Avis juridique important

|

32000L0045

Directiva 2000/45/CE de la Comisión, de 6 de julio de 2000, por la que se fijan métodos de análisis comunitarios para la determinación de vitamina A, vitamina E y triptófano en los piensos (Texto pertinente a efectos del EEE)

Diario Oficial n° L 174 de 13/07/2000 p. 0032 - 0050

Directiva 2000/45/CE de la Comisiónde 6 de julio de 2000por la que se fijan métodos de análisis comunitarios para la determinación de vitamina A, vitamina E y triptófano en los piensos(Texto pertinente a efectos del EEE)LA COMISIÓN DE LAS COMUNIDADES EUROPEAS,Visto el Tratado constitutivo de la Comunidad Europea,Vista la Directiva 70/373/CEE del Consejo, de 20 de julio de 1970, relativa a la introducción de métodos para la toma de muestras y de métodos de análisis comunitarios para el control oficial de la alimentación animal(1), cuya última modificación la constituye el Acta de adhesión de Austria, de Finlandia y de Suecia(2) y, en particular, su artículo 2,Considerando lo siguiente:(1) La Directiva 70/373/CEE establece que los controles oficiales de la alimentación animal, efectuados con objeto de comprobar que se cumplen las condiciones prescritas en las disposiciones legales, reglamentarias y administrativas referentes a la calidad y la composición de los piensos, se deben efectuar siguiendo métodos comunitarios de toma de muestras y de análisis.(2) La Directiva 70/524/CEE del Consejo, de 23 de noviembre de 1970, sobre los aditivos en la alimentación animal(3), cuya última modificación la constituye el Reglamento (CE) n° 2439/1999 de la Comisión(4), dispone que el contenido de vitamina A y de vitamina E debe señalarse en el etiquetado cuando se añadan estas sustancias a las premezclas y a los piensos.(3) La Directiva 79/373/CEE del Consejo, de 2 de abril de 1979, relativa a la comercialización de piensos compuestos(5), cuya última modificación la constituye la Directiva 2000/16/CE(6) y la Directiva 93/74/CEE del Consejo, de 13 de septiembre de 1993, relativa a los alimentos para animales destinados a objetivos de nutrición específicos(7), cuya última modificación la constituye la Directiva 96/25/CE(8), establecen que los aminoácidos deben declararse en el etiquetado de los piensos.(4) Es necesario fijar métodos de análisis comunitarios para el control de estas sustancias.(5) Las medidas previstas en la presente Directiva se ajustan al dictamen del Comité permanente de alimentación animal.HA ADOPTADO LA PRESENTE DIRECTIVA:Artículo 1Los Estados miembros harán que los análisis previstos para los controles oficiales de los piensos y premezclas, respecto a su contenido en vitamina A, vitamina E y triptófano, se efectúen siguiendo los métodos que se describen en el anexo.Artículo 2A más tardar el 31 de agosto de 2000, los Estados miembros pondrán en vigor las disposiciones legales, reglamentarias y administrativas necesarias para dar cumplimiento a lo dispuesto en la presente Directiva. Informarán de ello inmediatamente a la Comisión.Aplicarán esas disposiciones a partir del 1 de septiembre de 2000.Cuando los Estados miembros adopten dichas disposiciones, éstas harán referencia a la presente Directiva o irán acompañadas de dicha referencia en su publicación oficial. Los Estados miembros establecerán las modalidades de la mencionada referencia.Artículo 3La presente Directiva entrará en vigor el vigésimo día siguiente al de su publicación en el Diario Oficial de las Comunidades Europeas.Artículo 4Los destinatarios de la presente Directiva serán los Estados miembros.Hecho en Bruselas, el 6 de julio de 2000.Por la ComisiónDavid ByrneMiembro de la Comisión(1) DO L 170 de 3.8.1970, p. 2.(2) DO C 241 de 29.8.1994, p. 1.(3) DO L 270 de 14.12.1970, p. 1.(4) DO L 297 de 18.11.1999, p. 8.(5) DO L 86 de 6.4.1979, p. 30.(6) DO L 105 de 3.5.2000, p. 36.(7) DO L 237 de 22.9.1993, p. 23.(8) DO L 125 de 23.5.1996, p. 35.ANEXOPARTE ADETERMINACIÓN DE VITAMINA A1. Objeto y ámbito de aplicaciónEl presente método permite la determinación de vitamina A (retinol) en los piensos y premezclas. La vitamina A incluye el todo-trans-retinol y sus isómeros cis determinados con este método. El contenido de vitamina A se expresa en unidades internacionales (UI) por kg. Una UI corresponde a la actividad de 0,300 μg de todo-trans-retinol o de 0,344 μg de acetato de todo-trans-retinilo o de 0,550 μg de palmitato de todo-trans-retinilo.El límite de determinación es de 2000 UI de vitamina A/kg.2. PrincipioLa muestra se hidroliza con solución etanólica de hidróxido potásico y la vitamina A se extrae con éter de petróleo. El disolvente se elimina por evaporación y el residuo se disuelve en metanol y, en caso necesario, se diluye hasta conseguir la concentración necesaria. El contenido de vitamina A se determina mediante cromatografía de líquidos de alta resolución (CLAR) de fase inversa con detección de fluorescencia o de UV. Los parámetros cromatográficos se seleccionan de forma que no haya separación entre el todo-trans-retinol y sus isómeros cis.3. Reactivos3.1. Etanol, σ = 96 %3.2. Éter de petróleo, intervalo de ebullición 40 °C - 60 °C3.3. Metanol3.4. Solución de hidróxido potásico, β = 50 g/100 ml3.5. Solución de ascorbato sódico, β = 10 g/100 ml (véanse las observaciones del punto 7.7)3.6. Sulfuro sódico, Na2S · xH2O (x = 7-9)3.6.1. Solución de sulfuro sódico, c = 0,5 mol/l en glicerol, β = 120 g/l (para x = 9) (véanse las observaciones del punto 7.8)3.7. Solución de fenolftaleína, β = 2 g/100 ml en etanol (3.1)3.8. 2-propanol3.9. Fase móvil para CLAR: mezcla de metanol (3.3) y agua, p. ej. 980 + 20 (v + v). La proporción exacta se determinará en función de las características de la columna empleada3.10. Nitrógeno, libre de oxígeno3.11. Acetato de todo-trans-retinilo, extra puro, de actividad certificada, p. ej. 2,80 x 106 UI/g3.11.1. Solución madre de acetato de todo-trans-retinilo: Pesar, con precisión de 0,1 mg, 50 mg de acetato de todo-trans-retinilo (3.11) en un matraz aforado de 100 ml, disolver en 2-propanol (3.8) y enrasar con el mismo disolvente. La concentración nominal de esta solución es de 1400 UI de vitamina A por ml. El contenido exacto ha de determinarse según el punto 5.6.3.13.12. Palmitato de todo-trans-retinilo, extra puro, de actividad certificada, por ejemplo 1,80 x 106 UI/g3.12.1. Solución madre de palmitato de todo-trans-retinilo: Pesar, con precisión de 0,1 mg, 80 mg de palmitato de todo-trans-retinilo (3.12) en un matraz aforado de 100 ml, disolver en 2-propanol (3.8) y enrasar con el mismo disolvente. La concentración nominal de esta solución es de 1400 UI de vitamina A por ml. El contenido exacto ha de determinarse según el punto 5.6.3.23.13. 