title: Директива 98/57/ЕО на Съвета от 20 юли 1998 година за контрол на Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et.al.

text:
Важна правна забележка

|

31998L0057

Официален вестник n° L 235 , 21/08/1998 стр. 0001 - 0039 специално чешко издание глава 3 том 23 стр. 375  - 413 специално испанско издание глава 3 том 23 стр. 375  - 413 специално унгарско издание глава 3 том 23 стр. 375  - 413 специално литвийско издание глава 3 том 23 стр. 375  - 413 LV.ES глава 3 том 23 стр. 375  - 413 MT.ES глава 3 том 23 стр. 375  - 413 PL.ES глава 3 том 23 стр. 375  - 413 SK.ES глава 3 том 23 стр. 375  - 413 специално словенско издание глава 3 том 23 стр. 375  - 413

		19980720Директива 98/57/ЕО на Съветаот 20 юли 1998 годиназа контрол на Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et.al.СЪВЕТЪТ НА ЕВРОПЕЙСКИЯ СЪЮЗ,като взе предвид Договора за създаване на Европейската общност, и по-специално член 43 от него,като взе предвид предложението на Комисията [1],като взе предвид становището на Европейския парламент [2],като взе предвид становището на Икономическия и социален комитет [3],като има предвид, че патогенният организъм Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. преди е бил известен като Pseudomonas solanacearum (Smith) Smith; като има предвид, че Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. вероятно ще стане общоприето наименование на този организъм; като има предвид, че настоящата директива следва да вземе под внимание това развитие в науката;като има предвид, че производството на картофи и домати заема важно място в селското стопанство на Общността; като има предвид, че добивът на картофи и домати е постоянно застрашен от вредители;като има предвид, че чрез предпазване на картофените и доматени култури от вредители, не само ще се запази производствения капацитет, но ще се повиши и производителността в селското стопанство;като има предвид, че защитните мерки за предотвратяване внасянето на вредители на територията на държавите-членки биха имали само ограничен ефект, ако такива организми не се контролират едновременно и методично навсякъде в Общността и не се предотвратява тяхното разпространение;като има предвид, че един от вредителите по картофите и доматите е Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al., патогенът на кафявото гниене по картофите и на бактериалното изсъхване по картофите и доматите; като има предвид, че в някои части на Общността възникнаха огнища на заболяване, причинено от този патогенен агент и все още съществуват някои ограничени източници на инфекция;като има предвид, че съществува значителен риск за отглеждането на картофи и домати навсякъде в Общността, ако не се вземат ефективни мерки по отношение на тези култури за да се установи местонахождението на този организъм и да се определи разпространението му, да се предотврати появата и разпространението му, а в случай че бъде открит, да се предотврати разпространението му и да се осъществи контрол с цел унищожаването му;като има предвид, че с цел да се постигне това, трябва да бъдат взети определени мерки в рамките на Общността; като има предвид, че в допълнение държавите-членки трябва да могат, при необходимост, да предприемат допълнителни или по-строги мерки, при условие че не се възпрепятства движението на картофи или домати в рамките на Общността, с изключение на случаите, посочени в Директива 77/93/ЕИО на Съвета от 21 декември 1976 г. относно защитните мерки срещу въвеждане в Общността на организми, вредни за растенията или растителните продукти и срещу тяхното разпространение в рамките на Общността [4]; като има предвид, че другите държави-членки и Комисията трябва да бъдат уведомени за тези мерки;като има предвид, че мерките трябва да бъдат съобразени с необходимостта от провеждане на систематични официални обследвания за да се установи местонахождението на патогена; като има предвид, че такива обследвания следва да включват процедури за инспектиране и, при необходимост, като се има предвид, че при определени условия на околната среда заболяването може да остане латентно и незабелязано както при развиващите се картофени култури, така и при съхраняваните картофени клубени, процедури по вземане на проби и извършване на тестове; като има предвид, че разпространението на патогена сред развиващите се култури не е най-важният фактор, но имайки предвид, че патогенът може да се разпространява чрез надземните води и някои сродни диви картофени растения, и по тази причина напояването на картофените и доматените култури чрез използване на замърсена вода изглежда поставя риск от инфектиране на тези култури; като има предвид, че патогенът може да преживее зимата в саморасли картофени и доматени растения, които могат да бъдат източник на инфекция, която се пренася във всеки следващ сезон; като има предвид, че патогенът се разпространява също чрез замърсяване на картофи при контакт с инфектирани картофи и чрез контакт със съоръженията за засаждане, прибиране на реколтата и обработка или чрез контейнерите за транспорт и съхранение, които са били замърсени с организма при предишен контакт с инфектирани картофи;като има предвид, че разпространението на патогена може да бъде намалено или предотвратено чрез обеззаразяването на тези обекти, като има предвид, че всяко такова замърсяване на картофите за семе поставя значителен риск от разпространението на патогена; по същия начин латентната инфекция при картофите за семе поставя значителен риск от разпространението на патогена и това може да бъде предотвратено чрез използването на картофи за семе, произведени по официално одобрена програма, съгласно която картофите за семе са изследвани и е констатирано, че не носят инфекцията;като има предвид, че сегашните познания по отношение биологията и епидемиологията на Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. в условията на Европа са непълни и се очаква, че в рамките на няколко сезона ще е необходимо преразглеждане на предложените мерки; също така се очакват подобрения в процедурите по извършване на тестове, като се има предвид по-нататъшната изследователска работа, особено по отношение на чувствителността и специфичността на тест методите, с цел да се изберат и стандартизират оптимални валидни тест методи;като има предвид, че за определяне на подробностите на такива общи мерки, както и на по-стриктните или допълнителни мерки, взети от държавите-членки, за да се предотврати внасяне на патогена на тяхна територия, е желателно държавите-членки да осъществяват тясно сътрудничество с Комисията в рамките на Постоянния фитосанитарен комитет(наричан по-нататък "Комитетът"),ПРИЕ НАСТОЯЩАТА ДИРЕКТИВА:Член 1Настоящата директива се отнася до мерките, които ще се вземат в рамките на държавите-членки срещу Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al., преди известен като Pseudomonas solanacearum (Smith) Smith (наричан по-нататък "организмът"), с цел, по отношение на растенията-гостоприемници за организма, изброени в приложение I, раздел 1, (наричани по-нататък "изброеният растителен материал") да:а) установят местонахождението му и да определят разпределението му;б) предотвратят появата и разпространението му; ив) предотвратят разпространението му и да осъществят контрол с цел унищожаването му, в случай че бъде открит.Член 21. Държавите-членки провеждат ежегодни систематични официални обследвания за организма върху изброения растителен материал, произхождащ от тяхната територия. С цел да се открият други възможни източници на замърсяване, представляващи заплаха за производството на изброения растителен материал, държавите-членки извършват оценка на риска и, освен ако при оценката не е установен риск от разпространение на организма, провеждат в районите на производство на изброения растителен материал, контролни официални обследвания за организма върху растения, различни от изброения растителен материал, включително диви картофени растения-гостоприемници, както и на повърхностните води, които се използват за напояване или пръскане на изброения растителен материал и на отпадъчните води, отделяни от предприятията за промишлена преработка или пакетиране, в които се обработва изброеният растителен материал, и които се използват за напояване или пръскане на изброения растителен материал. Обхватът на тези контролни обследвания се определя съгласно установения риск. Държавите-членки могат също така да извършват официални обследвания за организма върху материали, като среди за отглеждане, почва и твърди отпадъци от предприятията за промишлената преработка или пакетиране.2. Официалните обследвания, предвидени в параграф 1, се извършват:а) за изброения растителен материал, съгласно критериите, изложени в точка 1 от раздел II, приложение I; иб) за растения-гостоприемници, различни от изброения растителен материал, както и за водата, включително отпадъчните води, в съответствие с подходящи методи и, при необходимост, се вземат проби, които се подлагат на официални лабораторни изпитвания или такива под официален надзор;в) при необходимост, за друг материал, в съответствие с подходящи методи.Допълнителните подробности за тези обследвания по отношение на процедурите на инспектиране и броя, произхода, напластяването и времето за вземане на проби се решават от отговорните официални органи, по смисъла на Директива 77/93/ЕИО на базата на обосновани научни и статистически принципи и биологията на организма, като се вземат под внимание специфичните системи за производство на изброения растителен материал в заинтересованата държава-членка и, при необходимост, на други растения-гостоприемници за организма.3. Останалите държави-членки и Комисията се уведомяват за подробностите и резултатите от официалните обследвания, предвидени в параграф 1, всяка година, в съответствие с разпоредбите на точка 2 от раздел II, приложение I. Тези уведомявания се предоставят до 1 юни, освен относно използването на картофите, запазени във фермата за семе, за които уведомяването се предоставя до 1 септември. Подробностите и резултатите за културите се отнасят за продукцията от предходната година. Подробностите от тези уведомявания може да се предоставят на Комитета.4. Приема се следната разпоредба в съответствие с процедурата, определена в член 16а от Директива 77/93/ЕИО:- подходящите методи за обследвания и за лабораторни тестове, предвидени в параграф 2, алинея първа, буква б).5. Могат да бъдат приети следните разпоредби в съответствие с процедурата, определена в член 16а от Директива 77/93/ЕИО:- подходящите методи за обследвания, предвидени в параграф 2, алинея първа, буква в),- допълнителни подробности за обследванията, предвидени в параграф 2, алинея втора, с оглед да се гарантират сравними нива на осигуряване между държавите-членки.Член 3Държавите-членки вземат мерки, така че техните собствени отговорни официални органи да получават информация за предполагаема поява или потвърдено наличие на организма на тяхната територия.Член 41. Във всеки случай на предполагаема поява, отговорните официални органи на засегнатите държави-членки осигуряват извършване на официално или под официален надзор лабораторно изследване, като за изброения растителен материал използват съответния метод, определен в приложение II и в съответствие с условията, посочени в точка 1 от приложение III, или, във всички останали случаи, който и да е друг официално одобрен метод, с цел да се потвърди или отхвърли предполагаемото наличие. В случай на потвърждаване се прилагат изискванията, посочени в точка 2 от приложение III.2. До потвърждаване или отхвърляне на предполагаема поява, съгласно параграф 1, във всеки случай на предполагаема поява, в който:i) са забелязани диагностични симптоми на заболяването, причинено от организма, и е получен положителен резултат при бързия/те скринингов/и тест/ове, в съответствие с предвиденото в приложение II, раздел I, точка 1 и раздел II; илиii) е получен положителен резултат при скрининговия/те тест/ове в съответствие с предвиденото в приложение II, раздел I, точка 2 и раздел III;отговорните официални органи на държавите-членки, във връзка със собственото си производство:а) забраняват движението на растения и клубени от всички култури, партиди или пратки, от които са взети пробите, освен ако то не се извършва под техен контрол и при условие че е установено отсъствието на риск от разпространение на организма;б) предприемат мерки за проследяване произхода на предполагаемата поява;в) въвеждат подходящи допълнителни предохранителни мерки на базата на нивото на прогнозирания риск, особено във връзка с производството на изброения растителен материал и движението на партиди от картофи за семе, различни от тези, посочени в буква а), получени на мястото на производство, откъдето са взети пробите, посочени в буква а), с цел да се предотврати всякакво разпространение на организма.3. В тези случаи на предполагаема поява, при която има риск от замърсяване на изброения растителен материал или надземните води от или към друга/и държава/и-членка/и, държавата-членка, в която е докладвано за предполагаемата поява, незабавно уведомява другите засегнати държави-членки, съобразно установения риск, за подробностите относно посочената предполагаема поява и се осъществява подходящо сътрудничество между посочените държави-членки. Уведомените държави-членки въвеждат предохранителни мерки в съответствие с параграф 2, буква в) и, при необходимост, предприемат по-нататъшни действия, съгласно параграфи 1 и 2.4. Могат да бъдат приети следните разпоредби в съответствие с процедурата, предвидена в член 16а от Директива 77/93/ЕИО:- мерките, посочени в параграф 2, буква в).