(式中、YはO又はNHで表される構造を有し、m1,m2,n1,n2,p1,p2,p3,p4は、それぞれ独立して、1以上6以下の整数)にて表される構造を備えることを特徴とするリガンド。【0001】【発明の属する技術分野】本発明は、チップテクノロジーやクロマトグラフィ、バイオプローブ等にて糖を使用する際に、糖の導入を好適にかつ効率よく行うために用いられる多岐用途型リンカー化合物、及び該多岐用途型リンカー化合物に糖を導入してなるリガンド、リガンド担持体、並びにこれらの製造方法に関するものである。【0002】【従来の技術】生体内に存在する種々の糖は、特定のタンパク質と相互作用して、生物の活動や生命を維持するためのメカニズムの中で重要な役割を果たしている。そのため、糖とタンパク質との相互作用を調べることは、糖の生物活性を調べる上で重要となる。【0003】糖と相互作用するタンパク質は、例えば、以下の手法によって検出される。表面プラズモン共鳴(以下、SPRと記載する)法によれば、表面に糖が固定されているセンサチップを用いて、該糖とタンパク質との生化学的結合を調べることができる。アフィニティクロマトグラフィの担体に糖を固定すれば、糖と特異的に相互作用するタンパク質を分離精製することができる。遺伝子工学にて用いられるバイオプローブとして糖を用いれば、糖と相互作用するタンパク質を検出することができる。【0004】本発明者らは、これまでに、上記SPRのセンサチップやアフィニティクロマトグラフィの担体等のタンパク質分析用の支持体に、種々のオリゴ糖を一段階にて導入して固定可能なリンカー化合物及び該リンカー化合物にオリゴ糖を導入してなるリガンドを見出している(例えば、非特許文献1等を参照)。【0005】上記リンカー化合物は、芳香族アミン部位とビオチン部位とを有している。このうち、上記芳香族アミン部位は、オリゴ糖を導入するために用いられる。上記ビオチン部位は、ビオチン-ストレプトアビジン(又はアビジン)結合を利用して、タンパク質分析用の支持体表面に固定化するために用いられる。従って、このリンカー化合物を介することによって、オリゴ糖をタンパク質分析用の支持体に固定化することができる。【0006】ところで、オリゴ糖は1分子だけでは活性がそれほど高くないため、オリゴ糖の生物活性を評価する場合には、通常、上記タンパク質分析用の支持体に3単位以上のオリゴ糖を集合化させて導入することが必要となる。そこで、上記リンカー化合物を介して、オリゴ糖を上記支持体に固定化する場合には、上記リンカー化合物に糖が導入されてなるリガンドを上記支持体表面上に集合化させることによって、3単位以上のオリゴ糖を集合化させなければならない。(1993)【0016】【発明が解決しようとする課題】しかしながら、上記従来のリンカー化合物を含んでなるリガンドを用いた場合、オリゴ糖の糖鎖をセンサチップ表面に2次元的に集合化させて配列させることは可能であるが、その集合状態を制御して、再現性よく配列させることが困難であるという技術的課題が残されている。【0017】すなわち、タンパク質分析用の支持体表面上に固定化されたオリゴ糖を用いて、該オリゴ糖の生物活性を精度よく観測するためには、オリゴ糖の糖鎖の集合状態を同一にし、オリゴ糖とタンパク質との間の相互作用を再現性よく観測することが求められる。ところが、上記従来のリガンドを用いた場合、3単位以上のオリゴ糖の糖鎖の集合状態は、リガンドの集合状態に依存することになり、3単位以上のオリゴ糖の糖鎖の集合状態を常に同一にすることができない可能性がある。オリゴ糖の糖鎖の集合状態が異なれば、観測されるオリゴ糖とタンパク質との相互作用も異なることになり、オリゴ糖の生物活性を再現性よく評価することが困難となる。【0018】本発明は、上記の課題を解決するためになされたものであって、その目的は、タンパク質分析用の支持体上に糖を再現性よく2次元的に配列し得る新規な多岐用途型リンカー化合物、及び、該リンカー化合物に糖分子が導入されてなる新規なリガンド、リガンド担持体、並びにこれらの製造方法、さらに、これらを用いて糖分子と他の物質との相互作用を測定する方法を提供することにある。【0019】【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、4単位以上の糖分子を導入可能な部位として4つの芳香族アミノ基を有し、かつ、糖分子と特異的に相互作用するタンパク質の検出や分離を行う際に用いられるタンパク質分析用の支持体に結合可能な部位としてビオチン部位又はイミノビオチン部位(以下、ビオチン部位と総称して記載する)を有する新規な多岐用途型リンカー化合物を用いることによって、上記支持体に4単位以上の糖分子を再現性よく2次元的に配列させることができることを見出し、本発明を完成させるに至った。