2,6-di-tert-butil-4-metilfenol (BHT) (véanse las observaciones del punto 7.5).4. Equipo4.1. Evaporador rotatorio de vacío4.2. Material de cristal ámbar4.2.1. Matraces Erlenmeyer o de fondo plano, de 500 ml, con boca esmerilada4.2.2. Matraces aforados con tapón esmerilado, de cuello estrecho, de 10, 25, 100 y 500 ml4.2.3. Ampollas cónicas de decantación, de 1000 ml, con tapón esmerilado4.2.4. Matraces piriformes, de 250 ml, con boca esmerilada4.3. Condensador de Allihn, con camisa de 300 mm de longitud, con juntas esmeriladas y adaptador para tubo de alimentación de gas4.4. Papel de filtro plegado para separación de fases, de 185 mm de diámetro (por ejemplo, Schleicher &  Schuell 597 HY 1/2)4.5. Equipo de CLAR con sistema de inyección4.5.1. Columna de cromatografía de líquidos, de 250 mm x 4 mm, con relleno de C18, de 5 o 10 μm, o equivalente (el criterio de funcionamiento es que aparezca un solo pico para todos los isómeros del retinol en las condiciones de la CLAR)4.5.2. Detector de UV o de fluorescencia, con ajuste de longitud de onda variable4.6. Espectrofotómetro con cubetas de cuarzo de 10 mm4.7. Baño María con agitador magnético4.8. Aparato de extracción (véase la figura 1) con los siguientes elementos:4.8.1. Probeta de 1.1 de capacidad provista de cuello y tapón esmerilados4.8.2. Pieza esmerilada provista de brazo lateral y de un tubo ajustable que pasa por el centro. El extremo inferior del tubo ajustable debe tener forma de U, mientras que el superior debe ser una tobera, de forma que pueda pasarse la capa superior de líquido de la probeta a una ampolla de decantación.5. ProcedimientoNota:La vitamina A es sensible a la luz (UV) y a la oxidación. Todas las operaciones deben realizarse en ausencia de luz (utilizando material de cristal ámbar o protegido con papel de aluminio) y de oxígeno (en corriente de nitrógeno). Durante la extracción, el aire que se encuentre por encima del líquido debe ser sustituido por nitrógeno (evítese llegar a una presión excesiva aflojando el tapón de vez en cuando).5.1. Preparación de la muestraTriturar la muestra hasta que pase por un tamiz de malla de 1 mm, procurando evitar la producción de calor. La trituración debe hacerse justo antes de la pesada y la saponificación para que no haya pérdida de vitamina A.5.2. SaponificaciónEn función del contenido de vitamina A, pesar, con precisión de 0,01 g, entre 2 g y 25 g de la muestra en un matraz Erlenmeyer o de fondo plano de 500 ml (4.2.1). Añadir sucesivamente, agitando circularmente, 130 ml de etanol (3.1), unos 100 mg de BHT (3.13), 2 ml de solución de ascorbato sódico (3.5) y 2 ml de solución de sulfuro sódico (3.6). Ajustar el condensador (4.3) al matraz e introducir éste en un baño María con agitador magnético (4.7). Calentar hasta ebullición y dejar hervir a reflujo durante 5 minutos. Añadir entonces 25 ml de solución de hidróxido potásico (3.4) a través del condensador (4.3) y dejar hervir a reflujo durante 25 minutos más, agitando circularmente bajo una corriente lenta de nitrógeno. Enjuagar después el condensador con unos 20 ml de agua y enfriar el contenido del matraz hasta temperatura ambiente.5.3. ExtracciónPasar cuantitativamente por decantación la solución de saponificación, enjuagando con un volumen total de 250 ml de agua, a una ampolla de decantación de 1000 ml (4.2.3) o al aparato de extracción (4.8). Lavar el matraz de saponificación sucesivamente con 25 ml de etanol (3.1) y 100 ml de éter de petróleo (3.2) y pasar los líquidos de lavado a la ampolla de decantación o al aparato de extracción. La proporción de agua y etanol en las soluciones combinadas debe ser aproximadamente de 2:1. Sacudir enérgicamente durante 2 minutos y dejar reposar durante otros 2 minutos.5.3.1. Extracción con ampolla de decantación (4.2.3)Cuando se hayan separado las fases (véanse las observaciones del punto 7.3) pasar la capa de éter de petróleo a otra ampolla de decantación (4.2.3). Repetir dos veces esta extracción con 100 ml de éter de petróleo (3.2) y dos veces con 50 ml de éter de petróleo (3.2)Lavar dos veces los extractos combinados girando suavemente (para evitar la formación de emulsiones) con sendos volúmenes de 100 ml de agua y sacudir después repetidamente con más porciones de 100 ml de agua hasta que el agua no se coloree al añadir solución de fenolftaleína (3.7) (normalmente es suficiente con lavar cuatro veces). Pasar a un matraz aforado de 500 ml (4.2.2) el extracto lavado, a través de un filtro plegado seco para separación de fases (4.4) a fin de eliminar el agua que pudiera haber en suspensión. Lavar la ampolla de decantación y el filtro con 50 ml de éter de petróleo (3.2), enrasar con éter de petróleo (3.2) y mezclar bien.5.3.2. Extracción con aparato de extracción (4.8)Cuando se hayan separado las capas (véanse las observaciones del punto 7.3) cambiar el tapón de la probeta (4.8.1) por la pieza esmerilada (4.8.2) y colocar el extremo inferior con forma de U del tubo ajustable de manera que quede justo por encima del nivel de la interfase. Aplicando nitrógeno a presión en el brazo lateral, pasar la capa superior de éter de petróleo a una ampolla de decantación de 1000 ml (4.2.3). Añadir 100 ml de éter de petróleo (3.2) a la bureta, tapar y sacudir bien. Dejar que se separen las fases y pasar la capa superior a la ampolla de decantación como antes. Repetir el procedimiento de extracción con otros 100 ml de éter de petróleo (3.2), y después con dos porciones de 50 ml de éter de petróleo (3.2); añadir las fases de éter de petróleo a la ampolla de decantación.Lavar los extractos combinados de éter de petróleo como se describe en 5.3.1 y seguir el procedimiento allí descrito.5.4. Preparación de la solución de muestra para la CLARPasar con pipeta una porción alícuota de la solución de éter de petróleo (de 5.3.1 o 5.3.2) a un matraz piriforme de 250 ml (4.2.4). Evaporar el disolvente casi por completo en el evaporador rotatorio (4.1) a presión reducida y a una temperatura del baño no superior a 40 °C. Volver a la presión atmosférica introduciendo nitrógeno (3.10) y sacar el matraz del evaporador rotatorio. Eliminar el disolvente restante con corriente de nitrógeno (3.10) y disolver inmediatamente el residuo en un volumen conocido (10-100 ml) de metanol (3.3) (la concentración de vitamina A debe quedar entre 5 UI/ml y 30 UI/ml).5.5. Determinación por CLARLa vitamina A se separa en una columna de fase inversa de C18 (4.5.1) y se mide su concentración mediante un detector de UV (325 nm) o un detector de fluorescencia (excitación: 325 nm, emisión: 475 nm) (4.5.2).Inyectar una porción alícuota (por ejemplo 20 μl) de la solución metanólica obtenida en 5.4 y eluir con la fase móvil (3.9). Calcular la altura (área) media del pico con varias inyecciones de la misma solución de muestra, así como la altura (área) media del pico con varias inyecciones de las soluciones de calibrado (5.6.2).Condiciones de CLARLas siguientes condiciones se proponen con carácter indicativo, por lo que podrán aplicarse otras si ofrecen resultados equivalentes.