Член 51. Ако в резултат на официално или извършено под официален надзор лабораторно изследване, използващо за изброения растителен материал определения в приложение II метод, или, във всички останали случаи, който и да е друг официално одобрен метод, се потвърди наличие на организма в проба, взета съгласно настоящата директива, тогава отговорните официални органи на държавата-членка, като вземат предвид обоснованите научни принципи, биологията на организма и специфичните системи на производство, пускане на пазара и обработка на растенията-гостоприемници за организма в тази държава-членка:а) за изброения растителен материал;i) започват разследване за да определят обхвата и първоначалния/те източник/ци на замърсяване, в съответствие с разпоредбите на приложение IV, с последващо извършване на тестове в съответствие с член 4, параграф 1, на поне всички видове картофи за семе от един генетичен клон; иii) обозначават като замърсен изброения растителен материал, пратката и/или партидата, от която е взета пробата, както и машините, превозните средства, съдовете, складовете или участъци от тях, и всички други предмети, включително опаковъчния материал, който е бил в контакт с изброения растителен материал, от който е взета пробата; също така, по целесъобразност, обозначава като замърсени полето/ата, участъка/ците за производство на защитени култури и мястото (местата) за производство, от които е получен изброения растителен материал и от които е взета пробата; а при пробите, взети по време на вегетация, обозначава като замърсени полето/ата, мястото/местата за производство и, при необходимост, участъка/ците за производство на защитени култури, от които е взета пробата; иiii) определят, в съответствие с разпоредбите на точка 1 от приложение V, обхвата на вероятното замърсяване чрез контакт преди или след прибиране на реколтата, чрез производствени, напоителни или оросителни връзки или чрез клонингова връзка с обявеното замърсяване; иiv) разграничават зона на базата на обявеното замърсяване по ii), на определения обхват на вероятното замърсяване по iii) и на възможното разпространение на организма, в съответствие с разпоредбите на буква 2, i) от приложение V;б) за култури от растения-гостоприемници, различни от посочените в точка а), когато е установен риск за производството на изброения растителен материал,i) започват разследване, в съответствие с буква а), i); иii) обозначават като замърсени растенията-гостоприемници за организма, от които е взета пробата; иiii) определят вероятното замърсяване и разграничават зона, в съответствие с буква а), iii) и iv) съответно, във връзка с производството на изброения растителен материал;в) за повърхностни води (включително отпадъчни води, от предприятията за промишлена преработка или пакетиране, в които обработват изброения растителен материал) и сродни диви картофени растения-гостоприемници, когато производството на изброения растителен материал е изложено на риск чрез напояване, пръскане или наводняване от повърхностните води;i) започват разследване, включващо официално обследване през подходящи интервали от време на проби от повърхностни води и, ако присъстват диви картофени растения гостоприемници, установяват обхвата на замърсяването; иii) обозначават като замърсени повърхностните води, от които са взети пробите, до подходящата степен и на базата на разследването съгласно i); иiii) определят вероятното замърсяване и разграничават зона на базата на обявеното замърсяване по точка ii) и възможното разпространение на организма, като вземат под внимание разпоредбите на точки 1 и 2, ii) от приложение V.2. Държавите-членки незабавно уведомяват останалите държави-членки и Комисията, в съответствие с разпоредбите на точка 3 от приложение V, за всяко замърсяване, обявено съгласно параграфи 1, буква а), ii) и 1 буква в), ii) и за подробностите относно разграничаването на зоната, съгласно параграф 1, буква в), iv) и, при необходимост, съгласно параграф 1, буква в), iii). Подробностите от тези уведомявания могат да се предоставят на Комитета.Държавите-членки в същото време предоставят на Комисията допълнителното известие, посочено в точка 4 от приложение V. Подробностите от известието по тази алинея незабавно се предоставят на членовете на Комитета.3. В резултат на известието по параграф 2 и посочените там елементи, други държави-членки, които са изброени в известието, започват разследване съгласно параграф 1, буква а), i) и, при необходимост, по параграф 1, буква в), i) и предприемат по целесъобразност по-нататъшни действия в съответствие с параграфи 1 и 2.Член 61. Държавите-членки постановяват, че този изброен растителен материал, обявен като замърсен по член 5, параграф 1, буква а), i), не може да се засажда и, под контрола и одобрението на техните отговорни официални органи, е предмет на една от разпоредбите в точка 1 от приложение VI, така че да се гарантира липсата на риск от разпространение на организма.2. Държавите-членки постановяват, че този изброен растителен материал, определен като вероятно замърсен съгласно член 5, параграф 1, буква а), iii) и в), iii), включително изброения растителен материал, за който е установен риск и който е произведен на места, определени като вероятно замърсени по член 5, параграф 1, буква а), iii), не може да се засажда и, под контрола на техните отговорни официални органи, е подходящо оползотворен или ликвидиран, в съответствие с предвиденото в точка 2 от приложение VI, така че да не се установява съществуването на риск от разпространение на организма.3. Държавите-членки постановяват, че всички машини, превозни средства, съдове, складове или участъци от тях и всички други предмети, включително опаковъчен материал, обозначени като замърсени по член 5, параграф 1, буква а), ii) или определени като вероятно замърсени по член 5, параграф 1, буква а), iii) и в), iii), трябва да бъдат или унищожени или обеззаразени чрез използване на подходящи методи, в съответствие с предвиденото в точка 3 от приложение VI. След обеззаразяване всички тези предмети не се считат вече за замърсени.4. Без да се засягат мерките, предприети съгласно параграфи 1, 2 и 3, държавите-членки постановяват, че в зоната, разграничена съгласно член 5, параграф 1, буква а), iv) и в), iii), трябва да бъде изпълнена серия от мерки, в съответствие с предвиденото в точки 4.1 и 4.2 от приложение VI. Останалите държави-членки и Комисията се уведомяват ежегодно за подробностите във връзка с тези мерки. Подробностите от това известие могат да бъдат предоставени на Комитета.Член 71. Държавите-членки постановяват, че картофите за семе трябва да отговарят на изискванията от Директива 77/93/ЕИО и да са добити по пряка линия от картофен материал, получен съгласно официално одобрена програма, за който е констатирано, че няма наличие на организма чрез официално изследване или чрез такова, извършено под официален надзор с използване на съответния метод, определен в приложение II.Посоченото изследване се извършва от държава-членка:а) в случаи, когато е потвърдено наличие на организма в нейна собствена продукция от картофи за семе;i) чрез изследване на по-ранния размножителен материал, включително първоначалната клонингова селекция и систематично изследване на основните картофени клонове за семе; илиii) в случаи, когато е установено, че няма клонингова връзка, чрез изследване на всички основни клонове картофи за семе или по-ранния размножителен материал, включително първоначалната клонингова селекция; иб) в останалите случаи, или на всяко растение от първоначалната клонингова селекция, или на представителни проби от основните картофи за семе, или на по-ранния размножителен материал.2. Следните разпоредби могат да бъдат приети в съответствие с процедурата, определена в член 16а от Директива 77/93/ЕИО:- подробните правила за прилагане на параграф 1, втора алинея, буква а),- правилата относно представителните проби, предвидени в параграф 1, втора алинея, буква б).Член 8Държавите-членки забраняват притежаването и извършването на манипулации с организма.Член 9Без да се засягат разпоредбите на Директива 77/93/ЕИО, държавите-членки могат да разрешат дерогации от мерките, посочени в членове 6 и 8 от настоящата директива, в съответствие с разпоредбите, определени в Директива 95/44/ЕО [5] за експериментални или научни цели и за работа върху селекция на нови сортове.Член 10Държавите-членки могат да приемат, във връзка със собственото си производство, такива допълнителни или по-строги мерки, каквито може да са необходими за борба срещу организма или за да се предотврати неговото разпространение, доколкото те са в съответствие с разпоредбите на Директива 77/93/ЕИО.Подробностите за прилагане на тези мерки се нотифицират на другите държави-членки и на Комисията. Комитетът може да бъде сезиран за условията и реда на това нотифициране.Член 11Изменения на приложенията към настоящата директива, изготвени съобразно развитието в научното и техническото познание, се приемат в съответствие с процедурата, определена в член 16а от Директива 77/93/ЕИО. По отношение на методите, определени в приложение II и по отношение на мерките в параграфи 4.1 и 4.2 от приложение VI към настоящата директива, Комисията изготвя доклад за преразглеждане на тези методи и мерки на базата на натрупания опит, като докладът се предоставя на Комитета преди 1 януари 2002 г.Член 121. Държавите-членки въвеждат в сила законовите, подзаконовите и административните разпоредби, необходими за да се съобразят с настоящата директива, преди 21 август 1999 г. Те незабавно информират Комисията за това.Когато държавите-членки приемат тези разпоредби, в тях се съдържа позоваване на настоящата директива или то се извършва при официалното им публикуване. Условията и редът на позоваване се определят от държавите-членки.2. Държавите-членки съобщават незабавно на Комисията текста на основните разпоредби от националното законодателство, които те приемат в областта, уредена с настоящата директива. Комисията информира останалите държави-членки за тези разпоредби.Член 13Настоящата директива влиза в сила в деня на публикуването ѝ в Официален вестник на Европейските общности.Член 14Адресати на настоящата директива са държавите-членки.Съставено в Брюксел на 20 юли 1998 година.За СъветаПрезидентW. Molterer[1] ОВ С 124, 21.4.1997 г., стр. 12, иОВ С 108, 7.4.1998 г., стр. 85.[2] ОВ С 14, 19.1.1998 г., стр. 34.[3] ОВ С 206, 7.7.1997 г., стр. 57.[4] ОВ L 26, 31.1.1977 г., стр. 20. Директива, последно изменена с Директива 98/2/ЕО на Комисията (ОВ L 15, 21.1.1998 г., стр. 34).[5] ОВ L 184, 3.8.1995 г., стр. 34. Директива, последно изменена с Директива 97/46/ЕО на Комисията (ОВ L 204, 31.7.1997 г., стр. 43).--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ IРАЗДЕЛ IСписък на растения-гостоприемници за Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al., посочен в член 1Растения (включително клубени), освен същинските семена, от вида Solanum tuberosum L. | Картоф |Растения, освен плодовете и семената, от вида Lycopersicon lycopersicum (L.) Karsten ex Farw. | Домат |РАЗДЕЛ IIОбследвания1. Официалните обследвания, посочени в член 2, параграф 2, буква а) се основават върху биологията на организма и специфичните системи на производство в засегнатата държава-членка и включват:i) при картофи;- през подходящи интервали от време, визуален преглед на растящата култура, и/или вземане на проби, както от картофите за семе, така и от останалите картофи по време на вегетация или в склада. Тези проби се подлагат на официален или извършен под официален надзор визуален преглед, чрез разрязване на клубените, и- при картофите за семе, а при необходимост и при други картофи, официално или извършено под официален надзор лабораторно изследване по метод, определен в приложение II;ii) при домати;- визуален преглед през подходящи интервали от време поне на растящите култури от растенията, предназначени за пресаждане с професионална цел.2. Известяването на официалните обследвания, посочени в член 2, параграф 3 включва:i) в случай на обследвания върху картофи;- предполагаема обща площ, в хектари, засадена с картофи за семе и други картофи,- класифициране по категории за семе и продукция и, при необходимост, по район,- брой и обозначаване времето на взетите за изследване проби,- брой визуални прегледи на полето,- брой (и размер на пробата) визуални прегледи върху клубени;ii) в случай на обследвания поне върху растящите култури от доматени растения, предназначени за пресаждане с професионална цел:- предполагаем общ брой растения,- брой визуални прегледи;iii) в случай на обследвания върху растения-гостоприемници, различни от картофи и домати, включително диви картофени растения-гостоприемници:- вид,- брой и обозначаване времето на взетите проби,- по целесъобразност, район/река, откъдето е взета пробата,- метод на изследване;iv) в случай на обследвания на вода и течни отпадъци, отделяни от помещения за промишлена преработка или пакетиране;- брой и обозначаване времето на взетите проби,- по целесъобразност, район/река/местоположение на помещенията, откъдето е взета пробата,- метод на изследване.