQUE SOLUTION DE REFERENCE DANS LE CHROMATOGRAPHE LIQUIDE ( 4.3 ). DETERMINER LA SURFACE DU PIC POUR L'IODATE ET ETABLIR UNE COURBE D'ETALONNAGE : SURFACE DE PIC - CONCENTRATION D'IODATE .  6 .  CALCUL   //  CALCULER EN IODATE SODIQUE, EN POURCENTAGE DE LA MASSE (% M/M ) EN UTILISANT LA FORMULE :  1.2.3.4 //  //  % ( M/M ) D'IODATE SODIQUE =  VC 10 M   //  OU :   //  //  1.2.3 //  M  = LA MASSE, EXPRIMEE EN G, DE LA PRISE D'ESSAI ( 5.1 ),   //  V  = LE VOLUME TOTAL DE LA SOLUTION D'ECHANTILLON, EXPRIME EN ML, OBTENU COMME DECRIT AU POINT 5.1,   //  C  = LA CONCENTRATION, EXPRIMEE EN MG/ML, D'IODATE SODIQUE OBTENUE A PARTIR DE LA COURBE D'ETALONNAGE .  1.27 .  REPETABILITE ( 1 )   //  POUR UNE TENEUR EN IODATE SODIQUE DE 0,1 % ( M/M ), LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DE DEUX DOSAGES EFFECTUES EN PARALLELE SUR LE MEME ECHANTILLON NE DOIT PAS DEPASSER 0,002 %.  8 .  CONFIRMATION  8.1 .  PRINCIPE   //  EN SOLUTION ACIDE, L'IODATE ( IO3 -) EST REDUIT EN IODURE ( I -) PAR LE SULFITE ET LA SOLUTION OBTENUE EST EXAMINEE PAR CHROMOGRAPHIE EN PHASE LIQUIDE A HAUTE PRESSION . SI UN PIC AYANT UN TEMPS DE RETENTION CORRESPONDANT AU TEMPS DE RETENTION DE L'IODATE DISPARAIT APRES TRAITEMENT AU SULFITE, LE PIC ORIGINAL PEUT ETRE CONSIDERE COMME DE L'IODATE .  8.2 .  MODE OPERATOIRE   //  PIPETER DANS UNE FIOLE CONIQUE UNE PRISE D'ESSAI DE 5 ML DE LA SOLUTION D'ECHANTILLON OBTENUE AU  POINT 5.1 . AJUSTER LE PH DE LA SOLUTION A UNE VALEUR INFERIEURE OU EGALE A 3 A L'AIDE D'ACIDE CHLORHYDRIQUE ( 3.1 ) ET DU PAPIER UNIVERSEL INDICATEUR DE PH ( 3.7 ) AJOUTER TROIS GOUTTES DE LA SOLUTION DE SULFITE SODIQUE ( 3.2 ) ET AGITER . INJECTER 10 *L DE LA SOLUTION DANS LE CHROMATOGRAPHE LIQUIDE ( 4.2 ). COMPARER LE CHROMATOGRAMME AVEC CELUI OBTENU DE LA MANIERE DECRITE AU POINT 5 POUR LE MEME ECHANTILLON .


title: Directive 2009/106/CE de la Commission du 14 août 2009 modifiant la directive 2001/112/CE du Conseil relative aux jus de fruits et à certains produits similaires destinés à l’alimentation humaine

text:
               15.8.2009

               FR

               Journal officiel de l'Union européenne

               L 212/42

      DIRECTIVE 2009/106/CE DE LA COMMISSION

   du 14 août 2009
   modifiant la directive 2001/112/CE du Conseil relative aux jus de fruits et à certains produits similaires destinés à l’alimentation humaine
   LA COMMISSION DES COMMUNAUTÉS EUROPÉENNES,
   vu le traité instituant la Communauté européenne,
   vu la directive 2001/112/CE du Conseil du 20 décembre 2001 relative aux jus de fruits et à certains produits similaires destinés à l’alimentation humaine (1), et notamment son article 7,
   considérant ce qui suit:

               (1)

               Afin d’améliorer la libre circulation des jus de fruits et de certains produits similaires à l’intérieur de la Communauté, la directive 2001/112/CE a établi des dispositions spécifiques en matière de production, de composition et d’étiquetage des produits concernés. Il y a lieu que ces règles soient adaptées au progrès technique et tiennent compte de l’évolution des normes internationales en la matière, en particulier de la norme du Codex pour les jus et nectars de fruits (norme Codex 247-2005), adoptée par la commission du Codex Alimentarius lors de sa vingt-huitième session qui s’est tenue du 4 au 9 juillet 2005, et du code de bonnes pratiques de l’Association de l’industrie des jus et nectars de fruits et de légumes de la CE (AIJN).

