継代培養して脱分化誘導することにより、骨、筋あるいは脂肪細胞の初期マーカーをすでに発現している細胞質に脂肪滴を有さない前駆脂肪細胞株を得る工程、4)上記3)の前駆脂肪細胞株を分化誘導剤によって分化転換誘導することにより、他の機能を有する細胞を取得する工程。BP-08645である請求項1に記載の他の機能を有する細胞を取得する方法。脂肪組織由来の成熟脂肪細胞が皮下脂肪組織由来の成熟脂肪細胞である請求項1に記載の他の機能を有する細胞を取得する方法。分化転換された他の機能を有する細胞が骨芽細胞である請求項1~3のいずれかに記載の方法。分化転換された他の機能を有する細胞が筋芽細胞である請求項1~3のいずれかに記載の方法。分化転換された他の機能を有する細胞が軟骨細胞である請求項1~3のいずれかに記載の方法。分化転換された他の機能を有する細胞が上皮細胞である請求項1~3のいずれかに記載の方法。分化転換された他の機能を有する細胞が神経細胞である請求項1~3のいずれかに記載の方法。体の失われた部分や機能しなくなった部分を交換する方法として、義足、義歯などの人工物で補う方法や、他人の体の一部を用いた皮膚、角膜などの組織を移植する方法がある。腎臓、心臓、肺などの臓器の移植は19世紀から20世紀にかけて普及した。これらの代替物のうち、人工物を使用するものとして、1945年頃から人工腎臓(透析器)が発達し、現在広く使用されている。作られたが、これらのほとんどは体外で使用する装置であるため、使用の制約が大きい。複雑な機能を持つ肝臓においては、人工肝臓が開発される可能性は低い。従って、臓器を人工物と代替することによって生体の機能を完全に補うことは難しい。腎臓、心臓、肝臓などの臓器は多様な機能を持っており、これらの臓器が本来の機能を果たさなければ、人間は死に至る。そこで、生体の本来の機能を完全に補うために、他の人間や動物の健康な臓器と機能しない臓器を交換する生体由来の臓器移植による治療が行われるようになっている。生体由来の臓器を移植することにより、人工物による代替が困難であった心臓や肺、またほぼ人工物の開発が不可能であった肝臓においても、生体の機能を補うことが可能となった。臓器移植の治療を受ける人は年々増加しており、日本においては年間700件以上の腎臓移植や、400件以上の肝臓移植が行われている。心臓移植や肺移植において件数はまだ少ないが、確実に患者の生存率を高めており、臓器移植は効果的な治療方法として確立されている。一方で生体由来の臓器を移植することは、免疫的な拒絶反応や感染症などを引き起こす可能性が高く、移植した後にこれらの影響で死亡する例も多い。ドナー不足により移植を望みながら待機している患者が多く、年間の移植実施数に対し、待機者の死亡数が上回っている。臓器移植を受けた場合でも、移植や予後の治療に莫大な費用がかかるなど、生体由来の臓器移植における問題点は多い。このような臓器移植の問題点を克服するために、新しい治療方法として再生医療が注目され、大きな関心が寄せられている。再生医療とは、人間の体の失われた部分や機能しなくなった部分に対し、多能性および自己複製能力を有する細胞を分化させ、組織や器官を再構築することを特徴とした治療方法である。この治療は患者本人の細胞を使用する自家移植が可能であり、免疫的な拒絶反応や感染をひきおこす可能性が低い。細胞を用いて組織や器官を形成するため、ドナー不足の解決につながる新しい治療方法として期待されている。Cell)などが知られている。ES細胞は受精卵由来の未分化な細胞で、多種多様な組織、器官への分化誘導が可能である。幹細胞であるMS細胞は再生医療のうち、骨、筋および脂肪組織の再生に有用であると考えられている。体細胞であるため倫理的な問題はなく、成人の体から比較的容易に採取することができる。骨髄間質には多種多様な細胞が含まれるので多能性を有するMS細胞のみを単離するのは困難であり、MS細胞が得られても他細胞の混入によって増殖培養中に損失する確率が高く、移植治療には解決されるべき問題が多くある。採取時に麻酔が必要であることからドナーの負担が大きいことも問題となっている。移植にはまとまった数の細胞が必要とされるため、再生医療の進展には簡単かつ安価に大量供給可能なドナー細胞の開発が必要不可欠である。幹細胞が再生医療のドナー細胞として集中的に研究されているが、これらのES細胞あるいはMS細胞の供給、維持、培養には特殊な試薬、機器および技術が必要であり、莫大な費用がかかる。これらの問題の解決において、多能性および自己複製能力を有し、さらに簡単に採取可能であり、かつ安定して特性が維持される細胞を得ることが必要であり、それらの条件を満たす細胞を取得する方法の確立が望まれる。