【0020】すなわち、本発明の多岐用途型リンカー化合物(以下、リンカー化合物と記載する)は、上記課題を解決するために、一般式(1)【0021】【化5】【0022】(式中、YはO又はNHで表される構造を有する)にて表される構造を備え、上記Xは、末端に芳香族アミノ基を有するとともに主鎖に炭素-窒素結合を有していてもよい炭化水素誘導鎖を、4鎖含んでなる多分岐部位である構造を備えていることを特徴としている。炭素及び水素からなる炭化水素鎖にて、一部の炭素や水素が、他の原子や置換基に置き換わっていてもよいものを指すものとする。末端に芳香族アミノ基を有し、炭化水素鎖の主鎖構造である炭素-炭素結合(C-C結合)の一部が炭素-窒素結合(C-N結合)、炭素-酸素結合(C-O結合)やアミド結合(CO-NH結合)に置き換わっていてもよいものを指す。【0024】上記の構成によれば、上記リンカー化合物は、上記タンパク質分析用の支持体に固定可能な部位として、ビオチン部位を有している。このビオチン部位は、ストレプトアビジン又はアビジン(以下、アビジンと総称して記載する)に高い親和性を示す。簡単に固定化することができる。【0025】また、上記リンカー化合物は、種々の糖分子を簡便に導入できる部位として、芳香族アミノ基を有している。含まれているので、上記リンカー化合物には、4単位以上の糖分子を導入することができる。導入された糖分子は、一つのリンカー化合物に導入されているので、導入された4単位以上の糖分子間を所定の間隔に保つことができる。これにより、上記リンカー化合物を介して、タンパク質分析用の支持体上に導入される糖分子の配列を再現性よく得ることができる。【0026】さらに、上記リンカー化合物を用いれば、上記支持体表面に4単位以上の糖分子を集合化させることができるので、糖分子を再現性よく配列させることができ、それによって糖分子の十分な生物活性を得ることができる。これにより、糖分子とタンパク質との相互作用を検出することが可能になり、糖分子の生物活性を再現性よく評価することが可能になる。【0027】上記一般式(1)にて表されるリンカー化合物において、上記Xは、一般式(2)【0028】【化6】【0029】(式中、m1,m2,n1,n2,p1,p2,p3,p4は、それぞれ独立して、1以上6以下の整数)にて表される構造を備えていることが好ましい。4鎖有しているので、このリンカー化合物を介して、上記支持体上に4単位以上の糖分子を導入することが可能である。そのため、上記リンカー化合物を用いることによって、上記支持体表面にて導入された糖分子間の間隔を制御して、これらの糖分子を集合化させることができる。糖分子の配列を再現性よく得ることができる。【0031】従って、上記リンカー化合物を用いることにより、再現性のよい糖分子の生物活性を得ることが可能となる。これにより、糖分子の生物活性を利用するSPRやアフィニティクロマトグラフィ、バイオプローブ等にて、種々の糖分子とタンパク質との特異的な相互作用を好適に検出することが可能になる。【0032】また、本発明のリガンドは、上記の課題を解決するために、上記したいずれかのリンカー化合物の芳香族アミノ基に、糖分子を導入してなるものであることを特徴としている。【0033】上記リガンドは、具体的には、一般式(3)【0034】【化7】【0035】(式中、m1,m2,n1,n2,p1,p2,p3,p4は、それぞれ独立して、1以上6以下の整数)にて表される構造を備えていることが好ましい。【0036】あるいは、上記リガンドは、一般式(4)【0037】【化8】【0038】(式中、YはO又はNHで表される構造を有し、m1,m2,n1,n2,p1,p2,p3,p4は、それぞれ独立して、1以上6以下の整数)にて表される構造を備えていることが好ましい。【0039】上記リガンドのいずれかを用いることにより、上記タンパク質分析用の支持体表面に、4単位(一般式(4)にて表される構造を備えるリガンドの場合)又は4単位以上(一般式(3)にて表される構造を備えるリガンドの場合)の糖分子を固定化することができる。一つのリガンドは、4単位以上の糖分子を有しているので、上記支持体表面に2次元的に4単位以上の糖分子を集合化させることができるとともに、再現性よく配列させることができる。それゆえ、上記リガンドを用いることにより、SPRやアフィニティクロマトグラフィ、バイオプローブ等にて、種々の糖分子とタンパク質との特異的な相互作用を効率よく検出することが可能になる。【0040】また、本発明のリンカー化合物の製造方法は、上記の課題を解決するために、ビオチン系化合物と、芳香族アミノ基末端が保護基によって保護された分岐鎖を4鎖有するアミン化合物との縮合反応を行うステップと、上記芳香族アミノ基末端の保護基を脱保護するステップとを含んでいることを特徴としている。