               (2)

               Cette norme du Codex établit en particulier des facteurs de qualité et des normes d’étiquetage pour les jus de fruits et les produits similaires. Le code de bonnes pratiques de l’AIJN introduit également des facteurs de qualité pour les jus de fruits obtenus à partir de concentré et fait office de norme de référence internationale pour l’autorégulation dans l’industrie des jus de fruits. Dans la mesure du possible, il convient de mettre la directive 2001/112/CE en conformité avec ces normes.

               (3)

               La norme du Codex en question établit que le produit obtenu en reconstituant du jus de fruits concentré est considéré comme du «jus de fruits à base de concentré». Il y a lieu que la norme d’étiquetage correspondante dans la Communauté utilise également ces mentions reconnues à l’échelon international. Afin de garantir la cohérence de l’étiquetage dans tous les États membres, il convient de modifier, le cas échéant, les versions linguistiques afin qu’elles soient conformes à la formulation du Codex.

               (4)

               La norme du Codex en question et le code de bonnes pratiques de l’AIJN fixent également des valeurs Brix minimales pour une liste de jus de fruits à base de concentré; ces valeurs facilitant l’évaluation des exigences de qualité minimales, il convient de les prendre en considération dans la mesure où elles correspondent aux valeurs de référence utilisées dans la Communauté.

               (5)

               Il y a lieu de modifier la directive 2001/112/CE en conséquence.

               (6)

               Les mesures prévues par la présente directive sont conformes à l’avis du comité permanent de la chaîne alimentaire et de la santé animale,

         A ARRÊTÉ LA PRÉSENTE DIRECTIVE:
   Article premier
   La directive 2001/112/CE est modifiée comme suit:

               1)

                  (La version FR n’est pas concernée par ce point.)

               2)

               À l’annexe I, partie I (Définitions), paragraphe 1, point b), le deuxième alinéa est remplacé par le texte suivant:
               «Le produit ainsi obtenu présente des caractéristiques organoleptiques et analytiques au moins équivalentes à celles d’un type moyen de jus obtenu à partir de fruits de la même espèce au sens du point a). Les valeurs Brix minimales applicables aux jus de fruits à base de concentré figurent à l’annexe V.»

               3)

               Une annexe V telle que celle qui figure à l’annexe de la présente directive est ajoutée.

         Article 2
   Les États membres mettent en vigueur les dispositions législatives, réglementaires et administratives nécessaires pour se conformer à la présente directive avant le 1er janvier 2011. Ils communiquent immédiatement le texte de ces dispositions à la Commission.
   Lorsque les États membres adoptent ces dispositions, celles-ci contiennent une référence à la présente directive ou sont accompagnées d’une telle référence lors de leur publication officielle.
   Les modalités de cette référence sont arrêtées par les États membres.
   Article 3
   La présente directive entre en vigueur le septième jour suivant celui de sa publication au Journal officiel de l’Union européenne.
   Article 4
   Les États membres sont destinataires de la présente directive.

      Fait à Bruxelles, le 14 août 2009.

            Par la Commission

         Mariann FISCHER BOEL

            Membre de la Commission

      (1)  JO L 10 du 12.1.2002, p. 58.

      ANNEXE

            «ANNEXE V

                        Nom commun du fruit

                        Nom botanique

                        Valeurs Brix minimales pour le jus de fruits reconstitué et la purée de fruits reconstituée

                        Pomme (*)

                           Malus domestica Borkh.

                        11,2

                        Abricot (**)

                           Prunus armeniaca L.

                        11,2

                        Banane (**)

                           Musa sp.

                        21,0

                        Cassis (*)

                           Ribes nigrum L.

                        11,6

                        Raisin (*)

                           Vitis vinifera L. ou ses hybrides

                           Vitis labrusca L. ou ses hybrides

                        15,9

                        Pamplemousse (*)

                           Citrus x paradise Macfad.

                        10,0

                        Goyave (**)

                           Psidium guajava L.

                        9,5

                        Citron (*)

                           Citrus limon (L.) Burm.f.

                        8,0

                        Mangue (**)

                           Mangifera indica L.