そこで本発明者はこれらの問題点を解決するために、従来の再生医療用ドナー細胞に対する考え方から大きく離れて、生体の各部位の体表面に存在する成熟脂肪細胞に着目した。成熟細胞とは分化が終了した細胞であり、終末分化した細胞は脱分化しないと一般的に考えられている。本発明者は成熟脂肪細胞の脱分化を誘導し、前駆脂肪細胞株を樹立する新しい培養方法を確立することに成功した(特開2000-83656)。この培養方法により樹立された前駆脂肪細胞株は均一で、維持、培養が容易であり、かつ特別な技術あるいは施設等が不必要である。したがって幹細胞における問題点をほぼ解決する新規の再生医療用ドナー細胞として期待される。本発明者らが開発した前駆脂肪細胞株は皮下などの体表近くに存在する成熟脂肪細胞を由来とする。成熟脂肪細胞は他細胞の混入がない単一な細胞群として簡単に採取ができ、ドナー側の負担が少ない状態で大量かつ容易に採取することができる。新生児から高齢者まで皮下脂肪は存在するため、年齢を問わずドナー細胞を得ることができ、自家移植も可能である。免疫的な問題をクリアーすれば、美容整形外科等において廃棄される脂肪細胞等を利用するなど、工業的に量産ができる可能性も高い。他の機能を有する細胞を取得する方法を確立し、組織や器官の形成を行うことが、再生医療の自家移植システムの構築において望まれる。【図面の簡単な説明】図1は、脂肪組織から単離されたブタおよびマウスの成熟脂肪細胞の顕微鏡写真を示す。A;ブタの成熟脂肪細胞のヘマトキシリン染色により、核が染色されている。B;GFPマウス由来の成熟脂肪細胞の蛍光顕微鏡像を示した。核および細胞質が蛍光している。図2は、マウスの成熟脂肪細胞由来の前駆脂肪細胞の増殖期における種々の転写因子群の発現状況を写真にて示す。PPARγ、(上段)、Cbfa1(中段)およびMyf5(下段)の発現を示す。図3は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換した骨芽細胞の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導28日後におけるアルカリホスファターゼ陽性の骨芽細胞を示す。B.倍率を高めたアルカリホスファターゼ陽性細胞の形態を示す。アルカリホスファターゼ陽性細胞が骨芽細胞特有の形態を示している。図4は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換した骨芽細胞の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導4日後におけるマウス胎子頭蓋骨由来のアルカリホスファターゼ陽性の骨芽細胞(対照区)。B.分化誘導14日後における成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞(青)を示す。骨芽細胞(青)と脂肪細胞(赤)とが混在する。図5は、実施例のオステオカルシンを分泌した成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞の顕微鏡写真を示す。矢印は、骨芽細胞への分化誘導24日後におけるオステオカルシン抗体および染色された成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞を示す。図6は、実施例の成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞の骨マトリックス(カルシウムの沈着)の形成を顕微鏡写真にて示す。矢印は、分化誘導20日後にコッサ染色されたカルシウム沈着部分が染色されている。図7は、実施例のマウスの成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換した骨芽細胞の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導28日後におけるアルカリホスファターゼ陽性の骨芽細胞を示す。B.実施例のオステオポンチンを分泌した成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞の顕微鏡写真を示す。矢印は、骨芽細胞への分化誘導12日後におけるオステオカルシン抗体および染色された成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞を示す。C.実施例の成熟脂肪細胞由来の骨芽細胞の骨マトリックス(カルシウムの沈着)の形成を顕微鏡写真にて示す。分化誘導16日後にコッサ染色されたカルシウム沈着部分が染色されている。図8は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換した筋芽細胞の顕微鏡写真を示す。