【0041】上記ビオチン系化合物とは、アミン化合物の二級アミノ基と反応し得るように、ビオチン構造又はイミノビオチン構造に置換基を導入して活性化されているものを指す。【0042】上記の方法によれば、アビジンが固定されているタンパク質分析用の支持体に固定可能なビオチン部位と、糖分子を簡便に導入できる芳香族アミノ基とを有している、本発明のリンカー化合物を得ることができる。【0043】また、本発明のリガンドの製造方法は、上記リンカー化合物のいずれかと、糖分子とを用いて、還元アミノ化反応を行うことを特徴としている。【0044】上記の方法によれば、還元アミノ化反応により、リンカー化合物に簡便に糖分子を導入して、本発明のリガンドを得ることができる。【0045】また、本発明の糖分子の導入方法は、上記のリガンドを含む溶液と、表面にストレプトアビジンまたはアビジンを固定化した支持体とを接触させることを特徴としている。【0046】上記の方法によれば、上記リガンド(リガンドに含まれるリンカー化合物)のビオチン部位又はイミノビオチン部位と、上記支持体表面のストレプトアビジン又はアビジンとを結合させることによって、支持体表面に上記リガンドを固定することができる。従って、リガンドを含む溶液と支持体とを接触させるという簡便な方法で、リンカー化合物に結合した糖分子を支持体の表面に配列させることができる。【0047】また、本発明のリガンド担持体は、リガンドを、ビオチン部位又はイミノビオチン部位と、ストレプトアビジン又はアビジンとの結合であるビオチン-アビジン結合を介して表面に固定化させてなることを特徴としている。【0048】上記の構成によれば、ビオチン部位又はイミノビオチン部位と、ストレプトアビジン又はアビジンとの結合であるビオチン-アビジン結合を介して、支持体表面にリガンドを強固に固定することができるので、支持体表面に2次元的に複数の糖分子を再現性よく配列させてなるリガンド担持体を提供することができる。従って、上記リガンド担持体を用いれば、リガンドに含まれる糖分子と、該糖分子と相互作用するタンパク質等の物質との相互作用を再現性よく観測することができるので、糖分子の生物活性の定量的な評価が可能になる。【0049】また、本発明の表面プラズモン共鳴の測定方法は、末端構造が異なる糖分子が導入されてなる少なくとも2つのセンサチップを用いて、上記少なくとも2つセンサチップは、第1の糖分子が支持体表面に固定化されてなる第1のセンサチップと、上記第1の糖分子とは末端構造が異なる第2の糖分子が支持体表面に固定化されてなる第2のセンサチップとを含み、第1のセンサチップを用いて得られた検出結果と、第2のセンサチップを用いて得られた検出結果との差を検出し、糖分子の相互作用を測定することを特徴としている。【0050】また、本発明の表面プラズモン共鳴の測定方法は、上記センサチップに、上記の同一の構造のリンカー化合物を用いて糖分子が固定化されることを特徴とする。【0051】上記方法によると、糖分子以外は同じ構造のリガンドを有する少なくとも2つのセンサチップを用いて、表面プラズモン共鳴(SPR)測定をすることができるため、少なくとも2つのセンサチップ相互作用の差は、糖分子に起因したものとして観測される。従って、上記測定方法を用いれば、糖分子以外の部分と、他の物質との非特異的な相互作用を低減させ、糖分子と他の物質との特異的な相互作用を観測することができる。ついて詳細に説明する。【0053】本発明の多岐用途型リンカー化合物(以下、リンカー化合物)は、オリゴ糖等の糖(以下、糖分子と記載する)の生物活性を利用するSPRやアフィニティクロマトグラフィ、遺伝子工学でのバイオプローブ等のように、糖分子と特異的に相互作用するタンパク質の検出や分離を行う場合に、タンパク質分析用の支持体に糖分子の導入を好適に行うために用いられるものである。上記リンカー化合物は、タンパク質との非特異的な相互作用を有していないため、上記のようなタンパク質の検出や分離に好適に用いることができる。【0054】すなわち、本発明のリンカー化合物は、具体的には、前記一般式(1)にて示すように、上記タンパク質分析用の支持体に固定可能な部位として、ビオチン部位又はイミノビオチン部位(以下、ビオチン部位と総称)を有し、糖分子を導入可能な部位として、芳香族アミノ基を有している。【0055】ビオチン又はイミノビオチン(以下、ビオチンと総称)は、塩基性の糖タンパク質であるストレプトアビジン又はアビジン(以下、これらを総称して、アビジンと記載する)と特異的に相互作用することが知られている。