                        15,0

                        Orange (*)

                           Citrus sinensis (L.) Osbeck

                        11,2

                        Fruit de la passion (*)

                           Passiflora edulis Sims

                        13,5

                        Pêche (**)

                           Prunus persica (L.) Batsch var. persica

                        10,0

                        Poire (**)

                           Pyrus communis L.

                        11,9

                        Ananas (*)

                           Ananas comosus (L.) Merr.

                        12,8

                        Framboise (*)

                           Rubus idaeus L.

                        7,0

                        Cerise acide (*)

                           Prunus cerasus L.

                        13,5

                        Fraise (*)

                           Fragaria x ananassa Duch.

                        7,0

                        Mandarine (*)

                           Citrus reticulata Blanco

                        11,2

                        Si un jus à base de concentré est obtenu à partir d’un fruit ne figurant pas dans la liste ci-dessus, la valeur Brix minimale du jus reconstitué équivaut à la valeur Brix du jus extrait à partir du fruit utilisé pour produire le concentré.
                        Pour les produits marqués d’un astérisque (*), qui sont produits en tant que jus, une densité relative minimale est déterminée par rapport à une eau à 20/20 °C.
                        Pour les produits marqués de deux astérisques (**), qui sont produits en tant que purées, seule une valeur Brix minimale non corrigée (sans correction de l’acidité) est déterminée.
                        Pour ce qui est du cassis, de la goyave, de la mangue et du fruit de la passion, les valeurs Brix minimales ne s’appliquent qu’au jus de fruit reconstitué et à la purée de fruit reconstituée qui sont produits à l’intérieur de la Communauté.»


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32004L0060

Directive 2004/60/CE de la Commission du 23 avril 2004 modifiant la directive 91/414/CEE du Conseil en vue d'y inscrire la substance active quinoxyfen (Texte présentant de l'intérêt pour l'EEE)