>SITIO PARA UN CUADRO>5.6. Calibrado5.6.1. Preparación de las soluciones patrón de trabajoPasar con pipeta a un matraz Erlenmeyer o de fondo plano de 500 ml (4.2.1) 20 ml de la solución madre de acetato de vitamina A (3.11.1) o 20 ml de la solución madre de palmitato de vitamina A (3.12.1); realizar la hidrólisis según se describe en el punto 5.2, pero sin añadir BHT. Extraer después con éter de petróleo (3.2) según el punto 5.3 y enrasar a 500 ml con éter de petróleo (3.2). Evaporar 100 ml de este extracto en el evaporador rotatorio (véase el punto 5.4) casi totalmente, eliminar el disolvente restante con una corriente de nitrógeno (3.10) y volver a disolver el residuo en 10,0 ml de metanol (3.3). La concentración nominal de esta solución es de 560 UI de vitamina A por ml. El contenido exacto debe determinarse según el punto 5.6.3.3. La solución patrón de trabajo debe prepararse poco antes de utilizarse.Pasar con pipeta 2,0 ml de esta solución patrón de trabajo a un matraz aforado de 20 ml, enrasar con metanol (3.3) y mezclar. La concentración nominal de esta solución patrón de trabajo diluida es de 56 UI de vitamina A por ml.5.6.2. Preparación de las soluciones de calibrado y curva de calibradoPasar 1,0, 2,0, 5,0 y 10,0 ml de la solución patrón de trabajo diluida una serie de matraces aforados de 20 ml, enrasar con metanol (3.3) y mezclar. Las concentraciones nominales de estas soluciones son de 2,8, 5,6, 14,0 y 28,0 UI de vitamina A por ml.Inyectar varias veces 20 μl de cada solución de calibrado y determinar las alturas (áreas) medias de los picos. Utilizando estos datos, trazar la curva de calibrado teniendo en cuenta los resultados del control de UV (5.6.3.3).5.6.3. Normalización UV de las soluciones patrón5.6.3.1. Solución madre de acetato de vitamina A:Pasar con pipeta 2,0 ml de la solución madre de acetato de vitamina A (3.11.1) a un matraz aforado de 50 ml (4.2.2) y enrasar con 2-propanol (3.8). La concentración nominal de esta solución es de 56 UI de vitamina A por ml. Pasar con pipeta 3,0 ml de esta solución diluida de acetato de vitamina A a un matraz aforado de 25 ml y enrasar con 2-propanol (3.8). La concentración nominal de esta solución es de 6,72 UI de vitamina A por ml. Medir el espectro de UV de esta solución frente a 2-propanol (3.8) en el espectrofotómetro (4.6) entre 300 nm y 400 nm. El máximo de extinción debe encontrarse entre 325 nm y 327 nm.Cálculo del contenido de vitamina A:>PIC FILE= "L_2000174ES.003601.EPS">5.6.3.2. Solución madre de palmitato de vitamina APasar con pipeta 2,0 ml de la solución madre de palmitato de vitamina A (3.12.1) a un matraz aforado de 50 ml (4.2.2) y enrasar con 2-propanol (3.8). La concentración nominal de esta solución es de 56 UI de vitamina A por ml. Pasar con pipeta 3,0 ml de esta solución diluida de palmitato de vitamina A a un matraz aforado de 25 ml y enrasar con 2-propanol (3.8). La concentración nominal de esta solución es de 6,72 UI de vitamina A por ml. Medir el espectro de UV de esta solución frente a 2-propanol (3.8) en el espectrofotómetro (4.6) entre 300 nm y 400 nm. E1 máximo de extinción debe encontrarse entre 325 nm y 327 nm.Cálculo del contenido de vitamina A:>PIC FILE= "L_2000174ES.003602.EPS">5.6.3.3. Solución patrón de trabajo de vitamina APasar con pipeta a un matraz aforado de 50 ml (4.2.2) 3,0 ml de la solución patrón de trabajo de vitamina A sin diluir, preparada de acuerdo con el punto 5.6.1, y enrasar con 2-propanol (3.8). Pasar con pipeta 5,0 ml de esta solución a un matraz aforado de 25 ml y enrasar con 2-propanol (3.8). La concentración nominal de esta solución es de 6,72 UI de vitamina A por ml. Medir el espectro de UV de esta solución frente a 2-propanol (3.8) en el espectrofotómetro (4.6) entre 300 nm y 400 nm. El máximo de extinción debe encontrarse entre 325 nm y 327 nm.Cálculo del contenido de vitamina A:>PIC FILE= "L_2000174ES.003603.EPS">6. Cálculo de los resultadosA partir de la altura (área) media de los picos de vitamina A de la solución de la muestra, determinar la concentración de la solución de la muestra en UI/ml mediante la curva de calibrado (5.6.2).El contenido w de vitamina A de la muestra, expresado en UI/kg, se obtiene mediante la siguiente fórmula:>PIC FILE= "L_2000174ES.003701.EPS">donde:β= concentración de vitamina A en la solución de la muestra (5.4) expresada en UI/mlV1= volumen de la solución de la muestra (5.4) en mlV2= volumen de la alícuota tomada en 5.4 en mlm= masa de la porción de la muestra en g7. Observaciones7.1. En caso de muestras con baja concentración de vitamina A puede ser útil combinar los extractos de éter de petróleo de las dos cargas de saponificación (cantidad pesada: 25 g) en una única solución de muestra para la determinación por CLAR.7.2. El peso de la muestra tomada para el análisis no debe contener más de 2 g de grasa.7.3. Si no se produce la separación de las fases, añadir unos 10 ml de etanol (3.1) para romper la emulsión.7.4. Con aceite de hígado de bacalao y otras grasas puras, el tiempo de saponificación tiene que prolongarse hasta 45-60 minutos.7.5. Puede utilizarse hidroquinona en lugar del BHT.7.6. Es posible la separación de los isómeros del retinol utilizando una columna de fase normal.7.7. Pueden utilizarse unos 150 mg de ácido ascórbico en lugar de la solución de ascorbato sódico.7.8. Pueden utilizarse unos 50 mg de EDTA en lugar de la solución de sulfuro sódico.8. RepetibilidadLa diferencia entre los resultados de dos determinaciones paralelas efectuadas con la misma muestra no debe rebasar el 15 % del resultado superior.9. Resultados de un estudio entre varios laboratorios(1)>SITIO PARA UN CUADRO>Figura 1: Aparato de extracción (4.8)>PIC FILE= "L_2000174ES.003801.EPS">PARTE BDETERMINACIÓN DE VITAMINA E1. Objeto y ámbito de aplicaciónEl presente método permite la determinación de vitamina E en los piensos y premezclas. El contenido de vitamina E se expresa en mg de acetato de DL-α-tocoferol por kg. Un mg de acetato de DL-α-tocoferol corresponde