--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ IIСХЕМА ЗА ИЗПИТВАНЕ ЗА ДИАГНОСТИЦИРАНЕ, ОТКРИВАНЕ И ИДЕНТИФИЦИРАНЕ НА RALSTONIA SOLANACEARUM (SMITH) YABUUCHI ET ALОБХВАТ НА ТЕСТ СХЕМАТАПредставената схема описва различните процедури, включени в:i) диагностициране на кафяво гниене по картофени клубени и на бактериално изсъхване по картофени и доматени растения;ii) откриване на Ralstonia solanacearum в проби от картофени клубени;iii) идентифициране на Ralstonia solanacearum.В допълненията са дадени подробности относно подготовката на материалите за теста, т. е. среда на култивиране, буфери, разтвори, реактиви.СЪДЪРЖАНИЕ:РАЗДЕЛ I: Прилагане на тест схемата1. Диагностициране на кафяво гниене по картофени клубени и на бактериално изсъхване по картофени и доматени растения…2. Откриване и идентифициране на Ralstonia solanacearum в проби от картофени клубени…РАЗДЕЛ II: Диагностициране на кафяво гниене по картофените клубени и на бактериално изсъхване по картофени и доматени растения1. Симптоми…2. Бърз/и скринингов/и тест/ове3. Процедура по изолиране4. Тест/ове за доказванеРАЗДЕЛ III: Откриване и идентифициране на Ralstonia solanacearum в проби от картофени клубени1. Подготовка на пробите за изследване…2. Имунофлуоресцентен тест (IF)3. Тест с ензимно-свързан имуно-сорбентен анализ (ELISA)4. Тест с верижно-полимеразна реакция (PCR™)5. Тест в селективни блюда…6. Биологичен тест7. Обогатителни тестове8. Тест за патогенностДопълнение 1 Хранителни среди за изолиране и култивиране на Ralstonia solanacearumДопълнение 2 Материали за подготовка на пробитеДопълнение 3 Материали за IF тестДопълнение 4 Определяне степента на замърсяване при IF тестДопълнение 5 Материали за ELISA тест…Допълнение 6 Материали за PCR тестДопълнение 7 Материали за тестовете върху селективни и обогатителни средиЛитератураРАЗДЕЛ IПРИЛАГАНЕ НА ТЕСТ СХЕМАТА1. Диагностициране на кафяво гниене по картофените клубени и на бактериално изсъхване по картофени и доматени растенияПроцедурата по тестването е предназначена за картофени клубени с характерни или предполагаеми симптоми на кафяво гниене и за картофени и доматени растения с характерни или предполагаеми симптоми на бактериално изсъхване. Тя включва бърз скринингов тест, изолиране на патогена от инфектираната васкуларна тъкан върху диагностични среди и в случай, че се получи положителен резултат, идентифициране на културата като Ralstonia solanacearum.Забележки по диаграмата:(1) Описание на симптомите е дадено в раздел II.1(2) Бързите скринингови тестове улесняват предварителната диагнозаПодходящи тестове са:- Тест за изтечения от васкуларна тъкан на стебло (раздел II.2),- Тест за гранули от поли-β-хидроксибутират (раздел II.2),- IF тест (раздел II.2),- ELISA тест (раздел III.3),- PCR тест (раздел III.4)(3) Въпреки че изолирането на патогена от растителен материал с характерни симптоми чрез посевки от разреждания е просто, култивирането може да е неуспешно в напреднали стадии на инфекцията. Сапрофитни бактерии, които растат върху поразените тъкани могат да се развият или да забавят растежа на патогена върху средата за изолирането му. Ако тестът за изолиране е отрицателен, но симптомите на заболяването са характерни, изолирането трябва да се повтори, за предпочитане чрез тест в селективни блюда.(4) Надеждно идентифициране на чиста култура от Ralstonia solanacearum се осъществява чрез поне един от изброените в раздел II.4.1 тестове в комбинация с тест за патогенност (раздел II.4.3). Определянето на щама не е задължително, но се препоръчва за всеки нов случай.+++++ TIFF +++++Pacтeния oт кapтoфи или дoмaти или гpyдки oт кapтoфи, кoитo имaт тeзи cимптoми (1)Tecтoвe зa бъpз cкpийнинг (2)ИЗOЛИPAHEKoлoнии c типичнa мopфoлoгияНЕ (3)ДАТЕСТ/ОВЕ ЗА ПОTBЪPЖДEHИEИдeнтификaция (4) нa чиcтa кyлтypa кaтo Ralstonia solanacearum плЮc тecт зa пaтoгeннocт (4)Pacтeния и/ или гpyдки, кoитo нe ca зapaзeни c Ralstonia solanacearumНЕ (3)ДАPacтeния и/ или гpyдки, кoитo ca зapaзeни c Ralstonia solanacearum2. Откриване и идентифициране на Ralstonia solanacearum в проби от картофени клубениПроцедурата е предназначена за откриване на латентна инфекция при картофени клубени чрез един, или за предпочитане, повече скринингови тестове, които, в случай че дадат положителен резултат, се допълват от изолиране на патогена; последвано от идентифициране на чиста култура Ralstonia solanacearum, в случай на изолиране на типични колонии.Забележки по диаграмата:(1) Размер на пробатаСтандартният размер е 200 клубена. Независимо от това, процедурата може да бъде приложена и за проби с по-малко от 200 клубена.(2) Скринингови тестовеСамо един тест може да не е достатъчно чувствителен или надежден за откриване на Ralstonia solanacearum в проба. Поради това се препоръчва повече от един тест, като е за предпочитане тези тестове да се основават на различни биологични принципи.(3) Имунофлуоресцентен (IF) тестIF тестът е добре доказан скринингов тест. Това е предимство пред други тестове, които не са все още напълно развити или утвърдени. Тестът се използва за много други установени бактерии, като например Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus. Определените в този метод параметри за отчитане го правят чувствителен тест (праг на чувствителност 103—104 клетки/ml гранулиран картофен екстракт).Критичният фактор за надеждността на резултата от теста е качеството на антисерума. Допуска се само антисерум с висок титър (най-малко 2000 за непречистения антисерум), като всички тестове трябва да се извършват при титъра на антисерума или едно разреждане под титъра. Предпочита се индиректният метод. Директният метод може да се прилага, ако тестът има ниво на чувствителност и специфичност еднакво с това на индиректния метод.IF тест има предимството, че морфологията на клетъчното оцветяване и интензитета на флуоресценцията, които дават информация за специфичността на реакцията, се тълкуват субективно. Често се срещат кръстосани реакции със серологично сходни бактерии от почвата или свързани с картофени тъкани, чиито клетки имат морфологията на Ralstonia solanacearum. IF тестът може да бъде използван като единствен скринингов тест, въпреки че в случай на предполагаема кръстосана реакция, трябва да се направи допълнителен скринингов тест основан на различен биологичен принцип. В такива случаи най-подходящ е тестът в селективни блюда.(4) Посявка в селективни блюдаМодифицираната среда SMSA и установената в този метод методология на тестване го правят чувствителен и селективен за Ralstonia solanacearum. Резултатът е готов за 3—6 дни след подготовка на пробата. Патогенът се получава директно в култура и лесно може да бъде идентифициран. За пълно използване на възможностите му, тестът изисква внимателна подготовка на столоновите краища, за да се избегнат вторичните бактерии свързани с картофения клубен, които са конкуренти на Ralstonia solanacearum върху средата и могат да повлияят на растежа на патогена. Някои щамове може да растат слабо, тъй като компонентите на средата е възможно да повлияят върху целевия организъм. Необходимо е внимателно да се разграничи Ralstonia solanacearum от други бактерии, които могат да се развият върху средата. Посявка в селективни блюда може да бъде използвана като единствен скринингов тест, при условие че в случаи на подозирано инхибиране на Ralstonia solanacearum от други бактерии и получен отрицателен резултат при теста, пробата се тества отново с различен тест, за да се потвърди или отхвърли диагнозата. В тези случаи, най-подходящ е IF тест.(5) ELISA тестТестът ELISA като цяло е по-малко чувствителен от IF тест (праг на чувствителност 104—105 клетки/ml гранулиран картофен екстракт). Тестът е евтин и бърз, но като цяло по-податлив на лъжлив положителен резултат (кръстосани реакции) и лъжлив отрицателен резултат (инхибиране от фенолни молекули в екстракта от картоф). Изискванията за специфичността на антисерума са изключително високи. Тестът ELISA не може да бъде използван като единствен скринингов тест.(6) PCR тестТестът PCR има възможности за много чувствително откриване, въпреки че лесно се инхибира от компоненти на екстракта от растенията или клубените и дава лъжлив отрицателен резултат. Някои видове картофи съдържат повече инхибитори от други. Поради тази причина е необходимо тези инхибитори да се премахнат. Инхибирането може да се намалени чрез разреждане, но популациите на Ralstonia solanacearum също се разреждат. Голямо внимание трябва да се обърне на всяка стъпка от приготвянето на пробите и теста, за да се предотврати замърсяване, което би довело до лъжливи положителни резултати. Лъжливи положителни резултати могат да се получат и от хомоложни последователности на други организми. По тези причини директния PCR тест не може да се използва като единствен скринингов тест.(7) Обогатителен тестИнкубирането на проби гранулиран картофен екстракт в полу-селективен бульон, като модифициран SMSA бульон, позволява намножаване на Ralstonia solanacearum. По-важно е може би, че той също разтваря евентуални инхибитори на тестовете ELISA или PCR. По този начин Ralstonia solanacearum може да бъде открита в обогатителен бульон чрез IF, ELISA и PCR. Не препоръчваме да се прави директна посявка от обогатените бульони. Тези обогатителни методи не са изпробвани и тествани задълбочено. Тук са включени, тъй като притежават потенциал. Поради относителната липса на опит с тях, обаче, не могат да бъдат използвани като единствени методи за откриване.(8) Биологичен тестБиологичният тест се използва за изолиране на Ralstonia solanacearum от екстракт от картоф чрез селективно обогатяване в растение гостоприемник и може да бъде извършен върху доматени растения или патладжани. Тестът изисква оптимални условия за инкубиране, както е определено в този метод. Бактерии инхибитори на Ralstonia solanacearum върху хранителна среда SMSA, най-вероятно няма да повлияят този тест.(9) Тест/ове за доказванеНадеждно идентифициране на чиста култура от Ralstonia solanacearum се постига, чрез използване на поне един от изброените в раздел II.4.1. тестове в комбинация с тест за патогенност (раздел II.4.3). Определянето на щама не е задължително, но се препоръчва за всеки нов случай.+++++ TIFF +++++проба от картофени клубени (1)СКРИНИНГОВ/И ТЕСТ/ОВЕ (2)IF тест (3) и/или култивиране в селективни блюда (4) с допълнителни тестове по избор:ELISA тест (5)PCR тест (6)Обогатителен тест (7)пробата не е инфектирана с Ralstonia solanacearumпоне един положителен тествсички направени тестове са отрицателниТЕСТ/ОВЕ ЗА ИЗОЛИРАНЕв селективни блюдаи/илибиологичен тест (8)Колонии с типична морфологияпробата не е инфектирана с Ralstonia solanacearumДАНЕТЕСТ/ОВЕ ЗА ДОКАЗВАНЕидентифициране (9) на културата като Ralstonia solanacearum плюс тест за патогенност (9)пробата не е инфектирана с Ralstonia solanacearumДАНЕпробата е инфектирана с Ralstonia solanacearumРАЗДЕЛ IIДиагностициране на кафяво гниене по картофени клубени и на бактериално изсъхване по картофени и доматени растения1. Симптоми1.1 Симптоми при картофитеКартофеното растение. Ранният стадий на инфекцията се характеризира с изсъхване на листата към върха на растението при високи температури през деня и възстановяване през нощта. Изсъхването бързо става необратимо и в резултат растението умира. Васкуларната тъкан в напречно прерязани стебла от изсъхнали растения може да стане кафява, а от разрезната повърхност да се отделя или да бъде лесно изцедена чрез притискане подобна на мляко течност. Когато прерязано стебло се постави вертикално във вода от проводящите снопчета се отделят нишки слуз.Картофеният клубен. Картофените клубени трябва да се прережат напречно близо до края на столона. Ранният стадий на инфекцията се характеризира с прозрачно жълто до светлокафяво обезцветяване на проводящия пръстен, от който спонтанно след няколко минути или след като се приложи лек натиск с палците върху обвивката близо до разрезната повърхност се отделя бледокремава течност. Впоследствие обезцветяването на проводящата тъкан става по-силно кафяво и некрозата може да се разпространи в паренхимната тъкан. В напреднали стадии инфекцията се разпространява навън от края на столона и очите, което може да доведе до появата на червеникаво-кафяви, леко вдлъбнати изменения по обвивката, от които може да се отделят капки съдържащи бактерии, предизвиквайки слепване на почвените частици.1.2 Симптоми при доматитеДоматено растение. Първият явен симптом е отпуснат вид на по-младите листа. При благоприятни за патогена условия на околната среда (температура на почвата около 25 °С и висока влажност) до няколко дни настъпва епинастия и изсъхване на едната страна или на цялото растение, което води до загиване на растението. При по-неблагоприятни условия (температура на почвата под 21 °С) върху стеблото може да се развият голям брой добавъчни корени. Възможно е да се забележи размекната връв по дължина на стеблото, което е доказателство за некротизиране на васкуларната система. Когато стеблото се пререже на кръст, обезцветените кафяви васкуларни тъкани на стеблото отделят капки бяла или жълтеникава течност, съдържаща бактерии.2. Бързи скринингови тестовеБързите скринингови тестове улесняват предварителната диагноза. Използват се един или повече от следните тестове:Тест за изтечения от стеблотоНаличието на Ralstonia solanacearum в изсъхващи стебла от картоф или домат може да се определи чрез следния елементарен предварителен тест:Стеблото се прерязва точно над почвената повърхност. Прерязаната повърхност се поставя в мензура с вода. След кратко време от проводящите снопчета спонтанно започват да се отделят нишки от слуз, съдържаща бактерии. Никоя друга бактерия, която причинява инфекция на проводящата тъкан при картофени или доматени растения, не показва този феномен.