そのため、アビジンが固定されている支持体表面に、ビオチン部位を有する上記リンカー化合物を接触させると、ビオチン-アビジン結合が形成されて、上記リンカー化合物を上記支持体表面に簡単に固定化することができる。【0056】また、上記リンカー化合物は、前記一般式(1)にてXで表される構造を備え、末端に芳香族アミノ基を有するとともに主鎖に炭素-窒素結合を有していてもよい炭化水素誘導鎖を、4鎖含んでなる多分岐部位を有している。この多分岐部位に含まれる芳香族アミノ基のアミノ基(-NH2基)は、糖分子中の平衡によって生じるアルデヒド基(-CHO基)又はケトン基(-CR’O基、R’は炭化水素基)と反応する。この反応によって形成されたシッフ塩基を引き続き還元することによって、芳香族アミノ基に糖分子が導入されることになる。上記Xは、4つの芳香族アミノ基末端を有しているので、上記リンカー化合物には、後述するように、4単位以上の糖分子を導入することができる。【0057】上記Xは、具体的には、前記一般式(2)にて示すように、2鎖の炭化水素誘導鎖が、芳香族アミノ基とは反対側の末端にて、1つの窒素(N)に結合した2分岐構造を2つ有している。この2つの2分岐構造の上記窒素が、-CO-(CH2)m-(ここで、mは1~6の整数である)を介して、1つの窒素(N)に結合することによって多分岐構造を形成している。上記一般式(2)において、m1,m2は、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、互いに同じ整数であってもよい。このうち、製造の簡便性の点から、m1,m2は、互いに同じ整数であることが好ましく、特に2であることが好ましい。n1,n2は、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、互いに同じ整数であってもよい。このうち、製造の簡便性の点から、n1,n2は、互いに同じ整数であることが好ましく、特に2であることが好ましい。p1~p4は、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、一部あるいは全てが同じ整数であってもよい。このうち、上記多分岐部位を有する化合物の製造時の簡便さの点から、上記p1~p4は、互いに同じ整数であることが好ましく、特に2であることが好ましい。複数結合して分岐構造を形成している多分岐部位である構造を備えている。上記Xに含まれる複数の炭化水素誘導鎖は、すべて同じであることが好ましいが、末端に芳香族アミノ基を有していれば、互いに異なる構造を備えていてもよい。【0059】以上のように、一般式(1)にて表される構造を備えているリンカー化合物は、ビオチン部位と芳香族アミノ基末端とを有している。これにより、上記リンカー化合物を介して、上記タンパク質分析用の支持体上に、糖分子を強固にかつ簡単に結合させることができる。【0060】また、上記リンカー化合物は、多分岐部位を有し、該多分岐部位の各末端に芳香族アミノ基を有している。そのため、上記リンカー化合物に糖分子を導入してなるリガンド(後述)を用いることにより、上記支持体表面に効率よく4単位以上の糖分子を集合化させることができる。一つのリンカー化合物には4単位以上の糖分子を導入することができるので、上記リガンドを支持体表面に結合させた場合に、複数の糖分子を再現性よく配列させることができる。【0061】さらに、上記リンカー化合物は、タンパク質との非特異的な相互作用の影響をほぼ無視することができる。それゆえ、本発明のリンカー化合物を用いることによって、糖分子の生物活性を再現性よく評価することが可能になる。【0062】上記リンカー化合物は、以下に示す製造方法によって製造される。上記リンカー化合物は、ビオチン系化合物と、芳香族アミノ基末端が保護基によって保護された分岐鎖を4鎖有するアミン化合物との縮合反応を行い、その後、上記芳香族アミノ基末端の保護基を脱保護することによって製造される。【0063】上記ビオチン系化合物としては、下記一般式(5)【0064】【化9】【0065】にて表される構造を備えている化合物を挙げることができる。上記ビオチン系化合物は、ペンタフルオロフェニル基(Pfp)又はスクシンイミド基(Su)を有するエステル化合物である。そのため、上記ビオチン系化合物は、これらの置換基によって活性化されているので、アミン化合物の二級アミノ基(-NH基)と反応することができる。【0066】また、上記アミン化合物は、二級アミノ基と、保護基によって保護された芳香族アミノ基末端を有する分岐鎖とを含んでいれば特に限定されるものではなく、上記したリンカー化合物の多分岐部位(一般式(1)のX)に相当する構造を有していればよい。含まれる構造を有していればよい。