a 0,91 mg de DL-α-tocoferol (vitamina E).El límite de determinación es de 2 mg de vitamina E/kg.2. PrincipioLa muestra se hidroliza con solución etanólica de hidróxido potásico y la vitamina E se extrae con éter de petróleo. El disolvente se elimina por evaporación y el residuo se disuelve en metanol y, en caso necesario, se diluye hasta conseguir la concentración necesaria. El contenido de vitamina E se determina mediante cromatografía de líquidos de alta resolución (CLAR) de fase inversa con detección de fluorescencia o de UV.3. Reactivos3.1. Etanol, σ = 96 %3.2. Éter de petróleo, intervalo de ebullición 40 °C - 60 °C3.3. Metanol3.4. Solución de hidróxido potásico, β = 50 g/100 ml3.5. Solución de ascorbato sódico, β = 10 g/100 ml (véanse las observaciones del punto 7.7)3.6. Sulfuro sódico, Na2S · x H2O (x = 7-9)3.6.1. Solución de sulfuro sódico, c = 0,5 mol/l en glicerol, β = 120 g/l (para x = 9) (véanse las observaciones del punto 7.8)3.7. Solución de fenolftaleína, β = 2 g/100 ml en etanol (3.1)3.8. Fase móvil para CLAR: mezcla de metanol (3.3) y agua, p. ej. 980 + 20 (v + v). La proporción exacta se determinará en función de las características de la columna empleada.3.9. Nitrógeno, libre de oxígeno3.10. Acetato de DL-α-tocoferol, extra puro, de actividad certificada3.10.1. Solución madre de acetato de DL-α-tocoferol: Pesar, con precisión de 0,1 mg, 100 mg de acetato de DL-α-tocoferol (3.10) en un matraz aforado de 100 ml, disolver en etanol (3.1) y enrasar con el mismo disolvente. La concentración de esta solución es de 1 mg de acetato de DL-α-tocoferol por ml (para el control de UV, véase el punto 5.6.1.3; para la estabilización, véanse las observaciones del punto 7.4).3.11. DL-α-tocoferol, extra puro, de actividad certificada3.11.1. Pesar, con precisión de 0,1 mg, 100 mg de DL-α-tocoferol (3.10) en un matraz aforado de 100 ml, disolver en etanol (3.1) y enrasar con el mismo disolvente. La concentración de esta solución es de 1 mg de DL-α-tocoferol por ml (para el control de UV, véase el punto 5.6.2.3; para la estabilización, véanse las observaciones del punto 7.4).3.12. 2,6-Di-tert-butil-4-metilfenol (BHT)4. Equipo4.1. Evaporador rotatorio de vacío4.2. Material de cristal ámbar4.2.1. Matraces Erlenmeyer o de fondo plano, de 500 ml, con boca esmerilada4.2.2. Matraces aforados con tapón esmerilado, de cuello estrecho, de 10, 25, 100 y 500 ml4.2.3. Ampollas cónicas de decantación, de 1000 ml, con tapón esmerilado4.2.4. Matraces piriformes, de 250 ml, con boca esmerilada4.3. Condensador de Allihn, con camisa de 300 mm de longitud, con juntas esmeriladas y adaptador para tubo de alimentación de gas4.4. Papel de filtro plegado para separación de fases, de 185 mm de diámetro (por ejemplo Schleicher &  Schuell 597 HY 1/2)4.5. Equipo de CLAR con sistema de inyección4.5.1. Columna de cromatografía de líquidos, de 250 mm x 4 mm, con relleno de C18, de 5 o 10 μm, o equivalente4.5.2. Detector de UV o de fluorescencia, con ajuste de longitud de onda variable4.6. Espectrofotómetro con cubetas de cuarzo de 10 mm4.7. Baño María con agitador magnético4.8. Aparato de extracción (véase la figura 1) con los siguientes elementos:4.8.1. Probeta de 1 l de capacidad provista de cuello y tapón esmerilados4.8.2. Pieza esmerilada provista de brazo lateral y de un tubo ajustable que pasa por el centro. El extremo inferior del tubo ajustable debe tener forma de U, mientras que el superior debe ser una tobera, de forma que pueda pasarse la capa superior de líquido de la probeta a una ampolla de decantación.5. ProcedimientoNota:La vitamina E es sensible a la luz (UV) y a la oxidación. Todas las operaciones deben realizarse en ausencia de luz (utilizando material de cristal ámbar o protegido con papel de aluminio) y de oxígeno (en corriente de nitrógeno). Durante la extracción, el aire que se encuentre por encima del líquido debe ser sustituido por nitrógeno (evítese llegar a una presión excesiva ajlojando el tapón de vez en cuando).5.1. Preparación de la muestraTriturar la muestra hasta que pase por un tamiz de malla de 1 mm, procurando evitar la producción de calor. La trituración debe hacerse justo antes de la pesada y la saponificación para que no haya pérdida de vitamina E.5.2. SaponificaciónEn función del contenido de vitamina E, pesar, con precisión de 0,01 g, entre 2 g y 25 g de la muestra en un matraz Erlenmeyer o de fondo plano de 500 ml (4.2.1). Añadir sucesivamente, agitando circularmente, 130 ml de etanol (3.1), unos 100 mg de BHT (3.12), 2 ml de solución de ascorbato sódico (3.5) y 2 ml de solución de sulfuro sódico (3.6). Ajustar el condensador (4.3) al matraz e introducir éste en un baño María con agitador magnético (4.7). Calentar hasta ebullición y dejar hervir a reflujo durante 5 minutos. Añadir entonces 25 ml de solución de hidróxido potásico (3.4) a través del condensador (4.3) y dejar hervir a reflujo durante 25 minutos más, agitando circularmente bajo una corriente lenta de nitrógeno. Enjuagar después el condensador con unos 20 ml de agua y enfriar el contenido del matraz hasta temperatura ambiente.5.3. ExtracciónPasar cuantitativamente por decantación la solución de saponificación, enjuagando con un volumen total de 250 ml de agua, a una ampolla de decantación de 1000 ml (4.2.3) o al aparato de extracción (4.8). Lavar el matraz de saponificación sucesivamente con 25 ml de etanol (3.1) y 100 ml de éter de petróleo (3.2) y pasar los líquidos de lavado a la ampolla de decantación o al aparato de extracción. La proporción de agua y etanol en las soluciones combinadas debe ser aproximadamente de 2:1. Sacudir enérgicamente durante 2 minutos y dejar reposar durante otros 2 minutos.5.3.1. Extracción con ampolla de decantación (4.2.3)Cuando se hayan separado las fases (véanse las observaciones del punto 7.3) pasar la fase de éter de petróleo a otra ampolla de decantación (4.2.3). Repetir dos veces esta extracción con 100 ml de éter de petróleo (3.2) y dos veces con 50 ml de éter de petróleo (3.2).Lavar dos veces los extractos combinados en la ampolla de decantación girando suavemente (para evitar la formación de emulsiones) con sendos volúmenes de 100 ml de agua y sacudir después repetidamente con más porciones de 100 ml de agua hasta que el agua no se coloree al añadir solución de fenolftaleína (3.7) (normalmente es suficiente con lavar cuatro veces). Pasar a un matraz aforado de 500 ml (4.2.2) el extracto lavado, a través de un filtro plegado seco para separación de fases (4.4) a fin de eliminar el agua que pudiera haber en suspensión. Lavar la ampolla de