Откриване на гранули от поли-β-хидроксибутират (ПХБ)Гранулите ПХБ в клетките на Ralstonia solanacearum стават видими след боядисване с нилско синьо А или със суданово черно Б.Приготвя се намазка от течността или суспендираната тъкан върху предметно стъкло или намазка от 48-часова култура върху YPGA или SPA. (допълнение 1) Приготвят се положителни контролни намазки от щам биовариант2/раса 3 и ако счетете за полезно, отрицателна контролна намазка от хетероложен щам. Оставя се да изсъхне. Долната повърхност на предметното стъкло се прекарва няколко пъти бързо през пламъка докато намазката се фиксира.Тест с нилско синьо1) Залива се фиксираната намазка с 1 % воден разтвор на нилско синьо А.Инкубирасе 10 минути при 55 °С.2) Отлива се оцветяващият разтвор. Промива се за кратко време под леко течаща водна струя. Излишната вода се отстранява с книжна салфетка.3) Намазката се залива с 8 % воден разтвор на оцетна киселина.Инкубира се една минута при стайна температура.4) Промивасе под леко течаща водна струя. Подсушава се върху книжна салфетка.5) Навлажнявасе отново с капка вода. Поставя се покривно стъкло.6) Боядисаната намазка се разглежда с епифлуоресцентен микроскоп при 450 nm под маслена имерсия и увеличение 1000.Наблюдава се за светло-оранжева флуоресценция от гранули ПХБ. Също така се наблюдава при обикновена светлина, за да се провери дали гранулите са вътреклетъчни и дали морфологията на клетките е типична за Ralstonia solanacearum.Тест със суданово черно1) Фиксираната намазка се залива с 0,3 % разтвор на суданово черно В в 70 % етанол. Инкубира се 10 минути при стайна температура.2) Отлива се оцветяващия разтвор. Промива се за кратко време под течаща водна струя. Излишната вода се отстранява с книжна салфетка.3) Намазката се потапя за кратко време в ксилол. Подсушава се върху книжна салфетка.Внимание! Ксилолът е вреден продукт. Работете в камина.4) Залейте намазката с 0,5 % (тегловно-обемен) воден разтвор на сафранин и оставете 10 секунди на стайна температура.Внимание! Сафранинът е вреден продукт. Работете в камина.5) Промива се под леко течаща водна струя. Подсушава се върху филтърна хартия. Поставя се покривно стъкло.6) Боядисаната намазка се разглежда със светлинен микроскоп под насочена светлина, под маслена имерсия и увеличение 1000.Гранулите ПХБ в клетките на Ralstonia solanacearum се оцветяват в синьо-черно. Клетъчната стена се оцветява в розово.Други тестовеДруги подходящи скринингови изпитвания са IF тест (раздел III.2), ELISA тестът (раздел III. 3), и PCR тестът (раздел III.4).3. Процедура по изолиране3.1 Отстранява се течността или участъците с обезцветена тъкан от проводящия пръстен в картофения клубен или от проводящите нишки в стеблото от картофените или доматени растения. Суспендира се в малко количество стерилна дестилирана вода или 50 mM фосфатен буфер и се оставя 5—10 минути върху масата.3.2 Извършва се поредица от десетократни разреждания на суспензията, напр. 1/10 и 1/100 или повече, ако е необходимо.3.3 Стандартно количество от суспензията и разрежданията се прехвърля върху обикновена хранителна среда (NA, YPGA и SPA, допълнение 1) и/или върху тетразолна среда на Келман (допълнение 1) и/или върху селективна среда SMSA (допълнение 7). Разстила се или се нанася на резки с подходяща техника за посявка от разтвор. При необходимост се извършват отделни посявки върху всяка използвана среда с разредена клетъчна суспензия от култура на вирулентен щам биовариант 2/раса 3 на Ralstonia solanacearum като положителна контрола.3.4 Блюдата се инкубират три дни при 28 °С. Инкубирането може да продължи до шест дни, ако растежът е бавен, но колониите в блюда със SMSA често стават атипични и отмират.Върху обикновените хранителни среди, вирулентните изолати от Ralstonia solanacearum развиват бисернобели, плоски, неправилни и разляти колонии, често с характерни извивки.Върху тетразолна среда на Келман, типичните колонии на вирулентните изолати от Ralstonia solanacearum са кремави, плоски, неправилни и разляти с кървавочервени извивки в центъра. Авирулентните форми на Ralstonia solanacearum развиват маслоподобни тъмночервени колонии.Върху SMSA среда, типичните колонии на вирулентните изолати от Ralstonia solanacearum са млечнобели, плоски, неправилни и разлети с кървавочервено оцветяване в центъра.Авирулентните форми на Ralstonia solanacearum развиват по-слабо разлети колонии, които са изцяло розови до червени върху средата SMSA.3.5 Пречисват се колониите с характерна морфология, чрез рекултивиране върху обикновена хранителна среда. Многократно рекултивиране трябва да се избягва, защото може да предизвика загуба на вирулентност.4. Тест/ове за доказване4.1 Идентифициране на Ralstonia solanacearumИдентифицира се чиста култура от Ralstonia solanacearum, чрез поне една от следните процедури:Хранителни и ензимни тестовеЗабележка: Включват се подходящи контролни щамове при всеки използван тест.Следните фенотипни качества на Ralstonia solanacearum присъстват или отсъстват при всички случаи:Флуоресцентен пигмент | - |Включения от ПХБ | + |Окислително-ферментационен тест (О/Ф) | О+/Ф- |Каталаза | + |Оксидаза на Kovac | + |Редукция на нитрати | + |Използване на цитрат | + |Растеж при 40 °С | - |Растеж при 1 % NaCl | + |Растеж при 2 % NaCl | - |Аргинин дихидролаза | - |Разтапяне на желатин | - |Хидролиза на скорбяла | - |Хидролиза на езулин | - |Образуване на леван | - |Хранителните среди и методите са дадени в Lelliott & Stead (1987г.)IF тестИзготвя се суспензия с 106 клетки/ml от културата и контролния щам/ове. Провежда се поредица от двукратни разреждания на антисерума и се прилага процедурата за IF тест (раздел III.2). IF титрите за културата и положителната контрола трябва да бъдат равни.Тест ELISAИзготвя се суспензия с > 106 клетки/ml от културата и от контролния/те щам/ове и се прилага процедурата за ELISA теста. (раздел III.3). ELISA стойностите от теста за културата и положителната контрола трябва да бъдат равни.Тест PCRИзготвя се суспензия с 106 клетки/ml от културата и контролния/те щам/ове и се прилага процедурата за PCR теста (раздел III.4). Културата и положителната контрола трябва да имат един и същ размер на PCR продукта и еднаква структура при рестриктазно-ензимния анализ (REA).Флуоресцентна in-situ хибридизация (FISH)Изготвя се суспензия с 106 клетки/ml от културата и контролния щам/ове. При ага се процедурата за FISH (van Beuningen et al, 1995) с PCR праймер OLI-1 (Seal et al, 1993). Културата и положителната контрола трябва да дадат еднаква реакция.Протеинов профилПротеини от денатурирани цели клетки се разделят чрез електрофореза в полиакриламиден гел — PAGE (Stead, 1992a)Мастнокиселинен профил (FAP)Изготвя се посявка от културата и щам за положителна контрола върху соев агар и се инкубира 48 часа при 28 °С, след което се прилагапроцедурата за FAP. (Janse, 1991; Stead, 1992a; Stead, 1992b). Профилът на културата трябва да бъде идентичен с този на положителната култура. При описаните условия, характерните мастни киселини са 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH и 18:1 2OH.4.2 Определяне на щамаОпределянето на щама не е задължително, но се препоръчва за всеки нов случай чрез използване на поне някое от следните:Определяне на биовариантаRalstonia solanacearum се разделя на биоварианти въз основа на способността да произвежда киселина от три хексозни алкохола и три въглехидрата (Hayward, 1964 & 1994).| | Биовариант |1 | 2 | 3 | 4 | 5 |Използване на: | — малтоза | – | + | + | – | + |— лактоза | – | + | + | – | + |— целобиоза | – | + | + | – | + |— манитол | – | – | + | + | + |— сорбитол | – | – | + | + | – |— дулцитол | – | – | + | + | – |Допълнителни тестове разграничават биовариант 2 на субфенотипове (Hayward, 1994)| Биовариант 2 | Биовариант 2-А | Биовариант 2-Т |използване на трехалоза | – | + | + |използване на инозитол | + | – | + |използване на D-рибоза | – | – | + |пектолитична активност | ниска | ниска | висока |Определяне на расатаРасата (Buddenhagen et al., 1962) може да бъде определена въз основа на тест за патогенност в доматени растения или патладжани и в тютюневи растения и чрез тест за реакция на свръхчувствителност (HR) в тютюневи листа (Lozano и Sequeira, 1970):| | Раса [1] |1 | 2 | 3 |Реакция в: | — доматени растения/патладжани | изсъхване | няма реакция | изсъхване |— няма реакция | изсъхване | няма реакция | тютюневи листа |— тютюневи растения | некроза (48 h) и изсъхване (7—8 дни) | HR (12—24 h) | хлороза (2—8 дни) |Определянето на расата чрез теста за патогенност или теста за тютюнева свръхчувствителност може да не е много сигурно и вместо това за нея може да се съди по биоварианта и първоначалния естествен гостоприемник.Освен това, културата може да бъде характеризирана чрез:Типизиране на геномаМолекулно разграничаване на щамове в комплекс от Ralstonia solanacearum може да се направи чрез:RFLP анализ (Cook et al, 1989)PCR за серийни последователности [REP-, ERIC- & BOX-PCR (Louws et al, 1995; Smith et al, 1995)]4.3 Тест за патогенностТестът служи за потвърждаване на диагнозата и оценка на вирулентността на културите, идентифицирани като Ralstonia solanacearum.Изготвя се ваксина с 106 клетки/ml от културата и щам служещ като положителна контрола. Заразяват се 5—10 доматени растения или патладжани на стадий трети същински лист, за предпочитане, или по-възрастни (раздел ΙΙΙ.6). Инкубира се до две седмици при 22 °С—28 °С и висока относителна влажност с ежедневно напояване. Наблюдава се за изсъхване и/или епинастия, хлороза, спиране на растежа.Изолират се растения със симптоми, както следва:- Отстранява се парче тъкан от стеблото два cm над мястото на заразяване.- Раздробява се и се суспендира в малко количество стерилна дестилирана вода или 50 mM фосфатен буфер. След това се извършват посявки, инкубират се и се проверяват за типични колонии на Ralstonia solanacearum.РАЗДЕЛ IIIОТКРИВАНЕ И ИДЕНТИФИЦИРАНЕ НА RALSTONIA SOLANACEARUM В ПРОБИ ОТ КАРТОФЕНИ КЛУБЕНИЗабележка: Стандартният размер на пробата е 200 клубена. Независимо от това, процедурата може да бъде приложена и за проби с по-малко от 200 клубена.1. Подготовка на пробата за изследванеЗабележка: Полученият при тази процедура гранулиран картофен екстракт може също да бъде използван за откриване на Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.При необходимост, преди теста:i) се инкубира пробата при 25—30 °С до две седмици, за стимулиране намножаването на малобройните популации на Ralstonia solanacearum;ii) измиват се клубените под течаща вода с подходящи дезинфектанти и детергенти и. клубените се изсушават на въздух.1.1 С чист и дезинфекциран скалпел или нож за зеленчуци се отстранява обвивката при края на столона на клубена, така че първо да се видят васкуларните тъкани. Внимателно се изрязва малка конична сърцевина (диаметър 3—5 mm) от васкуларната тъкан при края на столона. Запазва се колкото може по-малко количество непроводяща тъкан. Всеки от клубените се обработва в пробата.Забележка: Визуалният оглед на клубените (раздел II.1) може да се направи на този етап. Отделят се всички клубени със симптоми или напреднало гниене и се изследват отделно (раздел II).1.2 Столоновите краища се събират в затворен съд. За предпочитане е столоновите краища да се обработят незабавно. Ако не е възможно, се схраняват ги за не повече от 24 часа или при 4 °С за не повече от 72 часа.1.3 Столоновите краища се обработват по някоя от следните процедури:i) Столоновите краища се прехвърлят в подходящ съд.Добавя се достатъчно количество мацериращ буфер (допълнение 2), за да се покрият столоновите краища.Раздробяват се столоновите краища в Waring Blender или Ultra Thurrax докато се постигне пълно хомогенизиране. Трябва да се избягва прекомерното хомогенизиране.Мацератът се оставя да кисне 15—30 минути;ii) Столоновите краища се прехвърлят в подходящ съд.Добавя се достатъчно количество мацериращ буфер, за да се покрият столоновите краища.Съдът се поставя в ротативен вибратор.Инкубира се при 50—100 оборота за минута в продължение на 4 часа при 20—22 °С или 16—24 часа при 4 °С;iii) Столоновите се прехвърлят краища в здрава торба за мацериране за еднократна употреба (напр. торба Stomacher, с размери 105 mm × 150 mm, стерилизирана чрез облъчване).Столоновите краища се смачкват внимателно с подходящ инструмент, напр. чук, докато се постигне пълно хомогенизиране.Добавя се достатъчно количество мацериращ буфер, за да се покрият столоновите краища.Мацератът се оставя да престои 15—30 минути.1.4 Бактериите се извличат от обработените столоновите краища чрез някоя от следните процедури:i) Отлива се внимателно мацерата в центрофужна епруветка, оставяйки късчетата в съда или торбата. Ако отлетият мацерат е мътен, се центрофугира при не повече от 180 g за 10 минути при температура под 10 °С.