上記分岐鎖は、炭素及び水素からなる炭化水素鎖にて、一部の炭素や水素が他の原子や置換基に置き換わっていてもよいものである。具体的には、上記分岐鎖は、保護基によって保護された芳香族アミノ基末端を有するとともに、炭化水素鎖の主鎖構造である炭素-炭素結合(C-C結合)の一部が炭素-窒素結合(C-N結合)、炭素-酸素結合(C-O結合)、アミド結合(CO-NH結合)に置き換わっていてもよいものである。【0068】また、上記保護基とは、芳香族アミノ基のアミノ基が上記縮合反応によって反応しないように導入される置換基である。このような保護基は、二級アミノ基の保護基を脱保護する際に影響を受けないものであれば、特に限定されるものではない。上記保護基としては、例えば、t-ブトキシカルボニル基(-COOC(CH3)3基;Boc基と記載する)、ベンジル基、アリルカルバメート基(-COOCH2CH=CH2、Alloc基)等を挙げることができる。【0069】上記アミン化合物としては、例えば、下記一般式(6)【0070】【化10】【0071】にて表される構造を備えている化合物を挙げることができる。このアミン化合物の合成方法については、後の実施例にて詳述する。【0072】上記ビオチン系化合物とアミン化合物との縮合反応により、ビオチン系化合物のPfpやSu等の置換基と、アミン化合物の二級アミノ基とが縮合して、アミド結合が形成される。その後、芳香族アミノ基末端の保護基を脱保護して、保護基を取り外し、芳香族アミノ基にすることによって、上記したリンカー化合物を得ることができる。【0073】次に、上記リンカー化合物の芳香族アミノ基に、糖分子が導入されてなるリガンドについて説明する。本発明のリガンドは、リンカー化合物のアミノ基が、糖分子中の平衡によって生じるアルデヒド基又はケトン基と反応し、この反応によって形成されたシッフ塩基を引き続き還元することによって、芳香族アミノ基に糖分子が導入されることになる。【0074】本発明のリガンドに含まれる糖分子は、還元糖であれば特に限定されない。糖分子としては、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース等の単糖類、結合している糖の数が2糖~10糖であるマルトース、ラクトース、後述する硫酸化オリゴ糖等のオリゴ糖類、単糖類やオリゴ糖類が組み合わされて糖数が11以上であるヘパリン、コンドロイチン硫酸、ヘパラン硫酸等の多糖類を挙げることができる。【0075】また、上記オリゴ糖類として、抗血液凝固活性を有することで知られている硫酸化多糖ヘパリン中の下記一般式(7)【0076】【化11】【0077】にて表される特定の部分二糖構造(GlcNS6S-IdoA2S)を有する硫酸化オリゴ糖や、該硫酸化オリゴ糖の還元末端にグルコースを結合させてなる下記一般式(8)【0078】【化12】【0079】にて表される構造を備えているオリゴ糖を挙げることができる。【0080】なお、上記オリゴ糖類や多糖類は、同一の単糖分子からなる単一オリゴ糖や単一多糖であってもよく、種々の単糖分子やその誘導体からなる複合糖質や、種々の単糖分子やその誘導体、オリゴ糖類を含んでなる複合多糖類であってもよい。上記糖分子は、いずれも、自然界から単離・精製して得られる種々の天然の糖であってもよく、人工的に合成された糖であってもよい。【0081】本発明のリガンドは、具体的には、前記一般式(3)にて表される構造を備えているものである。この一般式(3)にて表される構造を備えているリガンドは、前記一般式(1)にて表され、Xが前記一般式(2)にて表される構造を備えているリンカー化合物に、糖分子としてグルコースまたはマルトースまたはラクトースを導入してなるものである。一般式(2)にて表されるXは、4鎖の炭化水素誘導鎖を含む構造を備えている。この各炭化水素誘導鎖の芳香族アミノ基には、1単位又は2単位の糖分子を導入することができる。そのため、一般式(3)にて表される構造を備えているリガンドは、上記リンカー化合物に4単位以上8単位以下の糖分子が結合したものとなる。上記一般式(3)において、m1,m2は、一般式(2)中のm1,m2と同様に、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、互いに同じ整数であってもよい。n1,n2は、一般式(2)中のn1,n2と同様に、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、互いに同じ整数であってもよい。p1~p4は、一般式(2)中のp1~p4と同様に、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、一部あるいは全てが同じ整数であってもよい。