decantación y el filtro con 50 ml de éter de petróleo (3.2), enrasar con éter de petróleo (3.2) y mezclar bien.5.3.2. Extracción con aparato de extracción (4.8)Cuando se hayan separado las fases (véanse las observaciones del punto 7.3) cambiar el tapón de la probeta (4.8.1) por la pieza esmerilada (4.8.2) y colocar el extremo inferior con forma de U del tubo ajustable de manera que quede justo por encima del nivel de la interfase. Aplicando nitrógeno a presión en el brazo lateral, pasar la capa superior de éter de petróleo a una ampolla de decantación de 1000 ml (4.2.3). Añadir 100 ml de éter de petróleo (3.2) a la bureta, tapar y sacudir bien. Dejar que se separen las fases y pasar la capa superior a la ampolla de decantación como antes. Repetir el procedimiento de extracción con otros 100 ml de éter de petróleo (3.2), y después con dos porciones de 50 ml de éter de petróleo (3.2); añadir las fases de éter de petróleo a la ampolla de decantación.Lavar los extractos combinados de éter de petróleo como se describe en 5.3.1 y seguir el procedimiento allí descrito.5.4. Preparación de la solución de muestra para la CLARPasar con pipeta una porción alícuota de la solución de éter de petróleo (de 5.3.1 o 5.3.2) a un matraz piriforme de 250 ml (4.2.4). Evaporar el disolvente casi por completo en el evaporador rotatorio (4.1) a presión reducida y a una temperatura del baño no superior a 40 °C. Volver a la presión atmosférica introduciendo nitrógeno (3.9) y sacar el matraz del evaporador rotatorio. Eliminar el disolvente restante con corriente de nitrógeno (3.9) y disolver inmediatamente el residuo en un volumen conocido (10-100 ml) de metanol (3.3) (la concentración de DL-α-tocoferol debe quedar entre 5 μg/ml y 30 μg/ml).5.5. Determinación por CLARLa vitamina E se separa en una columna de fase inversa de C18 (4.5.1) y se mide su concentración mediante un detector de fluorescencia (excitación: 295 nm, emisión: 330 nm) o un detector de UV (292 nm) (4.5.2).Inyectar una porción alícuota (por ejemplo 20 μl) de la solución metanólica obtenida en 5.4 y eluir con la fase móvil (3.8). Calcular la altura (área) media del pico con varias inyecciones de la misma solución de muestra, así como la altura (área) media del pico con varias inyecciones de las soluciones de calibrado (5.6.2).Condiciones de CLARLas siguientes condiciones se proponen con carácter indicativo, por lo que podrán aplicarse otras si ofrecen resultados equivalentes.>SITIO PARA UN CUADRO>5.6. Calibrado (acetato de DL-α-tocoferol o DL-α-tocoferol)5.6.1. Patrón de acetato de DL-α-tocoferol5.6.1.1. Preparación de la solución patrón de trabajoPasar con pipeta a un matraz Erlenmeyer o de fondo plano de 500 ml (4.2.1) 25 ml de la solución madre de acetato de DL-α-tocoferol (3.10.1); realizar la hidrólisis según se describe en el punto 5.2. Extraer después con éter de petróleo (3.2) según el punto 5.3 y enrasar a 500 ml con éter de petróleo. Evaporar 25 ml de este extracto en el evaporador rotatorio (véase el punto 5.4) casi totalmente, eliminar el disolvente restante con una corriente de nitrógeno (3.9) y volver a disolver el residuo en 25,0 ml de metanol (3.3). La concentración nominal de esta solución es de 45,5 μg de DL-α-tocoferol por ml, equivalentes a 50 μg de acetato de DL-α-tocoferol por ml. La solución patrón de trabajo debe prepararse poco antes de utilizarse.5.6.1.2. Preparación de las soluciones de calibrado y curva de calibradoPasar 1,0, 2,0, 4,0 y 10,0 ml de la solución patrón de trabajo a una serie de matraces aforados de 20 ml, enrasar con metanol (3.3) y mezclar. Las concentraciones nominales de estas soluciones son de 2,5, 5,0, 10,0 y 25,0 μg de acetato de DL-α-tocoferol por ml, equivalentes a 2,28, 4,55, 9,10 y 22,8 μg de DL-α-tocoferol por ml.Inyectar varias veces 20 μl de cada solución de calibrado y determinar las alturas (áreas) medias de los picos. Utilizando estos datos, trazar la curva de calibrado.5.6.1.3. Normalización UV de la solución madre de acetato de DL-α-tocoferol (3.10.1)Diluir 5,0 ml de la solución madre de acetato de DL-α-tocoferol (3.10.1) hasta 25,0 ml con etanol y medir el espectro de UV de esta solución frente al etanol (3.1) en el espectrofotómetro (4.6) entre 250 nm y 320 nm.El máximo de extinción debe encontrarse a 284 nm.>PIC FILE= "L_2000174ES.004201.EPS">A esta dilución debe obtenerse un valor de extinción entre 0,84 y 0,88.5.6.2. Patrón de DL-α-tocoferol5.6.2.1. Preparación de la solución patrón de trabajoPasar con pipeta 2 ml de la solución madre de DL-α-tocoferol (3.11.1) a un matraz aforado de 50 ml, disolver con metanol (3.3) y enrasar con metanol. La concentración nominal de esta solución es de 40 μg de DL-α-tocoferol por ml, equivalentes a 44,0 μg de acetato de DL-α-tocoferol por ml. La solución patrón de trabajo debe prepararse poco antes de utilizarse.5.6.2.2. Preparación de las soluciones de calibrado y curva de calibradoPasar 1,0, 2,0, 4,0 y 10,0 ml de la solución patrón de trabajo a una serie de matraces aforados de 20 ml, enrasar con metanol (3.3) y mezclar. Las concentraciones nominales de estas soluciones son de 2,0, 4,0, 8,0 y 20,0 μg de DL-α-tocoferol por ml, equivalentes a 2,20, 4,40, 8,79 y 22,0 μg de acetato de DL-α-tocoferol por ml.Inyectar varias veces 20 μl de cada solución de calibrado y determinar las alturas (áreas) medias de los picos. Utilizando estos datos, trazar la curva de calibrado.5.6.2.3. Normalización UV de la solución madre de DL-α-tocoferol (3.11.1)Diluir 2,0 ml de la solución madre de DL-α-tocoferol (3.11.1) hasta 25,0 ml con etanol y medir el espectro de UV de esta solución frente al etanol (3.1) en el espectrofotómetro (4.6) entre 250 nm y 320 nm. El máximo de absorción debe encontrarse a 292 nm.