b'\n_START_ARTICLE_\nColture organotipiche\n_START_PARAGRAPH_\nLe colture organotipiche rappresentano una tecnica di coltura tridimensionale di tessuti in vitro, utilizzata nella ricerca biomedica per lo studio dello sviluppo di un tessuto, per test tossicologici e farmacologici.\n_START_SECTION_\nModelli sperimentali esistenti\n_START_PARAGRAPH_\nLe colture cellulari hanno rappresentato per decenni un utile metodo per lo studio delle patologie in vitro. Queste colture possiedono il grande vantaggio della maneggevolezza dato che sono costituite da un\'unica linea cellulare, in grado di crescere in un unico strato in un supporto di plastica. Allo stesso tempo, la loro semplicit\xc3\xa0 rende difficile considerare le colture cellulari un modello in grado di mimare un tessuto o un organismo complesso. Inoltre, molte linee cellulari sono di derivazione tumorale, rendendo difficile il confronto con un tessuto normale._NEWLINE_Anche l\'utilizzo delle colture cellulari primarie non ha permesso di superare il problema dell\'eccessiva semplicit\xc3\xa0._NEWLINE_I modelli animali nella ricerca biomedica possiedono il vantaggio di poter mimare un organismo complesso, con tutte le interazioni fisiologiche dei diversi tessuti rendendo la sperimentazione animale necessaria per lo studio degli effetti terapeutici e tossici dei farmaci, prima dell\'immissione in commercio. Lo svantaggio dei modelli animali \xc3\xa8 rappresentato dalla loro eccessiva complessit\xc3\xa0 che non permette un controllo di tutti i parametri._NEWLINE_In diversi campi della ricerca scientifica, vi \xc3\xa8 un crescente interesse nello sviluppo di nuovi modelli in grado di mimare i meccanismi complessi di interazione tra le cellule che si osservano nei tessuti complessi. In aggiunta a questo, l\'industria farmaceutica necessita di modelli complessi per lo studio della tossicologia dei farmaci nella fase pre-clinica.\n_START_SECTION_\nColture organotipiche di cervello\n_START_PARAGRAPH_\nLe colture organotipiche pi\xc3\xb9 utilizzate sono quelle di derivazione neuronale.\n_START_SECTION_\nMetodo "Roller-Tube"\n_START_PARAGRAPH_\nIl primo approccio venne sviluppato da Hogue nel 1947 e successivamente modificato da Costero e Pomerat nel 1951 quando del tessuto cerebrale umano venne coltivato in vitro. La tecnica si basava sull\'inclusione di un tessuto cerebrale in un coagulo formato da globulina e plasma di pollo. Questa tecnica venne descritta in modo approfondito nel 1981 da G\xc3\xa4hwiler utilizzando fettine di tessuto cerebrale di ratto e venne chiamata Roller-Tube. Il nome deriva dal movimento rotatorio con cui viene mantenuta la coltura. Infatti, la fettina di tessuto cerebrale viene inclusa in un coagulo, formato da plasma di gallina e trombina su un vetrino, e mantenuta in vita in un terreno di coltura liquido simile a quello utilizzato per le colture cellulari. Il vetrino immerso nel terreno viene mantenuto in una provetta, inserita in uno supporto che mantiene un movimento rotatorio (10 rivoluzioni per ora, nell\'articolo del 1981). La fettina di tessuto viene mantenuta in coltura per diverse settimane e il movimento favorisce la riduzione dello spessore del tessuto dagli originali 300-400\xc2\xa0\xc2\xb5m ai circa 50\xc2\xa0\xc2\xb5m. La riduzione dello spessore rende il tessuto utile per analisi microscopica dello sviluppo della connettivit\xc3\xa0 neuronale, dello sviluppo delle fibre, della struttura sinaptica e per elettrofisiologia.\n_START_SECTION_\nMetodo "Interface"\n_START_PARAGRAPH_\nSuccessivamente, un semplice metodo di coltura venne sviluppato da Stoppini e chiamato "interface". In questa tecnica, fettine di tessuto vengono preparate da tessuto cerebrale espiantato da topo o ratto (ippocampo nel lavoro di Stoppini) e mantenute in coltura su una membrana semiporosa a contatto con una piccola quantit\xc3\xa0 di terreno liquido, permettendo al tessuto di vivere in un\'interfaccia aria-liquido, non essendo mai immerso. La coltura viene mantenuta vitale in un classico incubatore per cellule a 37\xc2\xa0\xc2\xb0C, 95% di umidit\xc3\xa0 e 5% di anidride carbonica._NEWLINE_I vantaggi di questa tecnica sono la maggiore semplicit\xc3\xa0 rispetto al "Roller-Tube" e la possibilit\xc3\xa0 di preservare l\'integrit\xc3\xa0 strutturale del tessuto, permettendo cos\xc3\xac di poter recuperare un quantitativo sufficiente di materiale biologico (RNA, proteine) per le successive analisi molecolari._NEWLINE_L\'idea alla base di questa tecnica \xc3\xa8 la possibilit\xc3\xa0 di osservare il funzionamento fisiologico del tessuto nervoso in vitro, grazie alla possibilit\xc3\xa0 del tessuto di sopravvivere espiantato per settimane. Infatti, cellule di fettine di tessuto cerebrale umano post-mortem sono in grado di sopravvivere in vitro per pi\xc3\xb9 di 70 giorni.'