【0082】上記リンカー化合物の炭化水素誘導鎖の芳香族アミノ基に導入される糖分子としては、グルコース、マルトース、ラクトースからなる群から選ばれる1つ以上の糖分子を挙げることができる。従って、一般式(3)にて表される構造を備えているリガンドは、一般式(3)のR7~R10の構造に応じて、上記リンカー化合物に、グルコース、マルトース、ラクトースからなる群から選ばれる糖分子が、4単位以上8単位以下導入されている構造を有している。【0083】なお、上記リンカー化合物の炭化水素誘導鎖の各芳香族アミノ基に導入される糖分子は、互いに異なっていてもよく、一部または全てが同じであってもよいが、糖分子の導入の簡便性の点から、全て同じであることが好ましい。それゆえ、例えば、一般式(3)におけるm1,m2,n1,n2,p1,p2,p3,p4が全て2で、リンカー化合物に4単位の糖分子が導入される場合に、糖分子がグルコースであれば、下記一般式(16)で表されるリガンドが好ましい。同様に、4単位の糖分子が導入される場合に、糖分子がマルトースであれば、下記一般式(17)で表されるリガンドが好ましく、糖分子がラクトースであれば、下記一般式(18)で表されるリガンドが好ましい。【0084】【化13】【0085】(一般式(16)~(18)中、YはO又はNHで表される構造を有する)また、本発明の他のリガンドは、前記一般式(4)にて表される構造を備えているものである。この一般式(4)にて表される構造を備えているリガンドは、前記一般式(1)にて表され、Xが前記一般式(2)にて表される構造を備えているリンカー化合物に、上記一般式(8)にて表される構造を備えている糖分子を導入してなるものである。一般式(2)にて表されるXは、4鎖の炭化水素誘導鎖を含む構造を有しているので、一般式(4)にて表される構造を備えているリガンドは、上記リンカー化合物に4単位の糖分子が結合したものとなる。上記一般式(4)において、m1,m2は、一般式(2)中のm1,m2と同様に、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、互いに同じ整数であってもよい。n1,n2は、一般式(2)中のn1,n2と同様に、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、互いに同じ整数であってもよい。p1~p4は、一般式(2)中のp1~p4と同様に、1以上6以下の整数であれば限定されず、互いに異なる整数であってもよく、一部あるいは全てが同じ整数であってもよい。【0086】上記のリガンドは、いずれもリンカー化合物と糖分子とを含んでなっているので、リンカー化合物内のビオチン部位にて、アビジンを有しているタンパク質分析用の支持体と、ビオチン-アビジン結合により結合することができる。これにより、このビオチン-アビジン結合を介して、上記支持体表面に4単位の糖分子を集合化して固定化されてなるリガンド担持体を提供することができる。よって、上記リガンドを用いることによって、例えばタンパク質分析用の支持体表面に2次元的に複数の糖分子を再現性よく配列してリガンド担持体を得、該リガンド担持体を用いることによって、糖分子の生物活性を再現性よく評価することが可能になる。それゆえ、本発明のリガンドは、SPRやアフィニティクロマトグラフィ、バイオプローブ等にて、種々の糖分子を簡単に導入するために好適に用いることができる。【0087】このように、本発明のリガンドを、ビオチン-アビジン結合を介して支持体の表面に固定化させてなるリガンド担持体も本発明に含まれる。このリガンド担持体はタンパク質分析の用途に限定されず、糖分子との相互作用を調べるための、タンパク質以外の物質の分析の用途として用いることもできる。【0088】上記リガンドは、該リガンドを含むリガンド溶液に、アビジンを固定したタンパク質分析用の支持体を所定時間浸漬する、あるいは、上記支持体にリガンド溶液を注入することによって、上記支持体表面に導入することができ、上記支持体表面に4単位以上の糖分子を集合化して固定化されてなるリガンド担持体を提供することができる。【0089】例えば、SPRのセンサチップに、上記リガンドを導入してなるリガンド担持体を得る場合には、まず、アビジンを固定したセンサチップを作成する。図1(a)に示すように、表面に金(Au)がコーティングされたガラス基板1を用いる。...(9)にて表される構造を備えている4-チオ酪酸を、金-硫黄結合(Au-S結合)を利用して、ガラス基板1上に固定する。この4-チオ酪酸を固定したガラス基板1に代えて、カルボキシル基を有するポリマーがコートされた基板を用いてもよい。【0090】続いて、図1(c)に示すように、カルボジイミド試薬の存在下にて、ガラス基板1上に固定された4-チオ酪酸と、N-ヒドロキシコハク酸イミドとを反応させる。