>PIC FILE= "L_2000174ES.004202.EPS">A esta dilución debe obtenerse un valor de extinción de 0,6.6. Cálculo de los resultadosA partir de la altura (área) media de los picos de vitamina E de la solución de la muestra, determinar la concentración de la solución de la muestra en μg/ml (calculada en acetato de DL-α-tocoferol) mediante la curva de calibrado (5.6.1.2 o 5.6.2.2).El contenido w de vitamina E de la muestra, expresado en mg/kg, se obtiene mediante la siguiente fórmula:>PIC FILE= "L_2000174ES.004203.EPS">donde:β= concentración de vitamina E en la solución de la muestra (5.4) expresada en μg/mlV1= volumen de la solución de la muestra (5.4) en mlV2= volumen de la alícuota tomada en 5.4 en mlm= masa de la porción de la muestra en g7. Observaciones7.1. En caso de muestras con baja concentración de vitamina E puede ser útil combinar los extractos de éter de petróleo de las dos cargas de saponificación (cantidad pesada: 25 g) en una única solución de muestra para la determinación por CLAR.7.2. El peso de la muestra tomada para el análisis no debe contener más de 2 g de grasa.7.3. Si no se produce la separación de las fases, añadir unos 10 ml de etanol (3.1) para romper la emulsión.7.4. Tras la medida espectrofotométrica de la solución de acetato de DL-α-tocoferol o de DL-α-tocoferol según 5.6.l.3 o 5.6.2.3, respectivamente, añadir unos 10 mg de BHT (3.12) a la solución (3.10.1 o 3.10.2) y guardar la solución en frigorífico (plazo máximo de conservación: cuatro semanas).7.5. Puede utilizarse hidroquinona en lugar del BHT.7.6. Es posible la separación de α, β, χ y δ-tocoferol utilizando una columna de fase normal.7.7. Pueden utilizarse unos 150 mg de ácido ascórbico en lugar de la solución de ascorbato sódico.7.8. Pueden utilizarse unos 50 mg de EDTA en lugar de la solución de sulfuro sódico.8. RepetibilidadLa diferencia entre los resultados de dos determinaciones paralelas efectuadas con la misma muestra no debe rebasar el 15 % del resultado superior.9. Resultados de un estudio entre varios laboratorios(2)>SITIO PARA UN CUADRO>Figura 1: Aparato de extracción (4.8)>PIC FILE= "L_2000174ES.004401.EPS">PARTE CDETERMINACIÓN DE TRIPTÓFANO1. Objeto y ámbito de aplicaciónEl presente método permite la determinación del triptófano libre y total en los piensos. No distingue entre formas L y D.2. PrincipioPara la determinación del triptófano total, la muestra se hidroliza en condiciones alcalinas con solución saturada de hidróxido de bario y calentando a 110 °C durante veinte horas. Tras la hidrólisis se añade un patrón interno.Para la determinación del triptófano libre, la muestra se somete a extracción en condiciones de acidez suave en presencia de patrón interno.El triptófano y el patrón interno presentes en el hidrolizado o en el extracto se determinan mediante cromatografía de líquidos de alta resolución (CLAR) con detección por fluorescencia.3. Reactivos3.1. Agua bidestilada o de calidad equivalente (conductividad < 10 ìS/cm)3.2. Patrón: triptófano (pureza/contenido >= 99 %), desecado al vacío sobre pentóxido fosforoso3.3. Patrón interno: α-metil-triptófano (pureza/contenido >= 99 %), desecado al vacío sobre pentóxido fosforoso3.4. Hidróxido de bario octa-hidratado (debe procurarse no exponer excesivamente el Ba(OH)2·8 H2Ο al aire a fin de evitar la formación de BaCO3, que podría interferir con la determinación (véanse las observaciones del punto 9.3).3.5. Hidróxido sódico3.6. Ácido orto-fosfórico, w = 85 %3.7. Ácido clorhídrico, p20 = 1,19 g/ml3.8. Metanol, grado CLAR3.9. Éter de petróleo, intervalo de ebullición: 40-60 °C3.10. Solución de hidróxido sódico, c = 1 mol/l:Disolver 40,0 g de NaOH (3.5) en agua y llevar hasta 1 litro con agua (3.1)3.11. Ácido clorhídrico, c = 6 mol/l:Tomar 492 ml de HCl (3.7) y llevar hasta 1 litro con agua3.12. Ácido clorhídrico, c = 1 mol/l:Tomar 82 ml de HCl (3.7) y llevar hasta 1 litro con agua3.13. Ácido clorhídrico, c = 0,1 mol/l:Tomar 8,2 ml de HCl (3.7) y llevar hasta 1 litro con agua3.14. Ácido orto-fosfórico, c = 0,5 mol/l:Tomar 34 ml de ácido orto-fosfórico (3.6) y llevar hasta 1 litro con agua (3.1)3.15. Solución concentrada de triptófano (3.2), c = 2,50 μmol/ml:En un matraz aforado de 500 ml disolver 0,2553 g de triptófano (3.2) en ácido clorhídrico (3.13) y enrasar con ácido clorhídrico (3.13). Conservar a - 18 °C durante cuatro semanas como máximo.3.16. Solución concentrada de patrón interno, c = 2,50 μmol/ml:En un matraz aforado de 500 ml disolver 0,2728 g de α-metil-triptófano (3.3) in ácido clorhídrico (3.13) y enrasar con ácido clorhídrico (3.13). Conservar a - 18 °C durante cuatro semanas como máximo.3.17. Solución patrón de calibrado de triptófano y de patrón interno:Tomar 2,00 ml de solución concentrada de triptófano (3.15) y 2,00 ml de solución concentrada de patrón interno (α-metil-triptófano) (3.16). Diluir con agua (3.1) y metanol (3.8) hasta conseguir aproximadamente el mismo volumen y la misma concentración de metanol (10-30 %) que en el hidrolizado final.Esta solución debe prepararse poco antes de su utilizaciónProteger de la luz solar directa durante su preparación.3.18. Ácido acético3.19. 1,1,1-tricloro-2-metil-2-propanol3.20. Etanolamina  > 98 %3.21. Solución de 1 g de 1,1,1-tricloro-2-metil-2-propanol (3.19) en 100 ml de metanol (3.8)3.22. Fase móvil para CLAR: 3,00 g de ácido acético (3.18) + 900 ml de agua (3.1) + 50,0 ml de solución (3.21) de 1,1,1-tricloro-2-metil-2-propanol (3.19) en metanol (3.8) (1 g /100 ml). Ajustar el pH a 5,00 con etanolamina (3.20). Llevar a 1000 ml con agua (3.1)4. Equipo4.1. Equipo de CLAR con detector por espectrofluorometría4.2. Columna de cromatografía de líquidos, de 125 mm x 4 mm, con relleno de C18, de 3 μm, o equivalente4.3. pH-metro4.4. Matraz de polipropileno, de 125 ml de capacidad, boca ancha y tapón de rosca.4.5. Filtro de membrana, 0,45 μm4.6. Autoclave, 110 (+- 2) °C, 1,4 (+- 0,1) bar4.7. Agitador mecánico o magnético4.8. Mezclador de torbellino5. Procedimiento5.1. Preparación de la muestraLa muestra se tritura para que pase por un tamiz de 0,5 mm. Las muestras muy húmedas deben secarse al aire a una temperatura no superior a 50 °C o bien liofilizarse antes de la trituración. Las muestras con un elevado contenido de grasa deben someterse a extracción con éter de petróleo (3.9) antes de la trituración.5.2. Determinación del triptófano libre (extracto)Pesar en un matraz Erlenmeyer, con precisión de 1 mg, una cantidad adecuada (1-5 g) de la muestra preparada (5.1). Añadir 100,0 ml de ácido clorhídrico, c = 0,1 mol/l (3.13) y 5,00 ml de solución concentrada de patrón interno (3.16). Agitar u homogeneizar durante 60 minutos utilizando un agitador magnético o mecánico (4.7). Dejar sedimentar y pasar con pipeta a un vaso de precipitados 10,0 ml de la solución sobrenadante. Añadir 5 ml de ácido orto-fosfórico, c = 0,5 mol/1 (3.14). Ajustar el pH a 3 utilizando hidróxido sódico, c = 1,0 mol/l (3.10). Añadir suficiente metanol (3.8) para obtener una concentración de metanol entre el 10 y el 30 % en el volumen final. Pasar a un matraz aforado de capacidad adecuada y diluir con agua hasta conseguir un volumen apropiado para la cromatografía [aproximadamente el mismo volumen que la solución patrón de calibrado (3.17)].Filtrar unos cuantos ml de la solución a través de un filtro de membrana de 0,45 μm (4.5) antes de la inyección en la columna de CLAR. Realizar la cromatografia de acuerdo con el