核内にMyf5を発現していない。B.分化誘導4日後、殆どの細胞の核内にMyf5の発現が観察される。図9は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換した筋芽細胞の顕微鏡写真を示す。分化誘導6日後、殆どの細胞の核内にMyoDの発現が観察される。図10は、実施例のミオゲニンを発現した成熟脂肪細胞由来の筋芽細胞の顕微鏡写真を示す。分化誘導18日後、殆どの細胞の核内にミオゲニンの発現が観察される。図11は、実施例のマウスの成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換した筋芽細胞の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導4日後、殆どの細胞の核内にMyf5の発現が観察される。B.分化誘導4日後、殆どの細胞の核内にMyoDの発現が観察される。C.分化誘導7日後、殆どの細胞の核内にミオゲニンの発現が観察される。図12は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換させた軟骨細胞の顕微鏡写真を示す。A.培養16日後における対照区のPAを示す。軟骨細胞に分化転換誘導した場合に観察される細胞の凝集塊は観察されない。B.分化誘導16日後におけるアルシアンブルー染色像を示した。細胞は凝集塊を形成し、その内部が染色される(矢頭参照)。C.分化誘導16日後におけるトルイジンブルー染色像を示した。細胞は凝集塊を形成し、その内部が染色される(矢頭参照)。D.分化誘導16日後におけるコラーゲンタイプ2免疫染色像を示した。細胞は凝集塊を形成し、その内部が染色される(矢頭参照)。図13は、実施例のマウスの成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換させた軟骨細胞の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導14日後におけるアルシアンブルー染色像を示した。殆どの細胞が染色される。B.分化誘導14日後におけるトルイジンブルー染色像を示した。殆どの細胞が染色される。一部では凝集塊が形成される(矢頭参照)。C.分化誘導14日後におけるコラーゲンタイプ2免疫染色像を示した。図14は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPA(GFP-PA)を分化転換させた乳腺上皮細胞(ME)の顕微鏡写真を示す。A.コラーゲンゲル3次元培養2日後におけるGFP-PAおよびME(矢頭)の光学顕微鏡像を示した。3次元培養下のGFP-PAおよびMEは,いずれも線維芽細胞様の形態を示した。B.コラーゲンゲル3次元培養2日後におけるGFP-PAおよびME(矢頭)の蛍光顕微鏡像を示した。紫外線照射下において核が緑色に強く蛍光する線維芽細胞はGFP-PAであることが確認できる。野生型のMEは蛍光しない。図15は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPA(GFP-PA)を分化転換させた乳腺上皮細胞(ME)の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導28日後、細胞は集合して乳管様の形態を示した(矢頭)。蛍光する乳管様の形態を示した細胞群はGFP-PA由来であり、それらは上皮細胞様の形態に変化し、腺胞構造を形成した。図16は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPA(GFP-PA)を分化転換させた乳腺上皮細胞(ME)の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導28日後、ヘマトキシリン染色したGFP-PAおよびME(矢頭)の光学顕微鏡像を示した。コラーゲンゲル中の細胞は集合し、腺胞構造を形成した。B.Aで腺胞構造を形成した細胞群の蛍光顕微鏡像を示した。腺胞構造を示した細胞の核が強く蛍光したことから、それらの上皮細胞様の細胞はGFP-PA由来であることが確認された。C.Bと同様の標本におけるE-カドヘリン免疫染色像を示した。Bとは異なり、腺胞構造を形成する細胞全体が蛍光するのが確認された(矢頭)。D.ケラチン免疫染色像を示した。Bとは異なり、腺胞構造を形成する細胞全体が蛍光するのが確認された(矢頭)。図17は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPA(GFP-PA)を分化転換させた乳腺上皮細胞(ME)の顕微鏡写真を示す。A.