Центрофугира се отлетия мацерат, или супернатанта от първото центрофугиране при 7000 g за 15 минути или 10000 g за 10 минути при температура под 10 °С.Изхвърля се супернатантът, без да повреждате гранулата;ii) Филтрира се мацерата през филтрационна система с размер на порите 40—100 μm. Ускорява се филтрацията с вакуумна помпа.Филтратът се събира в центрофужна епруветка.Филтърът се измива с мацериращ буфер.Филтратът се центрофугира при 7000 g за 15 минути или 10000 g за 10 минути при температура под 10 °С.Изхвърля се супернатантът, без да се поврежда гранулатът.1.5 Суспендира се повторно гранулата в 1 ml буфер за гранули (допълнение 2).Разделя се на две равни части и се прехвърля всяка в малко шишенце.За изследване се използва едно шишенце. Запазва се остатъкът от този екстракт при 4 °С докато трае изследването.Добавят се 10—25 % (обемно/обемен) стерилен глицерол към другото шишенце. Разклаща се кръгообразно и се съхранява при - 18 °С (седмици) или при - 70 °С (месеци).2. Имунофлуоресцентен тест (IF)Използва се антисерум за Ralstonia solanacearum, за предпочитане срещу раса 3/ биовариант 2. Титърът се определя върху суспензия от 106 клетки/ml от хомоложен щам на Ralstonia solanacearum с подходящо разреждане на флуоресцеин-изотиоцианатния (FITC) конюгат, в съответствие с препоръките на производителя. Непречистеният антисерум трябва да има титър поне 1:2000.Използват се многокладенчови предметни стъкла, за предпочитане с 10 прозорчета с диаметър най-малко 6 mm.Контролът от FITC-конюгат се поставя върху всяко предметно стъкло. Тестът трябва да се повтори с включване на контрола от PBS, ако се наблюдават положително реагиращи клетки във FITC контролата.Подготвят се отделни предметни стъкла с положителни контроли от суспензия с 106 клетки/ml от щам на подходяща раса/биовариант на Ralstonia solanacearum. Използва се едно предметно стъкло за всяка серия проби.2.1 Предметните стъкла се подготвят с пробите по някоя от следните процедури:i) за гранули с относително малко скорбяла:Отпипетира се отмерено стандартно количество (15 μl е подходящо за прозорчета с диаметър 6 mm – за по-големи прозорчета се увеличава количеството) от повторно суспендираната гранула върху един ред прозорчета. Другият ред може да бъде използван за повтаряне на същата или за втора проба, както е представено на фиг. 1;ii) за други гранули:Приготвят се десетократни разреждания, т.е. 1/10, 1/100 и 1/1000 от повторно суспендираната гранула в буфер за гранули. Отпипетира се отмерено стандартно количество (15 μl е подходящо за прозорчета с диаметър 6 mm — за по-големи прозорчета увеличете количеството) от повторно суспендираната гранули и всяко разреждане върху един ред прозорчета. Другият ред може да бъде използван за повтаряне на същата или за втора проба, както е представено на фиг. 2.2.2 Капчиците се оставят да изсъхнат. Бактериалните клетки се фиксират към предметното стъкло чрез загряване, на пламък или с 95 % етанол.2.3 IF процедураi) в съответствие с начина на подготовка на предметните стъкла с пробите в 2.1, i)Изготвя се серия двукратни разреждания на антисерума в IF буфер (допълнение 3):¼ от титъра (Т/4), ½ от титъра (Т/2), титъра (Т) и два пъти титъра (2Т).ii) В съответствие с начина на подготовка на предметните стъкла с пробите в 2.1, ii):Изготвя се работния разтвор (WD) на антисерума в IF буфер. Работният разтвор представлява разреждане на антисерума с оптимална специфичност, като обикновено е половината от титъра.Фигура 1Подготовка на предметното стъкло с пробите в съответствие с точки 2.1, i) и 2.3, i)Едно стандартно разреждане на повторно суспендираната гранулаТ = титър| FITC | Т/4 | Т/2 | Т | 2Т | ⇒ Двойни разтвори на антисерум |Проба 1 | • 1 | • 2 | • 3 | • 4 | • 5 | |Копие на проба 1 или проба 2 | • 6 | • 7 | • 8 | • 9 | • 10 | |Фигура 2Подготовка на предметното стъкло с пробите в съответствие с точки 2.1, ii) и 2.3, ii)| FITC | Стандартно разреждaне на антисерум |Чистo | Чистo | 1/10 | 1/100 | 1/1000 | => Десетично разреждaне на повторно суспендираната гранула |Проба 1 | • 1 | • 2 | • 3 | • 4 | • 5 | |Копие на проба 1 или проба 2 | • 6 | • 7 | • 8 | • 9 | • 10 | |2.3.1 Предметните стъкла се подреждат върху влажна книжна салфетка.Прозорчетата с пробите с разреждането (разрежданията) на антисерума се покриват. PBS върху прозорчетата се поставя FITC. Количеството на прибавения върху прозорчетата антисерум трябва да бъде еднакво с количеството на поставения екстракт.2.3.2 Инкубира се под похлупак за 30 минути при стайна температура.2.3.3 Изтръскват се капчиците антисерум от предметното стъкло и се изплакват внимателно в IF буфер. Промива се в IF-Твин-буфер за 5 минути и след това в IF буфер за 5 минути (допълнение 3). Внимателно се отстранява излишната влага.2.3.4 Предметните стъкла се подреждат върху влажна филтърна хартия. Прозорчетата с пробите се покриват и прозорчето FITC с разтвора от FITC-конюгата, използван за определяне на титъра. Количеството на прибавения върху прозорчетата конюгат трябва да бъде еднакво с количеството на поставения антисерум.2.3.5 Инкубира се под похлупак за 30 минути при стайна температура.2.3.6 Изтръскват се капчиците конюгат от предметното стъкло. Изплакват се и се промиват както преди (2.3.3). Внимателно се отстранява излишната влага.2.3.7 Отпипетират се 5—10 μl 0,1 М глицерол във фосфатен буфер (допълнение 3) или подобен обемозаместител върху всяко прозорче и поставете покривно стъкло.2.4 Отчитане на IF тестПредметните стъкла с пробите се разглеждат под епифлуоресцентен микроскоп с филтри подходящи за възбуждане на FITC под маслена имерсия и увеличение 500—1000. Прозорчетата се преглеждат на кръст през два диаметъра, сключващи прав ъгъл и по периферията.Проверява се първо предметното стъкло с положителната контрола. Клетките трябва да бъдат ярко флуоресцентни и напълно оцветени. Забележка: Тестът трябва да се повтори, ако оцветяването е нетипично.Пробите се отчитат върху предметните стъкла. Наблюдава се първо за отсъствие на флуоресциращи клетки в прозорчетата с FITC-контролата. Флуоресциращи клетки в прозорчетата с FITC-контролата означават неспецифично свързване на конюгата, автофлуоресценция или замърсяване. Забележка: Ако това се наблюдава, тестът се повтаря.Наблюдава се за ярко флуоресциращи клетки с характерна за Ralstonia solanacearum морфология в прозорчетата с пробите. Интензивността на флуоресценцията трябва да е еднаква с тази на щама, който служи за положителна контрола, при същото разреждане на антисерума. Клетките с непълно оцветяване или слаба флуоресценция не трябва да се вземат под внимание, освен ако няма много такива клетки (виж тълкуване на резултатите от IF тест).Тълкуване на резултатите от IF тест:i) Ако не се открият клетки с ярка флуоресценция и характерна морфология, то IF тест е отрицателен;ii) Ако се открият клетки с ярка флуоресценция и характерна морфология, се определя средния брой клетки за зрително поле и се изчислява броя клетки (N) за ml от повторно суспендираната гранула (допълнение 4).Популация от приблизително 103 клетки/ml от повторно суспендираната гранула се счита за границата за откриване при IF тест,- за проби с N > 103 клетки/ml от повторно суспендираната гранула IF тест се счита за положителен,- за проби с N < 103 клетки/ml от повторно суспендираната топчица IF тест може да се счита за положителен.iii) Ако се наблюдават голям брой (> 103 клетки/ml) непълно или слабо флуоресциращи клетки при титъра на антисерума, трябва да се извърши втори тест;- или тест на базата на различен биологичен принцип, или- повторен IF тест, с втори антисерум или с десетократно разреждане на топчицата.3. ELISA тестПо Robinson-Smith et al, 1995Използва се антисерум за Ralstonia solanacearum, за предпочитане срещу раса 3/ биовариант 2. Титърът се определя върху суспензия от 106 клетки/ml от хомоложен щам на Ralstonia solanacearum.Препоръчва се използването на микротитърни плаки NUNC-Polysorb.Включва се отрицателна контрола от картофен екстракт и контрола от физиологичен разтвор с фосфатен буфер (PBS).Използва се суспензия с > 106 клетки/ml от щам на подходяща раса/биовариант на Ralstonia solanacearum като положителната контрола. Тества се по същия начин както пробата/ите, но добре отделени от пробите върху микротитърната плака.3.1 Отпипетират се 100—200 μl от повторно суспендираната гранула в малко шишенце.Загрява се 4 минути на 100 °С. Шишенцето се премества върху лед.3.2 Добавя се същото количество покриващ карбонатен буфер с двойна сила (допълнение 5) и се разклаща кръгообразно.3.3 Поставят по 100 μl във всяко от най-малко две кладенчета в микротитърната плака. Инкубира се 1 час при 37 °С или една нощ при 4 °С.3.4 С лек удар се отделят екстрактите от кладенчетата. Кладенчетата се промиват три пъти с PBS-Твин (допълнение 5), като се задържа последният промиващ разтвор в кладенчетата най-малко пет минути.3.5 Изготвят се съответните разреждания на антисерума срещу Ralstonia solanacearum в блокиращ буфер (допълнение 5). В кладенчетата се поставят 100 μl от разтвора на антисерума.Инкубира се един час при 37 °С.3.6 С лек удар се отделя антисерумът от кладенчетата. Кладенчетата се промиват както е указано по-горе (3.4).3.7 Изготвят се съответните разреждания на алкално-фосфатазния конюгат в блокиращ буфер (допълнение 5) и в кладенчетата се поставят 100 μl от разтвора на конюгата.Инкубира се един час при 37 °С.3.8 С лек удар се отделя конюгатът от кладенчетатът. Кладенчетата се промиват, както е указано по-горе (3.4 и 3.6).3.9 Изготвя се разтворът на алкално-фосфатазния субстрат (допълнение 5). В кладенчетата се поставят 100 μl. Инкубира се 30 минути до един час на тъмно при стайна температура.3.10 Отчета се абсорбцията при 409 nm.Тълкуване на ELISA теста:ELISA тестът е отрицателен, ако оптичната плътност (OD) на пробата е < 2×OD на отрицателната контрола.ELISA тестът е положителен, ако оптичната плътност (OD) на пробата е > 2×OD на отрицателната контрола.4. PCR тестПо Seal et al., 1993Забележка: По време на всички етапи от подготовката на пробите и други манипулации включващи PCR, трябва да се използват връхчета за пипети с филтри.Изготвя се суспензия с 106 клетки/ml от щам на Ralstonia solanacearum раса 3/биовариант 2 като положителната контрола. Тества се по същия начин, както пробата/ите.4.1 Отпипетират се 100 μl от повторно суспендираната гранула в малко шишенце или се прехвърлят 90 μl от повторно суспендираната гранула в малко шишенце, съдържащо 10 μl 0,5М NaOH. Разбърква се, като шишенцето се обръща многократно.4.2 Загрява се 4 минути при 100 °С. Шишенцето се премества незабавно върху лед.4.3 Изготвя се най-малко две десетократни разреждания, напр. 1/10 и 1/100 или повече, ако е необходимо, в стерилна дестилирана или свръхчиста вода (UPW).4.4 Изготвя се сместа за реакцията PCR (допълнение 6) в стерилно шишенце, като се прибавят следните компоненти в следния ред:За 50 μl обем на реакцията:Компонент | Количество | Крайна концентрация |стерилна дестилирана вода или UPW | 30,8 μl—33,8 μl |10 х PCR буфер | 5,0 μl | 1х |d-АТФ | 1,0 μl | 0,2 mM |d-ЦТФ | 1,0 μl | 0,2 mM |d-ГТФ | 1,0 μl | 0,2 mM |d-ТТФ | 1,0 μl | 0,2 mM |OLI-1 праймер (20 μМ) | 2,5 μl | 1 μΜ |Y-2 праймер (20 μМ) | 2,5 μl | 1 μΜ |Таг-полимераза (5 U/μl) | 0,2 μl | 1,0 U |Общ обем | 45 μl—48 μl | |За повече реакции:Изчислява се количеството на всеки компонент за необходимия брой реакции.Компонентите се смесват и се прехвърлят 45 μl—48 μl от сместа в стерилни шишенца за PCR.Шишенцата със сместа се съхраняват за PCR реакцията върху лед.За 25 μl обем на реакцията:Компонентите се намаляват пропорционално.4.5 PCR увеличаване4.5.1 По желание: Шишенцата със сварената проба и положителната контрола се центрофугират.В указания ред, се прибавят 2—5 μl от пробата/ите, водна контрола и положителна контрола към шишенцата със сместа за PCR реакцията. Шишенцата се поставят в загряващия блок на ДНК-термосайклера.4.5.2 Стартира се следната програма:1 цикъл от:i) 2 минути при 96 °С : денатурация на структурата;50 цикъла от:ii) 20 секунди при 94 °С : денатурация;iii) 20 секунди при 68 °С : свързване на праймерите;iv) 30 секунди при 72 °С : удължаване на копието;1 цикъл от:v) 10 минути при 72 °С : последващо удължаване;1 цикъл от:vi) задържане при 4 °С.Забележка: Тези параметри са за Perkin Elmer 9600. Други термосайклери може да изискват слой от минерално масло в шишенцата за PCR реакцията и/или промяна в продължителността на стъпки ii), iii) и iv) и профилът за увеличаване.4.5.3 Шишенцата се отстраняват от термосайклера. Анализира се PCR продуктът. Ако не се извърши незабавно, шишенцата се съхраняват при 4 °С, за употреба в същия ден или при – 18 °С за по-дълъг период.4.6 Анализ на PCR продуктаPCR фрагментите се откриват чрез електрофореза в агарозен гел и оцветяване с етидиев бромид.4.6.1 Подготвя се подходящ агарозен гел, като внимателно се загрява агарозата до завиране в трис-ацетат-електрофорезов (TAE) буфер.4.6.2 Разтопената агароза се охлажда до 50—60 °С и се излива във формата на уреда за електрофореза и пъхнете гребена. Разтворът се оставя да се втвърди.4.6.3 Отстранява се гребена. Гелът се потапя в трис-ацетат-електрофорезовия буфер, така че да се покрие (2—3 mm) с буфера.4.6.4 Поставят се капчици по 3 μl от зареден буфер върху парафилм. Добавят се по 12 μl PCR продукт от пробите, от положителната или водната контрола и смесете чрез леко всмукване във върха на пипетата преди да заредите. Дадените обеми могат да бъдат променяни, в зависимост от вместимостта на кладенчетата в агарозния гел.4.6.5 Зареждат се кладенчетата на гела. Като еталон се включва подходящ ДНК маркер в поне едно от кладенчетата.4.6.6 Проводниците на електрическото захранване се свързват с уреда за електрофореза. Герът се стартира при 5—8 V/cm докато предната част на индикатора за проследяване достигне на 1 cm от края на гела.4.6.7 Изключва се електрическото захранване и се разкачват проводниците от уреда за електрофореза.