punto 5.4.Proteger la solución patrón y los extractos de la luz solar directa. Si no es posible analizar los extractos el mismo día, pueden conservarse a 5 °C durante tres días como máximo.5.3. Determinación del triptófano total (hidrolizado)Pesar en el matraz de polipropileno (4.4), con precisión de 0,20 mg, entre 0,1 y 1 g de la muestra preparada (5.1). La porción pesada de muestra debe tener un contenido de nitrógeno de unos 10 mg. Añadir 8,4 g de hidróxido de bario octa-hidratado (3.4) y 10 ml de agua. Homogeneizar con un mezclador de torbellino (4.8) o un agitador magnético (4.7). Dejar dentro de la mezcla el imán recubierto de teflón. Lavar las paredes del recipiente con 4 ml de agua. Poner el tapón de rosca y cerrar sin apretar. Pasar al autoclave (4.6) con agua hirviendo y dejar en el vapor durante 30-60 minutos. Cerrar el autoclave y dejar a 110 (+- 2) °C durante 20 horas.Antes de abrir el autoclave reducir la temperatura hasta justo por debajo de 100 °C. Para evitar la cristalización del Ba(OH)2 · 8 Η2Ο, añadir a la mezcla caliente 30 ml de agua que esté a temperatura ambiente. Agitar o girar suavemente. Añadir 2,00 ml de solución concentrada (3.16) de patrón interno (α-metil-triptófano). Enfriar los recipientes en baño de agua/hielo durante 15 minutos.A continuación, añadir 5 ml de ácido orto-fosfórico, c = 0,5 mol/l (3.14). Mantener el recipiente en el baño frío y neutralizar con HCl, c = 6 mol/l (3.11) mientras se sigue girando; ajustar el pH a 3,0 con HCI, c = 1 mol/l (3.12). Añadir suficiente metanol para obtener una concentración de metanol entre el 10 y el 30 % en el volumen final. Pasar a un matraz aforado de capacidad adecuada y diluir con agua hasta conseguir el volumen definido necesario para la cromatografía (por ejemplo 100 ml). La adición de metanol no debe producir precipitación.Filtrar unos cuantos ml de la solución a través de un filtro de membrana de 0,45 μm (4.5) antes de la inyección en la columna de CLAR. Realizar la cromatografía de acuerdo con el punto 5.4.Proteger la solución patrón y los hidrolizados de la luz solar directa. Si no es posible analizar los hidrolizados el mismo día, pueden conservarse a 5 °C durante tres días como máximo.5.4. Determinación por CLARLas siguientes condiciones de elución isocrática se proponen con carácter indicativo, por lo que podrán aplicarse otras si ofrecen resultados equivalentes (véanse también las observaciones de los puntos 9.1 y 9.2).>SITIO PARA UN CUADRO>6. Cálculo de los resultados>PIC FILE= "L_2000174ES.004701.EPS">A= área del pico de patrón interno, solución patrón de calibrado (3.17)B= área del pico de triptófano, extracto (5.2) o hidrolizado (5.3)C= volumen en ml (2 ml) de la solución concentrada de triptófano (3.15) añadida a la solución de calibrado (3.17)D= concentración en μmol/ml ( =2,50) de la solución concentrada de triptófano (3.15) añadida a la solución de calibrado (3.17)E= volumen en ml la solución concentrada de patrón interno (3.16) añadida al extracto (5.2) ( =5,00 ml) o al hidrolizado (5.3) (=2,00 ml)F= área del pico del patrón interno, extracto (5.2) o hidrolizado (5.3)G= área del pico de triptófano, solución patrón de calibrado (3.17)H= volumen en ml ( =2,00 ml) de la solución concentrada de patrón interno (3.16) añadida a la solución patrón de calibrado (3.17)W= peso de la muestra en g (corregido al peso original si se le ha quitado la humedad o la grasa)MW= peso molecular del triptófano ( =204,23)7. RepetibilidadLa diferencia entre los resultados de dos determinaciones paralelas efectuadas con la misma muestra no debe rebasar el 10 % del resultado superior.8. Resultados de un estudio entre varios laboratoriosSe organizó un estudio entre varios laboratorios de la Comunidad (cuarta comparación) en el cual hasta doce laboratorios analizaron tres muestras para certificar el método en cuanto a la hidrólisis. De cada muestra se hicieron cinco análisis. Los resultados se recogen en el cuadro siguiente:>SITIO PARA UN CUADRO>Se organizó otro estudio entre varios laboratorios de la Comunidad (tercera comparación) en el cual hasta trece laboratorios analizaron dos muestras para certificar el método en cuanto a la extracción de triptófano libre. De cada muestra se hicieron cinco análisis. Los resultados se recogen en el cuadro siguiente:>SITIO PARA UN CUADRO>Se organizó otro estudio de comparación entre varios laboratorios de la Comunidad en el cual hasta siete laboratorios analizaron cuatro muestras para certificar el método en cuanto a la hidrólisis de triptófano. De cada muestra se hicieron cinco análisis. Los resultados se recogen en el cuadro siguiente:>SITIO PARA UN CUADRO>9. Observaciones9.1. Las siguientes condiciones cromatográficas pueden dar una mejor separación entre el triptófano y el α-metil-triptófano.>SITIO PARA UN CUADRO>9.2. La cromatografía varía en función del tipo de CLAR y del material de relleno de la columna que se utilice. El sistema elegido debe proporcionar una separación en la línea de base entre el triptófano y el patrón interno. Es asimismo importante que los productos de degradación se separen bien del triptófano y del patrón interno. Deben pasarse hidrolizados sin patrón interno para comprobar las impurezas de la línea de base bajo el patrón interno. Es importante que el ciclo dure suficiente para que se eluyan todos los productos de degradación; en caso contrario, los picos de elución tardía pueden interferir con los ciclos cromatográficos posteriores.En la banda de funcionamiento, el sistema cromatográfico debe dar una respuesta lineal. Ésta ha de medirse con una concentración constante (la normal) del patrón interno y con concentraciones variables de triptófano. Es importante que el tamaño de los picos tanto de triptófano como de patrón interno estén dentro de la banda lineal del sistema de CLAR/fluorescencia. Si los picos de triptófano o de patrón interno fueran demasiado grandes o demasiado pequeños, habría que repetir el análisis con una muestra de otro tamaño o con un volumen final distinto.9.3. Hidróxido de barioCon el tiempo, se va haciendo más difícil disolver el hidróxido de bario. Esto hace que la solución para la determinación por CLAR esté turbia, lo que puede provocar unos resultados bajos en cuanto al triptófano.(1) Realizado por el Grupo de trabajo sobre piensos de la asociación Verband Deutscher Landwirtschaftlicher Untersuchungs- und Forschungsanstalten (VDLUFA).(2) Realizado por el Grupo de trabajo sobre piensos de la asociación Verband Deutscher Landwirtschaftlicher Untersuchungs- und Forschungsanstalten (VDLUFA).