その後、N-ヒドロキシコハク酸イミド部位と、アビジン2が有する末端アミノ基とを縮合させて、図1(d)に示すように、アビジン2をガラス基板1上に固定化する。これにより、アビジンをガラス基板1上に固定したセンサチップが得られる。【0091】次いで、このセンサチップを、本発明のリガンドが含まれるリガンド溶液に接触させる。具体的には、上記センサチップをリガンド溶液に浸漬する、あるいは、センサチップ表面にリガンド溶液を流す。これにより、特異的な相互作用として知られているビオチン-アビジン結合によって、図2(a)に示すように、上記センサチップ上にリガンド3を固定化したリガンド担持体4を得ることができる。【0092】なお、リガンド溶液に用いる溶媒としては、特に限定されるものではないが、例えば、PBS(リン酸緩衝溶液)等の緩衝液を挙げることができる。リガンド溶液に浸漬する場合の浸漬時間は、0.5時間~1.5時間程度であればよい。リガンド溶液を注入する場合の注入量は、0.006mg~0.06mg程度であればよい。【0093】上記のように、リガンド3を固定化してなるリガンド担持体4を用い、該リガンド担持体とタンパク質5とを接触させ(図2(b))、常法に従って、表面プラズモン共鳴装置を用いて共鳴角度を測定すれば、該リガンド担持体4とタンパク質5との結合挙動を観測することができる。SPR測定に用いるセンサチップとしては、例えば、ガラス、プラスチック等を用いることができ、特にガラスが好適に用いられる。リガンド担持体とタンパク質の接触は、例えば、タンパク質をランニングバッファーに溶解した溶液を、該リガンド担持体の表面に流入する、あるいは、上記タンパク質をランニングバッファーに溶解した溶液中に、上記リガンド担持体を浸漬することにより行えばよい。このランニングバッファーとしては、例えば、PBS等の緩衝溶液を挙げることができる。【0094】また、例えば、アフィニティクロマトグラフィに用いるアフィニティカラムとして、上記リガンドを導入したリガンド担持体を得る場合、まず、アビジンを固定したカラムを作成する。この作成方法は、常法(例えば、文献;アマシャムファルマシアバイオテク株式会社編、「初めてのリガンドカップリングハンドブック」(2002年)等参照)にて行えばよい。アミノ基を持つ化合物を固定化させるのに適した担体を充填してあるカラム(例えば、N-ヒドロキシスクシンイミドが固定化されたゲル担体を充填してあるカラム)に、アビジン含有溶液を流すことで、上記担体にアビジンを固定化させることができる。このアビジンを固定化されてなる担体(以下、アビジン付加体)に、本発明のリガンドが含まれるリガンド溶液を注入する。これにより、特異的な相互作用として知られているビオチン-アビジン結合によって、アビジン付加体にリガンドを固定化してなるリガンド担持体を得ることができる。【0095】なお、上記アビジン含有溶液に用いられる溶媒としては、例えば、塩化ナトリウム含有の酢酸ナトリウム水溶液等を挙げることができる。上記リガンド溶液に用いる溶媒としては、例えば、PBS等の緩衝液を挙げることができる。【0096】このように、本発明のリガンドは、ビオチン部位を有しているので、上記のように例えば、タンパク質分析用の支持体表面に、一段階にて簡単に糖分子を導入して固定化することで本発明のリガンド担持体を得ることができる。【0097】上記のように、リガンドを固定化してなるリガンド担持体を有するアフィニティカラムを用いて、アフィニティクロマトグラフィを行うには、以下のようにすればよい。アビジンを固定化してなる担体(アビジン付加体)が充填されてなるアフィニティカラムに、タンパク質溶液を注入し、常法に従って、アフィニティクロマトグラフィを行えば、リガンド担持体に結合するタンパク質と、結合しないタンパク質とを分離することができる。上記タンパク質溶液に用いられる溶媒としては、例えば、PBS等の緩衝溶液が挙げられる。リガンド担持体に結合しないタンパク質の、アフィニティカラムからの溶出に用いられる溶出用溶液としては、例えば、PBS等の緩衝溶液を用いればよい。【0098】なお、上記のようにSPR法のセンサチップや、アフィニティカラムクロマトグラフィに用いるアフィ二ティカラムに充填されるアビジン付加体等の支持体に糖分子を導入する方法も本発明に含まれる。【0099】以上のように、本発明のリガンド担持体は、上記リガンドを有しているので、支持体表面に2次元的に複数の糖分子を再現性よく配列することができる。それゆえ、糖分子の生物活性を再現性よく観測でき、糖分子の構造の解明や、糖分子の生物活性について定量的な評価を行うことができる。