Внимателно се отстранява гелът И се потапя в разтвор на етидиев бромид за 30—45 минути.Забележка: Използват се ръкавици за еднократна употреба по време на работа с етидиев бромид, който е мощен мутаген!4.6.8 Просветлява се в дестилирана вода за 10—15 минути.4.6.9 Увеличените ДНК фрагмент/и се наблюдават при УВ осветление. PCR продуктът на Ralstonia solanacearum с комплект праймери OLI-1 и Y-2 е с дължина 288 bp. Сравнява се с ДНК маркера и с положителната контрола.Забележка: Водната контрола трябва да е отрицателна при всички случаи. Ако е положителна, повторете теста.4.6.10 Фотографира се гелът, ако се изисква постоянен регистър.4.6.11 Достоверността на увеличените фрагменти се потвърждава чрез рестриктазно-ензимен анализ (REA).4.7 Рестриктазно-ензимен анализ (REA)4.7.1 Прехвърля се 8,5 μl от PCR продукта (4.5.3) в ново шишенце. Добавя се 1 μl от 10х ензимен буфер и 0,5 μl от рестриктазния ензим Ava II.4.7.2 Смесва се чрез леко всмукване във върха на пипетата. Ако останат капки върху стените на шишенцето се обработва в микроцентрофуга. Инкубира се един час при 37 °С.4.7.3 Разградените PCR фрагменти се анализират чрез електрофореза в агарозен гел както преди (4.6).Тълкуване на резултатите от PCR теста:PCR тестът е отрицателен, ако не се открие характерния 288 bp фрагмент, а фрагментът е открит в положителната контрола от щам на Ralstonia solanacearum.PCR тестът е положителен, ако се открие 288 bp фрагмент и рестриктазно-ензимният анализ на увеличения фрагмент е идентичен с положителната контрола от щам на Ralstonia solanacearum.5. Тест в селективни блюдаПо Elphinstone et al., 19965.1 Тестът се провежда чрез подходящата техника за посявка от разреждания, напр.:i) Приготвят се най.малко две десетократни разреждания, т.е. 1/10, 1/100 или повече, ако сметнете за необходимо, от повторно суспендираната гранула в буфер за гранули. Отпипетира се отмерено стандартно количество (50—100 μl) от повторно суспендираната гранула и от всяко разреждане върху модифицирана селективна среда SMSA (допълнение 7) и се разстила със стъклена пръчица върху цялата повърхност на средата.Ако е необходимо, същота се извършва с разтвора на повторно суспендираната гранула резки с 10 μl ухо. Обгаря се ухото между резките;ii) Отмерено стандартно количество (50—100 μl) от повторно суспендираната топчица се прехвърля върху модифицирана селективна среда SMSA и се разстила със стъклена пръчица върху цялата повърхност на средата. Правят се резки с пръчицата, без да се обгарят, върху поне две други модифицирани SMSA среди.5.2 По същата техника за посявка от разреждания се нанася суспензия от 106 клетки/ml от вирулентен щам раса 3/биовариант 2 на Ralstonia solanacearum като положителна контрола върху серия от отделни модифицирани SMSA среди.5.3 Посявките се инкубират при 28 °С. Посявките се отчитат след три дни. Ако са отрицателни се инкубират допълнително до шест дни. Колониите на вирулентните изолати от Ralstonia solanacearum са млечно-бели, плоски, неправилни и разлети с кървавочервено оцветяване в центъра и показващи резки или извивки във вътрешността.5.4 Колониите с характерна морфология се пречистват чрез рекултивиране върху обикновени хранителни среди. (допълнение 1).5.5 Идентифицират се чисти култури (раздел II.4.1) и се доказват култури на Ralstonia solanacearum чрез тест за патогенност (раздел II.4.3).Тълкуване на резултатите от теста в селективни блюда:Тестът в селективни блюда е отрицателен, ако след шест дни не се изолират никакви бактериални колонии или не се изолират никакви колонии, характерни за Ralstonia solanacearum, при условие че не се очаква инхибиране от колонии на други бактерии и колониите характерни за Ralstonia solanacearum се откриват в положителните контроли.Тестът в селективни блюда е положителен, ако се изолират колонии, характерни за Ralstonia solanacearum.6. Биологичен тестПо Janse, 1988.6.1 Използват се 10 опитни растения от възприемчиви стръкчета домат или патладжан на стадий трети същински лист за всяка проба. Опитните растения не се поливат 24 часа преди заразяването.6.2 Разпределят се 100 μl от повторно суспендираната топчица между опитните растения. Стеблата между котиледоните се заразяват и на едно или повече други места.6.3 Заразяват се по същия начин 10 стръкчета със суспензия от 106 клетки/ml от вирулентен щам биовариант 2/раса 3 на Ralstonia solanacearum като положителна контрола и с буфер за гранули като отрицателна контрола. Растенията на положителната контрола се отделят от останалите растения за да се избегне кръстосаното замърсяване.6.4 Опитните растения се отглеждат до четвъртата седмица при 22 °С—28 °С и висока относителна влажност с ежедневно поливане. Наблюдава се за изсъхване, епинастия, хлороза, и/или спиране на растежа.6.5 Изолират се от заразените растения (раздел II). Идентифицират се чисти култури с характерна морфология (раздел II.4.1) и се потвърждават култури на Ralstonia solanacearum чрез тест за патогенност (раздел II.4.3).6.6 Ако е необходимо се проверява за липса на инфекция в групи от опитни растения, които не показват никакви признаци на инфекция. Отстраняват се от всяко опитно растение участък от стеблото с големина 1 cm от два сантиметра над мястото на заразяване. тъканите се хомогенизират в мацериращ буфер. Изготвят се посявки от разреждания (раздел III.5.1) Ако са положителни, се идентифицират чисти култури с характерна морфология (раздел II.4.1) и се потвърждават култури на Ralstonia solanacearum чрез тест за патогенност (раздел II.4.3).Тълкуване на резултатите от биологичния тест:Биологичният тест е отрицателен, ако опитните растения не са инфектирани с Ralstonia solanacearum и при условие че Ralstonia solanacearum е открита в положителните контроли.Биологичният тест е положителен, ако опитните растения са инфектирани с Ralstonia solanacearum.7. Обогатителен тестПо Elphinstone et al., 19967.1 Прехвърлят се 100 μl от повторно суспендираната гранула в 3 ml от модифициран бульон SMSA (допълнение 7)7.2 Инкубират се 48 часа и в никакъв случай повече от 72 часа при 28 °С с разхлабена тапа на епруветката за проветряване.7.3 Тапата се затяга и съдът се разклаща кръгообразно. Разделя се по равно за IF тест (този раздел, точка 2), ELISA тест (този раздел, точка 3) и/или PCR тест (този раздел, точка 4).8. Тест за патогенностОтнесете се към раздел II. 4.3.19980720Допълнение 1Хранителни среди за изолиране и култивиране на Ralstonia solanacearumХранителен агар (NA)Хранителен агар (Difco) | 23 g |Дестилирана вода | 1 литър |Приготвя по ½ литър от средата в еднолитрови колби.Съставките се разтварят.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Охлажда се до 50 °С и се разлива в блюда.Дрождено-пептонно-глюкозен агар (YPGA)Дрождев екстракт (Difco) | 5 g |Бакто пептон (Difco) | 5 g |D(+) глюкоза (монохидрат) | 10 g |Бакто агар (Difco) | 15 g |Дестилирана вода | 1 литър |Приготвя се по ½ литър от средата в еднолитрови колби.Съставките се разтварят.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Охлажда се до 50 °С и се разлива в блюда.Захарно-пептонен агар (SPA)Захар | 20 g |Пептон | 5 g |K2HPO4 | 0,5 g |MgSO4.7H2O | 0,25 g |Бакто агар (Difco) | 15 g |Дестилирана вода | 1 литър |Приготвя се по ½ литър от средата в еднолитрови колби.Съставките се разтварят. Коригиране до рН 7,2-7,4, ако е необходимо.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Охлажда се до 50 °С и се разлива в блюда.Тетразолна среда на КелманКазамино киселини (Difco) | 1 g |Бакто пептон (Difco) | 10 g |Декстроза | 5 g |Бакто агар (Difco) | 15 g |Дестилирана вода | 1 литър |Приготвя се по ½ литър от средата в еднолитрови колби.Съставките се разтварят. Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Охлажда се до 50 С.Добавя се воден разтвор на трифенил тетразолиев хлорид (Sigma) стерилизиран чрез филтриране, за да получите крайна концентрация 50 mg/l.Разлива се в блюда.19980720Допълнение 2Материали за подготовка на пробитеМацериращ буфер: 50 mM фосфатен буфер, pH 7,0Този буфер се използва за размекване на тъканите.Na2HPO4 | 4,26 g |KH2PO4 | 2,72 g |Дестилирана вода | 1 литър |Съставките се разтварят и си проверява pH. Разделя се на равни части, както е уместно.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Когато се извършва директен PCR тест, се препоръчва добавянето на 5 % поливинилпиролидон-40000 MWT (PVP-40), за да се намалят случаите на инхибиране на увеличаването от ароматни молекули в екстракта.Добавянето на противоутаечно средство, противопенест агент или антиоксидант се препоръчва, когато се използва процедура за хомогенизация Waring Blender или Ultra Turrax за размекване на сърцевини от картофена тъкан.Люспи луброл | 0,5 g/l |DC силиконов противопенест агент | 1,0 ml/l |Тетранатриев пирофосфат | 1,0 g/l |Автоклавира се поотделно и се добавя до желаната концентрация.Буфер за гранули: 10 mM фосфатен буфер, pH 7,2Този буфер се използва за повторно суспендиране и разреждане на картофени столони и гранули.Na2HPO4·12 H2O | 2,7 g |NaH2PO4· 2 H2O | 0,4 g |Дестилирана вода | 1 литър |Съставките се разтварят и се проверява pH. Разделя се на равни части, както е уместно.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.19980720Допълнение 3Материали за IF тестаIF буфер: 10 mM физиологичен разтвор с фосфатен буфер (PBS), pH 7,2Този буфер се използва за разреждане на антисерумите.Na2HPO4·12 H2O | 2,7 g |NaH2PO4· 2 H2O | 0,4 g |NaCl | 8,0 g |Дестилирана вода | 1 литър |Съставките се разтварят и се проверява pH. Разделя се на равни части, както е уместно.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.IF-Твин-буферТози буфер се използва за промиване на предметните стъкла. Добавете 0,1 % твин-20 към IF буфера.0,1 М глицерол с фосфатен буфер pH 7,6Този буфер се използва като обемозаместителна течност върху прозорчетата на IF предметно стъкло, за да се усили флуоресценцията.Na2HPO4·12 H2O | 3,2 g |NaH2PO4· 2 H2O | 0,15 g |Глицерол | 50 ml |Дестилирана вода | 100 ml |19980720Допълнение 4Определяне степента на замърсяване в IF тестПовърхност (S) на прозорчето при многоместното предметно стъкло = πD24където D = диаметъра на прозорчето | (1) |Повърхност (s) на зрителното поле = πd24където d = диаметъра на полето | (2) |Изчислява се d или чрез директно измерване или чрез следната формула: s = πi2G2K2 × 4където iкоефициент на полето (зависи от типа на окуляра и варира от 8 до 24),Kкоефициент на тубуса (1 или 1,25),Gувеличение от 100х, 40х и т.н. на обектива. | (3) |от (2) d =24sπ | (4) |от (3) d =24 × πi2G2K2 × 4π = iGKПреброяват се типично флуоресциращи клетки в поле (c). Изчислява се броят типично флуоресциращи клетки за прозорче (C). C = c SsИзчислява се броя типично флуоресциращи клетки в ml за гранулата (N) N = C × 1 000y × Fкъдето yобема на гранулата в прозорче,Fфактор за разреждане на гранулата. | |19980720Допълнение 5Материали за ELISA тестаПокриващ карбонатен буфер с двойна сила, pH 9,6Na2CO3 | 6,36 g |NaHCO3 | 11,72 g |Дестилирана вода | 1 литър |Съставките се разтварят и се проверява pH. Разделя се на равни части, както е уместно.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Ако екстрактът съдържа висок фактор ароматни молекули, като антиоксидант може да бъде добавен натриев сулфит с крайна концентрация 0,2 %.10 x Физиологичен разтвор с фосфатен буфер (PBS), pH 7,4NaCl | 80 g |KH2PO4 | 2 g |Na2HPO4·12 H2O | 29 g |KCl | 2 g |Дестилирана вода | 1 литър |Съставките се разтварят и се проверява pH. Разделя се на равни части, както е уместно.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Физиологичен разтвор с фосфатен буфер-твин (PBS-Т)10 × PBS | 100 ml |10 % твин-20 | 5 ml |Дестилирана вода | 895 ml |Блокиращ (антителата) буфер (трябва да бъде прясно приготвен)10 × PBS | 10 ml |Поливинилпиролидон-44000 MWT (PVP-44) | 2,0 g |10 % твин-20 | 0,5 g |Мляко на прах | 0,5 g |Дестилирана вода | до 100 ml |Разтвор на алкално-фосфатазния субстрат pH 9,8Диетаноламин | 97 ml |Дестилирана вода | 800 ml |Смесва се и се коригира до pH 9,8 с концентрирана HCl.Долива се до един литър с дестилирана вода.Добавя се 0,2 g MgCl2.Разтварят се по две таблетки от фосфатазния субстрат по 5 mg (Sigma) на 15 ml от разтвора.19980720Допълнение 6Материали за PCR тестаОлигонуклеотидна последователност на праймеритеПраймер OLI-1 | 5′-GGGGGTAGCTTGCTACCTGCC-3′ |Праймер Y-2 | 5′-CCCACTGCTGCCTCCCGTAGGAGT-3′ |За материали виж Seal et al (1993)19980720Допълнение 7Материали за тестовете върху селективни и обогатителни средиСелективна среда SMSA (Engelbrecht, 1994, модифицирана по Elphinstone et al., 1996), но се премахва агарът и тетразолиевите соли.