Avis juridique important

|

31981L1057

Directiva 81/1057/CEE del Consejo, de 14 de diciembre de 1981, por la que se completan las Directivas 75/362/CEE, 77/452/CEE, 78/686/CEE y 78/1026/CEE, referentes al reconocimiento mutuo de los diplomas, certificados y otros títulos de médico, enfermero responsable de cuidados generales, de odontólogo y de veterinario respectivamente, en lo que se refiere a los derechos adquiridos

Diario Oficial n° L 385 de 31/12/1981 p. 0025 - 0026 Edición especial en finés : Capítulo 16 Tomo 1 p. 0050  Edición especial en español: Capítulo 06 Tomo 2 p. 0126  Edición especial sueca: Capítulo 16 Tomo 1 p. 0050  Edición especial en portugués: Capítulo 06 Tomo 2 p. 0126

 DIRECTIVA DEL CONSEJO    de 14 de diciembre de 1981    por la que se completan las Directivas 75/362/CEE ,   77/452/CEE , 78/686/CEE y 78/1026/CEE , referentes   al reconocimiento mutuo de los diplomas , certificados   y otros títulos de médico , enfermero responsable   de cuidados generales , de odontólogo y de   veterinario respectivamente , en lo que se refiere   a los derechos adquiridos     ( 81/1057/CEE )    EL CONSEJO DE LAS COMUNIDADES EUROPEAS ,    Visto el Tratado constitutivo de la Comunidad   Económica Europea y , en particular , sus   artículos 49 , 57 y 66 ,    Vista la propuesta de la Comisión (1) ,    Visto el dictamen del Parlamento Europeo (2) ,    Visto el dictamen del Comité económico y   social (3) ,    Considerando que , en las Directivas 75/362/CEE (4) ,   77/452/CEE (5) , 78/686/CEE (6) y 78/1026/CEE (7) ,   en las que se prevé el reconocimiento mutuo de los   diplomas , certificados y otros títulos de médico , de   enfermero responsable de cuidados generales , de   odontólogo y de veterinario respectivamente , y en   las que se establecen medidas destinadas a   facilitar el ejercicio efectivo del derecho de   establecimiento y de la libre prestación de servicios , las   disposiciones relativas a los derechos adquiridos se   refieren a los diplomas , certificados y otros títulos   de médico , de enfermero responsable de cuidados   generales , de odontólogo y de veterinario ,   expedidos por los Estados miembros antes de la aplicación   de dichas Directivas ;    Considerando que esas disposiciones no se refieren , por   tanto , de manera expresa a los diplomas , certificados y   otros títulos que sancionen una formación que no   responda a las exigencias mínimas de formación   previstas en las Directivas 75/363/CEE (8) , 77/453/CEE (9) ,   78/687/CEE (10) y 78/1027/CEE (11) respectivamente , cuando   esa formación se haya completado con posterioridad   a la aplicación de dichas Directivas , pero se hubiera   iniciado antes de su aplicación ;    Considerando que conviene colmar esta laguna ,    HA ADOPTADO LA PRESENTE DIRECTIVA :    Artículo 1    Los apartados 1 y 2 del artículo 9 de la Directiva   75/362/CEE , el artículo 4 de la Directiva 77/452/CEE   los apartados 1 y 2 del artículo 7 de la Directiva   78/686/CEE y el artículo 4 de la Directiva 78/1026/CEE , se   aplicarán también a los diplomas , certificados y   otros títulos que sancionen una formación que no   responda a las exigencias mínimas de formación   previstas en los artículos 1 , 2 , 3 , 4 y 5   de la Directiva 75/363/CEE , en el artículo 1 de la   Directiva 77/453/CEE , en los artículos 1 , 2 y 3   de la Directiva 78/687/CEE y en el artículo 1 de la   Directiva 78/1027/CEE respectivamente , y que se haya   completado después de la aplicación de dichas Directivas   pero se hubiera iniciado antes de su aplicación .    Artículo 2    Los Estados miembros adoptarán las medidas necesarias   para cumplir la presente Directiva a más tardar el 30   de junio de 1982 , e informarán de ello inmediatamente   a la Comisión .    Artículo 3    Los destinatarios de la presente Directiva serán los   Estados miembros .    Hecho en Bruselas , el 14 de diciembre de 1981 .    Por el Consejo    El Presidente    G. HOWE    (1) DO n º C 121 de 23 . 5 . 1981 , p. 3 .    (2) DO n º C 172 de 13 . 7 . 1981 , p. 114 .    (3) DO n º C 185 de 27 . 7 . 1981 , p. 7 .    (4) DO n º L 167 de 30 . 6 . 1975 , p. 1 .    (5) DO n º L 176 de 15 . 7 . 1977 , p. 1 .    (6) DO n º L 233 de 24 . 8 . 1978 , p. 1 .    (7) DO n º L 362 de 23 . 12 . 1978 , p. 1 .    (8) DO n º L 167 de 30 . 6 . 1975 , p. 14 .    (9) DO n º L 176 de 15 . 7 . 1977 , p. 8 .    (10) DO n º L 233 de 24 . 8 . 1978 , p. 10 .    (11) DO n º L 362 de 23 . 12 . 1978 , p. 7 .


Avis juridique important

|

31992L0094

Directiva 92/94/CEE del Consejo, de 9 de noviembre de 1992, por la que se modifica la Directiva 75/273/CEE relativa a la lista comunitaria de las zonas agrícolas desfavorecidas con arreglo a la Directiva 75/268/CEE (Italia)

Diario Oficial n° L 338 de 23/11/1992 p. 0042 - 0043

DIRECTIVA 92/94/CEE DEL CONSEJO de 9 de noviembre de 1992 por la que se modifica la Directiva 75/273/CEE relativa a la lista comunitaria de las zonas agrícolas desfavorecidas con arreglo a la Directiva 75/268/CEE (Italia)EL CONSEJO DE  LAS COMUNIDADES EUROPEAS,  Visto el Tratado constitutivo de la Comunidad Económica Europea,  Vista la Directiva 75/268/CEE del Consejo, de 28 de abril de 1975, sobre la agricultura de montaña y de determinadas zonas desfavorecidas (1), y en particular el apartado 2 de su artículo 2,  Vista la propuesta de la Comisión (2),  Visto el dictamen del Parlamento Europeo (3),  Considerando que la Directiva 75/273/CEE (4) indica las zonas de Italia incluidas en la lista comunitaria de zonas desfavorecidas tal como se definen en los apartados 3, 4 y 5 del artículo 3 de la Directiva 75/268/CEE;  Considerando que el Gobierno italiano ha solicitado, de conformidad con el apartado 2 del artículo 2 de la Directiva 75/268/CEE, que se modifique la lista comunitaria de zonas que figura en el Anexo de la Directiva 75/273/CEE;  Considerando que las nuevas zonas que se añaden en la lista respetan los criterios y valores aplicados en virtud de la Directiva 75/273/CEE para determinar las zonas en cuestión tal como se definen en el apartado 4 del artículo 3 de la Directiva  75/268/CEE;  Considerando que la modificación solicitada por el Gobierno italiano representa el 0,6 % de la superficie agrícola útil de Italia; que, como resultado de dicha solicitud, las sucesivas ampliaciones presentadas por el Gobierno italiano desde la última  modificación de la Directiva 75/273/CEE suponen un aumento aucumulado que representa más del 1,5 % de la superficie agrícola útil de Italia,  HA ADOPTADO LA PRESENTE DIRECTIVA:  Artículo 1  La lista de las zonas desfavorecidas en Italia que figura en el Anexo de la Directiva 75/273/CEE se completa mediante la lista que figura en el Anexo de la presente Directiva.  Artículo 2  La destinataria de la presente Directiva será la República Italiana.  Hecho en Bruselas, el 9 de noviembre de 1992.  Por el Consejo El Presidente D. HURD (1) DO no L 128 de 19. 5. 1975, p. 1; Directiva cuya última modificación la constituye el Reglamento (CEE) no 797/85 (DO no L 93 de 30. 3. 1985, p. 1).(2) DO no C 225 de 1. 9. 1992, p. 7.(3) Dictamen emitido el 30 de octubre de 1992 (no  publicado aún en el Diario Oficial).(4) DO no L 128 de 19. 5. 1975, p. 72; Directiva modificada por la Directiva 84/167/CEE (DO no L 82 de 28. 2. 1984, p. 1).   ANEXO     REGIÓN BASILICATA PROVINCIA DE MATERA      Municipios 1 2 3 4 5 6 7 8 Ferrandina Grassano Grottole Irsina Matera Miglionico Pomarico Salandra