分化誘導28日後、ヘマトキシリン染色したGFP-PAおよびME(矢頭)の光学顕微鏡像を示した。コラーゲンゲル中の細胞は集合し、管状構造を形成した。B.Aで腺胞構造を形成した細胞群の蛍光顕微鏡像を示した。管状構造を示した細胞が強く蛍光したことから、それらの上皮細胞様の細胞はGFP-PA由来であることが確認された。C.Bと同様の標本におけるビンキュリン免疫染色像を示した。管状構造を形成する細胞全体が蛍光するのが確認された(矢頭)。D.ZO-1免疫染色像を示した。管状構造を形成する細胞全体が蛍光するのが確認された(矢頭)。図18は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換させた神経細胞の顕微鏡写真を示す。A.神経細胞へと分化誘導しなかったPAを示した。いずれの細胞も線維芽細胞様の形態が維持されている。B.分化誘導12時間後におけるPAの光学顕微鏡像を示した。線維芽細胞様のPAと神経細胞様の形態に変化した細胞(矢印)が観察される。C.対照区としてNg108-15細胞株を示した。Ng108-15は分化誘導後に神経細胞特有の形態を示した。図19は、実施例の成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換させた神経細胞の顕微鏡写真を示す。形態を示した細胞のみがネスチン抗体で染色された(矢頭)。形態を示した細胞のみがニューロン特異的エノラーゼ抗体で染色された(矢頭)。形態を示した細胞のみがβIII-チューブリン抗体で染色された。形態を示した細胞のみがMAP2抗体で染色された。形態を示した細胞のみがニューロフィラメント抗体で染色された(矢頭)。図20は、実施例のマウスの成熟脂肪細胞に由来するPAを分化転換させた神経細胞の顕微鏡写真を示す。A.神経細胞へと分化誘導しなかったPAを示した。いずれの細胞も線維芽細胞様の形態が維持されている。形態を示した細胞がネスチン抗体で染色された。形態を示した細胞がニューロン特異的エノラーゼ抗体で染色された。形態を示した細胞がβIII-チューブリン抗体で染色された。形態を示した細胞がMAP2抗体で染色された。形態を示した細胞がニューロフィラメント抗体で染色された。【発明の開示】本発明は、動物の脂肪組織由来の成熟脂肪細胞を脱分化させた前駆脂肪細胞を用い分化転換誘導することにより、他の機能を有する細胞を取得する方法および該方法により取得された細胞に関する。該方法により取得された細胞より組織、器官を形成し、再生医療へ応用することに関する。本発明は、次のとおりの他の細胞への分化転換を誘導する培養方法、及びこのような培養方法を用いて分化転換された細胞に関する。1)脂肪組織由来の成熟脂肪細胞を脱分化させた前駆脂肪細胞を分化転換誘導することにより、他の機能を有する細胞を取得する方法。BP-08645である請求項1に記載の他の機能を有する細胞を取得する方法。3)脂肪組織由来の成熟脂肪細胞が皮下組織由来の成熟脂肪細胞である前記1)に記載の他の機能を有する細胞を取得する方法。4)分化転換された他の細胞が骨芽細胞である前記1)~3)のいずれかに記載の方法。5)分化転換された他の細胞が筋芽細胞である前記1)~3)のいずれかに記載の方法。6)分化転換された他の機能を有する細胞が軟骨細胞である前記1)~3)のいずれかに記載の方法。7)分化転換された他の機能を有する細胞が上皮細胞である前記1)~3)のいずれかに記載の方法。8)分化転換された他の機能を有する細胞が神経細胞である前記1)~3)のいずれかに記載の方法。10)細胞が骨芽細胞である前記9)に記載される細胞。11)細胞が筋芽細胞である前記9)に記載される細胞。12)細胞が軟骨細胞である前記9)に記載される細胞。13)細胞が上皮細胞である前記9)に記載される細胞。14)細胞が神経細胞である前記9)に記載される細胞。本発明における脂肪組織由来の成熟脂肪細胞の脱分化は、たとえば、本発明者らによってなされた特開2000-83656号公報によっておこなうとよい。皮下および内臓脂肪組織をコラゲナーゼ処理したのち、口径100および150μmのメッシュでフィルトレーションすると単胞性脂肪細胞のみからなる単一の画分が採取される(図1)。Adipocytes:PPMA、以下PAとする)を得ることができる。由来する細胞が望ましい。(以下PPARγと略す、上段)、骨細胞の分化過程における決定にかかわるCbfa1(中段)および筋細胞の分化過程における決定にかかわるMyf5(下段)のそれぞれをすでに発現しているヘテロな細胞群である。骨、筋あるいは脂肪細胞の初期マーカーをすでに発現しているヘテロな細胞群であり、「ゆらぎ」の状態にあり、幹細胞とは異なるユニークな細胞である。BP-08645(寄託日平成16年2月20日)が付されている。