Основна среда | |Аминокиселини (Difco) | 1 g |Бакто пептон (Difco) | 10 g |Глицерол | 5 ml |Агар (Difco) | 15 g |Дестилирана вода | 1 литър |Приготвя се по ½ литър от средата в еднолитрови колби.Съставките се разтварят и се проверява pH. Коригира се pH, ако е необходимо, до 6,5 преди да автоклавиране. Ralstonia solanacearum не дава добър растеж върху среда с pH > 7,0.Стерилизира се чрез автоклавиране при 121 °С за 15 min.Охлажда се до 50 °С.Добавят се следните съставки (всички от Sigma), за получаване определените крайни концентрации:Кристал виолет | 5 mg/l | | |Полимиксинов B сулфат | 100 mg/l | (приблизително 600000 единици) | Sigma P-1004 |Бацитрацин [1] | 25 mg/l | (приблизително 1250 единици) | Sigma B-0125 |Хлорамфеникол | 5 mg/l | | Sigma C-3175 |Пеницилин-G | 0,5 mg/l | (приблизително 825 единици) | Sigma P-3032 |Тетразолиеви соли | 50 mg/l | | |Съставките се разтварят в 70 % етанол до дадените концентрации за обема на приготвената среда. Някои съставки, напр. полимиксин В и хлорамфеникол изискват леко затопляне и разклащане.Хранителна среда SMSA (Elphinstone et al., 1996)Приготвя се както селективната среда SMSA, но се премахвя агарът.Разпределят се наравни количества от по 3 ml в 30 ml универсални епруветки за еднократна употреба.19980720ЛитератураBuddenhagen, I.W.; Sequeira, L. and Kelman, A., 1962, Description of races in Pseudomonas solanacearum. Phytopathology 52, 726.Cook, D.; Elizabeth, B. and Sequeira, L., 1989. Genetic diversity of Pseudomonas solanacearum: detection of restriction fragment length polymorphism with DNA probes that specify virulence and hypersensitive respons. Molecular Plant-Microbe Interactions 2, 113—121.Dinesen, I.G. and DeBoer, S.H., 1995. Extraction of Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus from composite samples of potato tubers. American Potato Journal 72, 133—142.Elphinstone, J.G.; Hennessy, J.; Wilson, J. and Stead, D.E., 1996. Sensitivity of different methods for the detection of Pseudomonas solanacearum (Smith)Smith in potato tuber extracts. EPPO Bulletin 26.Engelbrecht, M.C., 1994. Modification of a semi-selective medium for the isolation and quantification of Pseudomonas solanacearum. ACIAR Bacterial Wilt Newsletter 10, 3—5.Hayward, A.C., 1964. Characteristics of Pseudomonas solanacearum. Journal of Applied Bacteriology 27, 265—277.Hayward, A.C., 1994. Systematic and phylogeny of Pseudomonas solanacearum and related bacteria. In: Bacterial Wilt: the disease and its causative agent, Pseudomonas solanacearum (eds. A.C. Hayward and G.L. Hartman) CAB International Oxford, 127—135.Janse, J.D., 1988. A detection method for Pseudomonas solanacearum in symptomless potato tubers and some data on its sensitivity and specificity. EPPO Bulletin 18, 343—351.Janse, J.D., 1991. Infra- and intraspecific classification of Pseudomonas solanacearum strains using whole cell fatty acid analysis. Systematic and Applied Microbiology 14, 335—345.Kelman, A., 1954. The relationship of pathogenicity in Pseudomonas solanacearum to colony appearance on a tetrazolium medium. Phytopathology 64, 293—695.Lelliot, R.A. and Stead, D.E., 1987. Methods for the diagnosis of bacterial diseases of plants. (T.F. Preece ed.) Blackwell Scientific Publications, Oxford. 216 pp.Louws, F.J.; Fulbright, D.W.; Stephens, C.T. and De Bruijn, F.J., 1995. Differentiation of genomic structure by rep-PCR fingerprinting to rapidly classify Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. Phytopathology 85, 528—536.Lozano, J.C. and Sequeira, L., 1970. Differentiation of races of Pseudomonas solanacearum by a leaf infiltration technique. Phytopathology 60, 838.Mirza, M.S.; Rademaker, J.W.L.; Janse, J.D. and Akkermans, A.D.L., 1993. Specific 16S ribosomal RNA targeted oligonucleotide probe against Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus. Canadian Journal of Microbiology 39, 1029—1034.Robinson-Smith, A.; Jones, P.; Elphinstone, J.G. and Forde, S.M.D., 1995. Production of antibodies to Pseudomonas solanacearum, the causative agent of bacterial wilt. Food and Agricultural Immunology 7, 67—79.Seal, S.E.; Jackson, L.A.; Young, J.P.W. and Daniels, M.J., 1993. Differentiation of Pseudomonas solanacearum, P. syzygii, P. picketti and the blood disease bacterium by partial 16S rRNA sequencing: construction of oligonucleotide primers for sensitive detection by polymerase chain reaction. Journal of General Microbiology 139, 1587—1594.Smith, J.J.; Offord, L.C.; Holderness, M. and Saddler, G.S., 1995. Genetic diversity of Burkholderia solanacearum (synonym Pseudomonas solanacearum) race 3 in Kenya. Applied and Environmental Microbiology 61, 4262—4268.Stead, D.E., 1992a. Techniques for detecting and identifying plant pathogenic bacteria. In: Techniques for rapid detection of plant pathogens (eds. J.M. Duncan and L. Torrance). Blackwell Scientific Publications, Oxford, 76—111.Stead, D.E., 1992b. Grouping of plant pathogenic and some other Pseudomonas spp. using cellular fatty acid profiles. International Journal of Systematic Bacteriology 42, 281—295.Van Beuningen, A.; Derks, H. and Janse, J.D., 1995. Detection and identification of Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus with special attention to fluorescent in-situ hybridisation (FISH) using a 16S rRNA targeted oligonucleotide probe. Züchtungsforschung 2, 266—269.[*] Раса 4 (патогенна за джинджифил и няколко други гостоприемника) и раса 5 (патогенна само за черница) не са включени.[*] Ако е необходимо, увеличаването на концентрацията на бацитрацина до 300 ppm може да намали замърсяването със сапрофитни бактерии без да се намали възстановяването на Ralstonia solanacearum.--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ III1. При всяка подозирана поява, за която е идентифициран положителен резултат в скрининговия тест/ове, съгласно посочения в приложение II съответен метод за изброения растителен материал, или съгласно който и да е официално одобрен метод, при всички останали случаи, като се очаква потвърждение или отхвърляне при завършване на посочения метод, трябва да има задържане и подходящо консервиране на:- където е възможно, партидата, или част от нея, от която е взета пробата в оригиналната ѝ опаковка с етикет,- където е възможно, останалата част от пробите,- всеки останал екстракт и допълнително приготвен материал за скрининговия тест(-ове), напр предметни стъкла за имунофлуоресценция, и- цялата съответстваща документация,до завършване на посочения метод.2. В случай на потвърждаване наличието на организма, трябва да има задържане и подходящо консервиране на:- материала, определен в параграф 1, и- проба от инфектирания доматен или патладжанов материал, заразен с екстракта от клубен или растение, по целесъобразност, и- изолираната култура от организма,най-малко до един месец след процедурата по уведомяване съгласно член 5, параграф 2.--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ IVЕлементите от разследването, посочено в член 5, параграф 1, буква а), i) включват, по целесъобразност:i) места на производство,- където се отглеждат или са се отглеждали картофи, имащи клонингова връзка с картофи, за които е установено, че са заразени с организма,- където се отглеждат или са се отглеждали домати, които са от същия източник като доматите, за които е установено, че са заразени с организма,- където се отглеждат или са се отглеждали картофи или домати, които са били поставени под официален контрол, поради подозирана поява на организма,- където се отглеждат или са се отглеждали картофи, които имат клонингова връзка с картофи, отглеждани в места на производство, за които е установено, че са заразени от организма,- където се отглеждат картофи или домати, и които са разположени в съседство със заразени места на производство, включително такива места на производство, които използват едни и същи производствени съоръжения и оборудване, пряко или чрез общ контрактор,- където се използват повърхностни води за напояване или пръскане от всеки източник, за който е потвърдено или се подозира, че е заразен с организма,- където се използват повърхностни води за напояване или пръскане от източник, който се използва съвместно с места на производство, за които е потвърдено или се подозира, че са заразени с организма,- които са наводнени или са били наводнявани с повърхностни води, за които е потвърдено или се подозира, че са заразени с организма; иii) повърхностни води, които се използват за напояване или пръскане или които са наводнили полето(-ата) или мястото/местата на производство, за които е потвърдено, че са заразени с организма.--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ V1. Елементите при определяне на степента на вероятно замърсяване съгласно член 5, параграф 1, буква а), iii) и член 5, параграф 1, буква в), iii), включват, по целесъобразност:- изброения растителен материал, който се отглежда на място на производство, обявено като замърсено съгласно член 5, параграф 1, точка буква а), ii),- място/места на производство, имащо(и) производствена връзка с изброения растителен материал, обозначен като замърсен съгласно член 5, параграф 1, буква а), ii), включително тези, които използват едни и същи производствени съоръжения и оборудване, пряко или чрез общ контрактор,- изброения растителен материал, който е произведен на мястото(ата) на производство, посочено в предходния абзац, или който присъства на такова място на производство през периода, когато изброения растителен материал, обозначен като замърсен по член 5, параграф 1, буква а), ii) се е намирал на мястото на производство, посочено в първо тире,- складове, където се обработва изброения растителен материал от по-горе посочените места на производство,- всяка машина, превозно средство, съд, склад или участъци от тях, и всички други предмети, включително опаковъчен материал, които може да са били в контакт с изброения растителен материал, обозначен като замърсен по член 5, параграф 1, буква а), ii),- всеки от изброения растителен материал, който се съхранява във, или в контакт с някоя от структурите или предметите, изброени в предходния абзац, преди почистването и дезинфекцирането на тези структури и предмети,- като резултат от разследването и изследването съгласно член 5, параграф 1, буква а), i), при картофите, тези клубени или растения със сестринска или родителска клонингова връзка със, а при доматите, тези растения със същия източник като изброения растителен материал, обозначен като замърсен по член 5, параграф 1), буква а), ii), и за които съществува вероятност от замърсяване по клонингова връзка, въпреки че може да са дали отрицателна проба за организма,- място на производство на изброения растителен материал, посочени в предходното тире,- място на производство на изброения растителен материал, които използват за напояване или пръскане вода, обозначена като замърсена съгласно член 5, параграф 1, буква в), ii),- изброения растителен материал, който е произведен на полета, наводнени с повърхностни води, за които е потвърдено, че са заразени с организма.2. Определянето на възможното разпространение съгласно член 5, параграф 1, буква а), iv), и член 5, параграф 1, буква в), iii), включва:i) в случаите по член 5, параграф 1, буква а), iv), вземане под внимание на следните елементи:- близостта с други места на производство, където се отглежда изброения растителен материал,- общото производство и използване на сортове картофи за семе,- места на производство, където се използват повърхностни води за напояване или пръскане на изброения растителен материал, в случаи в които има или е имало риск от оттичане на повърхностни води от, или наводняване на, място на производство, обозначени като замърсени по член 5, параграф 1, буква а), ii);ii) в случаи, когато повърхностни води са били обозначени като замърсени по член 5, параграф 1), буква в), ii):- място на производство, където се произвежда изброения растителен материал, в близост до, или изложени на риск от наводняване с повърхностни води, обозначени като замърсени,- всеки обособен напоителен басейн, който има връзка с повърхностните води, обозначени като замърсени.3. Подробностите на уведомяването, посочено в алинея първа от член 5, параграф 2, включват:- датата на докладване за подозираната поява съгласно член 4 и датите на вземане на проби и потвърждаване наличието на организма по член 5, по целесъобразност,- описание на елементите на обявеното замърсяване и разграничаването на зоната.4. Подробностите на допълнителното уведомяване, посочено в алинея втора от член 5, параграф 2, включва:- за всяка обозначена като замърсена пратка или партида от картофи, сертификатите, определени в членове 7 и 8 от Директива 77/93/ЕИО, паспортните или регистрационните номера на производителите на картофите, сборните складове и центрове за експедиране, по целесъобразност,- за всяка обозначена като замърсена пратка или партида от доматени растения, сертификатите, определени в членове 7 и 8 от Директива 77/93/ЕИО и паспортния номер, в съответствие с изброеното в приложение V, част А, раздел I.2.2 към Директива 77/93/ЕИО,- видът и категорията на сортовете картофи за семе, и при възможност, във всички останали случаи,- такава друга информация във връзка с потвърденото огнище, каквато Комисията може да изиска.