Journal officiel n° L 120 du 24/04/2004 p. 0039 - 0042

Directive 2004/60/CE de la Commissiondu 23 avril 2004modifiant la directive 91/414/CEE du Conseil en vue d'y inscrire la substance active quinoxyfen(Texte présentant de l'intérêt pour l'EEE)LA COMMISSION DES COMMUNAUTÉS EUROPÉENNES,vu le traité instituant la Communauté européenne,vu la directive 91/414/CEE du Conseil du 15 juillet 1991 concernant la mise sur le marché des produits phytopharmaceutiques(1), modifiée en dernier lieu par la directive (CE) 2004/30/CE de la Commission(2), et notamment son article 6, paragraphe 1,considérant ce qui suit:(1) Conformément à l'article 6, paragraphe 2, de la directive 91/414/CEE, le Royaume-Uni a reçu, le 1er août 1995, une demande de Dow Elanco Europe (désormais Dow Agro Sciences), visant à faire inscrire la substance active quinoxyfen à l'annexe I de la directive précitée. Par la décision 96/457/CE de la Commission(3), il a été confirmé que le dossier était "complet", c'est-à-dire qu'il pouvait être considéré comme satisfaisant en principe aux exigences en matière de données et d'informations prévues aux annexes II et III de la directive 91/414/CEE.(2) Les effets de cette substance active sur la santé humaine et l'environnement ont été évalués conformément aux dispositions de l'article 6, paragraphes 2 et 4, de la directive 91/414/CEE pour les utilisations proposées par le demandeur. Le 11 octobre 1996, l'État membre rapporteur désigné a soumis à la Commission un projet de rapport d'évaluation concernant la substance.(3) Ce projet de rapport d'évaluation a été examiné par les États membres et la Commission dans le cadre du comité permanent de la chaîne alimentaire et de la santé animale. Cet examen a été achevé le 28 novembre 2003 sous la forme d'un rapport d'examen de la Commission sur le quinoxyfen.(4) Les documents et informations concernant la substance active ont également été soumis au comité scientifique des plantes en vue d'une consultation séparée. Le comité a été invité à formuler des observations sur l'accumulation de la substance dans le sol et sur son incidence potentielle sur l'environnement. Dans son avis(4), le comité a noté que les études disponibles et l'étude de terrain sur la dégradation de la matière organique ("étude du sac poubelle") en particulier ne démontrent pas d'une manière convaincante une incidence acceptable sur l'environnement, du fait principalement d'une efficacité insuffisante en matière statistique de la conception expérimentale. Le comité a encore observé qu'une fraction du quinoxyfen utilisé peut se volatiliser après son utilisation sur une culture. Bien que les résultats disponibles indiquent une décomposition rapide de la substance dans l'air, le comité a suggéré que les mesures de la demi-vie soient recommencées après la mise au point de systèmes appropriés pour l'évaluation des risques pour l'environnement du transport atmosphérique des produits phytopharmaceutiques. Cette recommandation du comité a été prise en considération dans le rapport d'examen de la substance active.L'étude de terrain jugée insuffisante en ce qui concerne la décomposition de la matière organique a été recommencée avec un protocole d'essai amélioré. Aucun impact du quinoxyfen sur la décomposition de la matière organique n'a été observé.(5) Conformément à l'article 6, paragraphe 4, de la directive 91/414/CEE et compte tenu de l'éventualité d'une décision défavorable pour le quinoxyfen, la Commission a organisé, le 13 février 2003, une réunion tripartite avec l'auteur de la notification principale et l'État membre rapporteur. L'auteur de la notification principale a fourni des informations supplémentaires afin de répondre aux réserves initiales.(6) Les différents examens effectués ont montré que les produits phytopharmaceutiques contenant du quinoxyfen peuvent satisfaire d'une manière générale aux exigences énoncées à l'article 5, paragraphe 1, points a) et b), et à l'article 5, paragraphe 3, de la directive 91/414/CEE, notamment en ce qui concerne les utilisations examinées et précisées dans le rapport d'examen de la Commission. Il convient donc d'inscrire cette substance active à l'annexe I, afin de veiller à ce que, dans tous les États membres, les autorisations de produits phytopharmaceutiques contenant ladite substance active puissent être accordées conformément aux dispositions de la directive.(7) Le rapport d'examen est requis pour la bonne mise en oeuvre par les États membres de plusieurs chapitres des principes uniformes énoncés dans la directive 91/414/CEE. Il convient également que le rapport d'examen finalisé, à l'exception des informations confidentielles au sens de l'article 14 de la directive 91/414/CEE, soit tenu ou mis à disposition par les États membres pour consultation par toute partie intéressée.(8) Un délai raisonnable est nécessaire, après l'inscription, pour permettre aux États membres d'appliquer les dispositions de la directive 91/414/CEE en ce qui concerne les produits phytopharmaceutiques contenant du quinoxyfen et, en particulier, de réexaminer les autorisations provisoires existantes et, avant l'expiration de ce délai, de transformer celles-ci en autorisations complètes, de les modifier ou de les retirer, conformément aux dispositions de la directive 91/414/CEE.(9) Il convient donc de modifier la directive 91/414/CEE en conséquence.(10) Les mesures prévues à la présente directive sont conformes à l'avis du comité permanent de la chaîne alimentaire et de la santé animale,A ARRÊTÉ LA PRÉSENTE DIRECTIVE:Article premierL'annexe I de la directive 91/414/CEE est modifiée conformément à l'annexe de la présente directive.Article 2Les États membres adoptent et publient au plus tard le 28 février 2005 les dispositions législatives, réglementaires et administratives nécessaires pour se conformer à la présente directive. Ils en informent immédiatement la Commission.Ils appliquent ces dispositions à compter du 1er mars 2005.Lorsque les États membres adoptent ces dispositions, celles-ci contiennent une référence à la présente directive ou sont accompagnées d'une telle référence lors de leur publication officielle. Les modalités de cette référence sont arrêtées par les États membres.Article 31. Les États membres réexaminent l'autorisation accordée pour chaque produit phytopharmaceutique contenant du quinoxyfen pour faire en sorte qu'il soit satisfait aux exigences relatives à cette substance active énoncées à l'annexe I de la directive 91/414/CEE. S'il y a lieu, ils modifient ou retirent l'autorisation conformément à la directive 91/414/CEE avant le 28 février 2005.2. Tout produit phytopharmaceutique contenant du quinoxyfen, en tant que substance active unique ou associée à d'autres substances actives inscrites à l'annexe I de la directive 91/414/CEE, fait l'objet d'une réévaluation par les États membres au plus tard le 31 août 2004, conformément aux principes uniformes énoncés à l'annexe VI de la directive 91/414/CEE et sur la base d'un dossier satisfaisant aux exigences de son annexe III. En fonction de cette évaluation, les États membres déterminent si le produit remplit les conditions énoncées à l'article 4, paragraphe 1, points b), c), d) et e), de la directive 91/414/CEE. Le cas échéant et au plus tard le 28 février 2005, ils modifient ou retirent pour chaque produit phytopharmaceutique l'autorisation accordée.Article 4La présente directive entre en vigueur le 1er septembre 2004.Article 5Les États membres sont destinataires de la présente directive.Fait à Bruxelles, le 23 avril 2004.Par la CommissionDavid ByrneMembre de la Commission(1) JO L 230 du 19.8.1991, p. 1.(2) JO L 77 du 13.3.2004, p. 50.(3) JO L 189 du 30.7.1996, p. 112.(4) Avis du comité scientifique des plantes concernant l'inscription du quinoxyfen à l'annexe I de la directive 91/414/CEE du Conseil concernant la mise sur le marché des produits phytopharmaceutiques (SCP/QUINOX/002-Final, émis le 7 mars 2001).ANNEXELa substance suivante est ajoutée à la fin du tableau de l'annexe I:">TABLE>"