--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ VI1. Във връзка с член 6, параграф 1, мерките са:- изгаряне, или- оползотворяване като храна за животни след термична обработка, така че да няма риск от оцеляване на организма, или- дълбоко загробване, на място за отпадъци, където няма риск от стичане към селскостопанска земя или контакт с водоизточници, които могат да бъдат използвани за напояване на селскостопанска земя, или- промишлена преработка чрез директна и незабавна доставка до преработваща фабрика с официално одобрени съоръжения за отстраняване на отпадъци, които отговарят на разпоредбите, установени в приложение VII към настоящата директива, или- други мерки, при условие че е доказано, че няма установен риск от разпространение на организма; Комисията и останалите държави-членки следва незабавно да бъдат уведомени за такива мерки.2. Подходящо оползотворяване или депониране на изброения растителен материал, посечен в член 6, параграф 2, под контрола на отговорните официални органи на засегнатите държави-членки, с подходящата връзка между отговорните официални органи, за да се гарантира такъв контрол по всяко време и одобрение от отговорния официален орган на държавата-членка, в която картофите ще се пакетират или обработват във връзка със съоръженията за отстраняване на отпадъци, посочени в първия и втория абзац, е:i) за картофени клубени;- оползотворяване като картофени продукти, предназначени за консумация и пакетирани на места с подходящи съоръжения за отстраняване на отпадъци, готови за директна доставка и употреба без повторно пакетиране и предназначени за такава директна доставка и употреба, или- оползотворяване като картофени продукти, предназначени за промишлена преработка и предназначени за директна и незабавна доставка до преработващата фабрика с подходящи съоръжения за отстраняване на отпадъци, или- друг вид оползотворяване или депониране, при условие че е доказано, че няма установен риск от разпространение на организма и подлежащо на одобрение от посочените отговорни официални органи. Комисията и останалите държави-членки следва незабавно да бъдат уведомени за такива мерки.ii) за други растителни части, включващи парчета от стебла и листа;- унищожаване, или- друг вид оползотворяване или депониране, при условие че е доказано, че няма установен риск от разпространение на организма; Комисията и останалите държави-членки следва незабавно да бъдат уведомени за такива мерки.3. Подходящите методи за обеззаразяване на обектите, посочени в член 6, параграф 3, са почистване и при необходимост дезинфекция, така че да няма установен риск от разпространение на организма, които се извършват под надзора на отговорните официални органи на държавите-членки.4. Поредицата от мерки, които държавите-членки трябва да осъществят в рамките на разграничената/ите зона/и, установени съгласно член 5, параграф 1, буква а), iv) и буква в), iii) и посочени в член 6, параграф 4, включва:4.1 В случаи, когато местата на производство са обозначени като замърсени по член 5, параграф 1, буква а), ii):а) в поле или участък за производство на защитени култури, обозначени като замърсени съгласно член 5, параграф 1, буква а), ii), илиi) в продължение на поне четири години на производство след обявеното замърсяване,- се вземат мерки за отстраняване на самораслите картофени и доматени растения, както и други растения гостоприемници за организма, включително плевели по картофите, и- не се засаждат следните:- картофени клубени или растения,- доматени растения и семена,- вземайки предвид биологията на организма,- други растения-гостоприемници,- растения от вида Brassica, при които има установен риск от оцеляване на организма,- култури, за които има установен риск от разпространяване на организма;- през първия сезон на производство на картофи или домати след периода, определен в предходния абзац, и при условие че в полето не са установени саморасли картофени и доматени растения и други растения-гостоприемници, включително плевели по картофите, за период поне две последователни години на производство преди засаждането,- при картофи, засаждат се официално сертифицирани картофи за семе, единствено за стокова продукция, и- се провежда официално обследване, включващо изследване, съгласно описаното в член 2, параграф 1,- през сезона на производство на картофи или домати, който следва посочения в предходния абзац и като се съблюдава подходящ цикъл на редуване, при картофите се засажда официално сертифицирано картофено семе, или за производство на семе, или за стокова продукция, а при картофи и домати, се извършва официално обследване, съгласно описаното в член 2, параграф 1; илиii) в продължение на петте години на производство, след тази на обявеното замърсяване;- се вземат мерки за отстраняване на самораслите картофени и доматени растения, както и други растения-гостоприемници за организма, включително плевели по картофите, и- през първите три години полето се установява и поддържа или незасято, или засято с житни култури, в съответствие с установения риск, или като постоянно пасище с често щателно косене или интензивна паша, или като трева за производство на семе, последвано през следващите две години от засаждане на растения, които не са гостоприемници за организма, за които няма установен риск от оцеляване или разпространяване на организма,- през първия сезон за производство на картофи или домати след периода, описан в предходното тире,- при картофите, засажда се официално сертифицирано картофено семе, за производство на семе или стокова продукция,и се провежда официално обследване, включващо изследване, съгласно описаното в член 2, параграф 1;б) в други полета:- през годината на производство след обявеното замърсяване:- не се засаждат картофени клубени и растения, или други растения-гостоприемници за организма и се вземат мерки за отстраняване на самораслите картофени и доматени растения и други растения-гостоприемници, включително картофени плевели, при необходимост, или- при картофените клубени, може да се засажда официално сертифицирано картофено семе, предназначено единствено за стокова продукция, при условие че отговорните официални органи са убедени, че са елиминирани рисковете от саморасли картофени и доматени растения и други растения-гостоприемници, включително картофени плевели. Растящата култура се наблюдава през подходящи интервали и самораслите картофени растения се изследват за организма; освен това, при картофите, се преглеждат прибраните като реколта клубени;- за първата година на производство след описаната в първото тире,- при картофите, засажда се само официално сертифицирано картофено семе, предназначено за посев или за стокова продукция,- през минимум втората година на производство след тази от първото тире,- при картофите, засажда се само официално сертифицирано картофено семе или такова, получено под официален контрол от официално сертифицирано картофено семе, предназначено за посев или за стокова продукция,- през всяка от годините на производство, посочени в предходните абзаци, се вземат мерки за отстраняване на самораслите картофени и доматени растения и други растения-гостоприемници, включително картофени плевели, и се извършва официално обследване, съгласно описаното в член 2, параграф 1, като в случаите, когато се засажда картофено семе за производство на посевен материал, се извърша изследване на клубените;в) незабавно след обозначаването на замърсяване съгласно член 5, параграф 1, буква а), ii) и през всяка от следващите години на производство до първия разрешен сезон, включително, за отглеждане на картофи и домати върху полето(-ата) обозначени като замърсени, съгласно посоченото в параграф 1:- всички машини и съоръжения за съхранение на мястото на производство, които са включени в производството на картофи или домати, се почистват и, при необходимост, дезинфекцират чрез използване на подходящи методи, определени в точка 3,- въвежда се официален контрол върху програмите за напояване и пръскане, включващ забрана на същите, при необходимост, с цел да се предотврати разпространението на организма;г) в участък за производство на защитени култури, обозначен като замърсена по член 5, параграф 1, буква а), ii), когато е възможна пълна замяна на средата за отглеждане,- не се засаждат никакви картофени клубени или растения, или други растения-гостоприемници за организма, включително доматени растения и семена, освен ако посоченият участък не е била подложен на мерки под официален надзор за унищожаване на организма и отстраняване на всякакъв материал от растения-гостоприемници, включващи поне пълна подмяна на средата за отглеждане, почистване и, при необходимост, дезинфекция на посочения участък и цялото оборудване, и впоследствие е дадено одобрение от отговорните официални органи за отглеждане на картофи и домати, и- при производството на картофи, това производство е от официално сертифицирано картофено семе, или от мини-клубени или микрорастения, произхождащи от проверени източници,- въвежда се официален контрол върху програмите за напояване и пръскане, включващ забрана на същите, при необходимост, с цел да се предотврати разпространението на организма.4.2 В рамките на разграничената зона без да се засягат мерките, посочени в 4.1, държавите-членки:а) незабавно и в продължение на минимум три години на производство след обявеното замърсяване:аа) в случаи, когато разграничената зона е определена съгласно член 5, параграф 1, буква а), iv),- осигуряват надзор от техните отговорни официални органи върху местата за отглеждане, складиране или обработване на картофени клубени или домати, заедно с местата, които работят с машини за производство на картофи или домати по договор,- изискват почистване и, при необходимост, дезинфекция на машините и складовете на такива места, с използване на подходящи методи, съгласно определеното в точка 3,- изискват засаждането само на сертифицирано семе или семе, получено под официален контрол за всички картофени култури в рамките на тази зона, и извършване на изследване след прибиране на реколтата от картофени култури за посев, отглеждани в места на производство, определени като вероятно замърсени съгласно член 5, параграф 1, буква а), iii),- изискват отделно обработване на прибраната реколта от сортове картофи за семе и тези за стокова продукция върху всички места в рамките на зоната,- извършват официално обследване, съгласно предвиденото в член 2, параграф 1,аб) в случаи, когато повърхностни води са обозначени като замърсени съгласно член 5, параграф 1, буква в), ii) или включени в елементите за възможно разпространение на организма в съответствие с приложение V, точка 2,- извършват ежегодно обследване през подходящи интервали от време, включващо вземане на проби от повърхностни води и подходящи картофени растения-гостоприемници в съответните водоизточници и извършване на изследване в съответствие със:- съответния метод, определен в приложение II, за изброения растителен материал, или- всеки друг официално одобрен метод, в останалите случаи,- въвеждат официален контрол върху програмите за напояване и пръскане, включително забрана върху използването на вода, обявена за замърсена, за напояването и пръскането на изброения растителен материал и, при необходимост, на други растения-гостоприемници, с цел да се предотврати разпространението на организма. Тази забрана може да се преразглежда на базата на резултатите, получени при посоченото ежегодно обследване,- в случаи, когато са замърсени отпадъчни води, въвеждат официален контрол върху изхвърлянето на отпадъци от промишлена преработка или предприятия за пакетиране, които обработват изброения растителен материал;б) създават програма, при необходимост, за подмяна на всички сортове картофи за семе в течение на подходящ период от време.--------------------------------------------------19980720ПРИЛОЖЕНИЕ VIIОфициално одобрените съоръжения за отстраняване на отпадъци, посочени в приложение VI, параграф 1, четвърто тнре, съответстват на следните разпоредби, така че да се избегне рискът от разпространение на организма:i) отпадъци от преработка на картофи и домати (включително бракувани картофи, обелки и домати) и всякакви други твърди отпадъци от картофите и доматите, се депонират чрез;- дълбоко загробване на място за отпадъци, където няма риск от просмукване и стичане към селскостопанска земя или от контакт с водоизточници, които могат да се използват за напояване на селскостопанска земя. Отпадъците се превозват директно до мястото при условия на ограничаване, така че да няма риск от загуба на отпадъците, или- изгаряне;ii) отпадъчни води от преработка: преди депониране, отпадъчни води съдържащи суспендирани твърди частици се подлагат на процес на филтриране или отлежаване, за да се премахнат тези твърди частици. Тези твърди частици се депонират съгласно начина, определен в i).Впоследствие отпадъчните води:- се загряват до минимум 70 °С в продължение на най-малко 30 минути преди депониране, или- се депонират по друг начин, който подлежи на официално одобрение и се извършва под официален контрол, така че да няма риск отпадъците да влязат в контакт със селскостопанска земя или водоизточници, които могат да се използват за напояване на селскостопанска земя. Комисията и останалите държави-членки се уведомяват за подробностите по това.--------------------------------------------------