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32001L0060

Directive 2001/60/CE de la Commission du 7 août 2001 portant adaptation au progrès technique de la directive 1999/45/CE du Parlement européen et du Conseil concernant le rapprochement des dispositions législatives, réglementaires et administratives des États membres relatives à la classification, à l'emballage et à l'étiquetage des préparations dangereuses (Texte présentant de l'intérêt pour l'EEE)

Journal officiel n° L 226 du 22/08/2001 p. 0005 - 0006

Directive 2001/60/CE de la Commissiondu 7 août 2001portant adaptation au progrès technique de la directive 1999/45/CE du Parlement européen et du Conseil concernant le rapprochement des dispositions législatives, réglementaires et administratives des États membres relatives à la classification, à l'emballage et à l'étiquetage des préparations dangereuses(Texte présentant de l'intérêt pour l'EEE)LA COMMISSION DES COMMUNAUTÉS EUROPÉENNES,vu le traité instituant la Communauté européenne,vu la directive 1999/45/CE du Parlement européen et du Conseil du 31 mai 1999 concernant le rapprochement des dispositions législatives, réglementaires et administratives des États membres relatives à la classification, à l'emballage et à l'étiquetage des préparations dangereuses(1), et notamment son article 20,considérant ce qui suit:(1) La directive 98/98/CE de la Commission(2) portant vingt-cinquième adaptation au progrès technique de la directive 67/548/CEE du Conseil(3), modifiée en dernier lieu par la directive 2000/33/CE(4), prévoit de nouveaux critères et une nouvelle phrase R (R67) pour les vapeurs susceptibles de provoquer somnolence et vertiges. Les dispositions de l'annexe V de la directive 1999/45/CE devraient donc être complétées.(2) La directive 2001/59/CE de la Commission(5) introduit un nouveau libellé pour la phrase R40 lorsqu'elle s'applique à des substances cancérogènes de catégorie 3. En conséquence, l'ancien libellé de R40 devient désormais la phrase R68 et continuera à être utilisé pour les substances mutagènes de catégorie 3 et pour certaines substances à effets irréversibles non létaux. Il est donc nécessaire de modifier les références à R40 dans l'annexe II de la directive 1999/45/CE.(3) La directive 2001/59/CE introduit dans l'annexe VI de la directive 67/548/CEE des indications plus claires en ce qui concerne la classification des substances et préparations par rapport aux effets corrosifs. Il est donc nécessaire de compléter en conséquence l'annexe II de la directive 1999/45/CE.(4) Il est reconnu que les préparations de ciment contenant du chrome (VI) peuvent provoquer des réactions allergiques dans certaines circonstances. Il est donc souhaitable d'exiger que l'étiquetage de telles préparations comporte une mise en garde, en complétant en conséquence l'annexe V de la directive 1999/45/CE.(5) Les mesures prévues par la présente directive sont conformes à l'avis du comité pour l'adaptation au progrès technique des directives visant à l'élimination des entraves techniques aux échanges dans le secteur des substances et préparations dangereuses, qui a été institué par l'article 20 de la directive 1999/45/CE,A ARRÊTÉ LA PRÉSENTE DIRECTIVE:Article premierLa directive 1999/45/CE est modifiée comme suit:1) À l'annexe II, partie A:- au point 3.3, le terme "R40" est remplacé par "R68",- au point 8.2, le terme "R40" est remplacé à chaque fois par "R68".2) À l'annexe II, partie B:- au point 2.1 (y compris tableau II), le terme "R40" est remplacé à chaque fois par "R68",- au point 2.2 (y compris tableau II A), le terme "R40" est remplacé à chaque fois par "R68",- au point 6.1, le terme "R40" est remplacé par "R68" la deuxième fois qu'il apparaît dans le texte (c'est-à-dire en relation avec les substances mutagènes de catégorie 3),- dans le tableau VI, le terme "R40" est remplacé par "R68" à la quatrième ligne, colonnes 1 et 3 (c'est-à-dire en relation avec les substances mutagènes de catégorie 3),- au point 6.2, le terme "R40" est remplacé par "R68" la deuxième fois qu'il apparaît dans le texte (c'est-à-dire en relation avec les substances mutagènes de catégorie 3),- dans le tableau VI A, le terme "R40" est remplacé par "R68" à la quatrième ligne, colonnes 1 et 3 (c'est-à-dire en relation avec les substances mutagènes de catégorie 3).3) À l'annexe II, partie B, la note suivante est ajoutée aux tableaux IV et IV A: ">TABLE>N.B.:La simple application de la méthode conventionnelle aux préparations contenant des substances classées comme corrosives ou irritantes peut entraîner une sous-classification ou une surclassification du danger si d'autres facteurs pertinents (par exemple le pH de la préparation) ne sont pas pris en considération. Pour la classification de la corrosivité, il y a donc lieu de tenir compte des indications données au point 3.2.5 de l'annexe VI de la directive 67/548/CEE et à l'article 6, paragraphe 3 (deuxième et troisième tirets) de cette directive."Article 2L'annexe V B de la directive 1999/45/CE est complétée par l'addition d'un nouveau point 11 et d'un nouveau point 12 conformément à l'annexe I de la présente directive.Article 31. Les États membres mettent en vigueur les dispositions législatives, réglementaires et administratives nécessaires pour se conformer à la présente directive le 30 juillet 2002 au plus tard. Ils en informent immédiatement la Commission.2. Les États membres appliquent les dispositions législatives, réglementaires et administratives visées au paragraphe 1:a) à compter du 30 juillet 2002 aux préparations n'entrant pas dans le champ d'application de la directive 91/414/CEE du Conseil(6) concernant la mise sur le marché des produits phytopharmaceutiques ou de la directive 98/8/CE du Parlement européen et du Conseil(7) concernant la mise sur le marché des produits biocides;b) à compter du 30 juillet 2004 aux préparations entrant dans le champ d'application de la directive 91/414/CEE ou de la directive 98/8/CE.3. Lorsque les États membres adoptent ces dispositions, celles-ci contiennent une référence à la présente directive ou sont accompagnées d'une telle référence lors de leur publication officielle. Les modalités de cette référence sont arrêtées par les États membres.Article 4La présente directive entre en vigueur le vingtième jour suivant celui de sa publication au Journal officiel des Communautés européennes.Article 5Les États membres sont destinataires de la présente directive.Fait à Bruxelles, le 7 août 2001.Par la CommissionErkki LiikanenMembre de la Commission(1) JO L 200 du 30.7.1999, p. 1.(2) JO L 355 du 30.12.1998, p. 1.(3) JO 196 du 16.8.1967, p. 1.(4) JO L 136 du 8.6.2000, p. 90.(5) JO L 225 du 21.8.2001, p. 1.(6) JO L 230 du 19.8.1991, p. 1.(7) JO L 123 du 24.4.1998, p. 1.ANNEXELes points 11 et 12 sont ajoutés à l'annexe V B de la directive 1999/45/CE: "11. Préparations contenant une substance affectée de la phrase R67: l'inhalation de vapeurs peut provoquer somnolence et vertigesLorsqu'une préparation contient une ou plusieurs substances affectées de la phrase R67, l'étiquette de la préparation doit porter le libellé de cette phrase tel que figurant à l'annexe III de la directive 67/548/CEE dès lors que ces substances sont présentes dans la préparation à une concentration égale ou supérieure à 15 %, sauf:- si la préparation porte déjà les phrases R20, R23, R26, R68/20, R39/23 ou R39/26,- ou si la préparation est contenue dans un emballage ne dépassant pas 125 ml.12. Ciments et préparations de cimentLes emballages de ciments et de préparations de ciment dont la teneur en chrome soluble (VI) est supérieure à 0,0002 % du poids sec total du ciment doivent porter l'indication suivante: "Contient du chrome (VI). Peut déclencher une réaction allergique" sauf si la préparation est déjà classée comme sensibilisante et porte la phrase R43."