【0100】また、支持体表面に糖分子が固定化されているセンサチップを用いて、糖分子の特異的な相互作用を検出するSPR測定方法も本発明に含まれる。これは、末端構造が異なる糖分子が導入されてなる少なくとも2つのセンサチップを用いて、糖分子とタンパク質等の物質との相互作用作用を観測する。糖分子の末端とは、センサチップに固定されていない側のことである。糖分子との相互作用を観測する物質は、タンパク質に限定はされない。【0101】上記の方法を用いて、糖分子の種類の異なる2つのセンサチップを用いてSPR測定を行うには、例えば、以下のようにすばよい。第1の糖分子が支持体表面に固定化されてなる第1のセンサチップと、上記第1の糖分子とは末端構造が異なる第2の糖分子が支持体表面に固定化されてなる第2のセンサチップを用意する。これは、上記したように、センサチップ上にリガンドを固定化したリガンド担持体(センサチップ)を作成したのと同様に得られる。これらのセンサチップは、固定化される糖分子が異なっているリガンドを用いればよい。比較する糖分子には、例えば、ラクトースとグルコース、マルトースとグルコース、コージビオースとグルコース等が挙げられる。センサチップに固定化される糖分子が異なっているリガンドは、例えば、上記一般式(16)~(18)に示すリガンドリガンドが挙げられる。リガンドは本発明のものに限らず別のリガンドを用いてもかまわない。【0102】そして、例えば、第1の糖分子に特異的に作用するタンパク質等を用いて、測定条件を一定にして、上記2つのセンサチップに作用させ、両者の共鳴角度を観測する。この両者の共鳴角度の差を検出することで、糖分子とタンパク質等との特異的な相互作用として測定することができる。【0103】上記では、2つの種類のセンサチップ同時に測定したが、これに限定されることはなく、2種類以上のセンサチップを測定してもかまわないし、同時に測定しなくてもかまわない。少なくとも1つのセンサチップに糖分子を導入していないものを用いてもよい。リンカー化合物のみを固定化したものを用いてもよい。【0104】このように、本発明のSPR測定の方法は、非特異的な相互作用を低減して、糖分子と他の物質との特異的な相互作用を測定することができる。リンカー化合物及びリガンドの合成について、より詳細に説明する。合成したリガンドを用いた、SPR測定及びアフィニティクロマトグラフィについても詳細に説明する。【0106】なお、下記の実施例において、各種のスペクトル、旋光度の測定、電気泳動には次の機器を使用した。244S024(商品名)また、クロマトグラフィーには次のシリカゲルを用いた。mesh)(商品名)〔実施例1・リンカー化合物の合成〕本発明のリンカー化合物は、以下の手順にて合成した。【0107】下記一般式(10)にて示すように、室温条件下、メタノール(式中、MeOH)中にて、ベンジルアミン(化合物1、式中Bnはベンジル基を表す)と、6当量のアクリル酸メチルとを反応させて、上記ベンジルアミンに2単位のアクリル酸メチルをマイケル付加させ、収率93%にて化合物2を得た。その後、室温条件下にて、該化合物2が含まれているメタノール中に、大過剰(50当量)のエチレンジアミンを加え、該エチレンジアミンを化合物2に縮合させて、化合物3を得た。大過剰(50当量)のエチレンジアミンを加えるのは、エチレンジアミンの2つのアミノ基に同時に化合物2が縮合するのを防ぐためである。mmol)追加し12時間室温で撹拌した。mmol)加え終夜撹拌し、メタノール/アクリル酸メチル反応溶液を得た。1)で精製して、無色オイル状溶液として化合物2を得た。g(収率95%)であった。COCH2*CH2NBn)であった。各化学シフトδは、Hが複数存在するものには*を付けたプロトン、つまりH*、に対する測定値を示しており、以下の記載についても同様である。)を行ったところ、m/z(質量/電荷比)302.1[(M+Na)+]であった。【0111】続いて、下記一般式(11)にて示すように、上記化合物3が含まれているメタノール中に、室温条件下にて、11当量のアクリル酸メチルを加えて、化合物3にアクリル酸メチルを4単位付加し、収率81%にて化合物4を得た。その後、メタノールに2Mの水酸化ナトリウム水溶液を添加したアルカリ条件下にて、化合物4のメチルエステルを加水分解し、末端にカルボキシル基(-COOH基)を4単位有する化合物5を収率96%にて得た。【0112】【化15】【0113】化合物4を得るために、具体的に次のような操作を行った。mol)を加え室温で終夜撹拌して、化合物2/無水エチレンジアミン反応溶液を得た。この化合物2/無水エチレンジアミン反応溶液を濃縮し、黄色オイル状残渣を得た。mmol)を加えて室温で終夜撹拌し、黄色オイル状残渣/アクリル酸メチル反応溶液を得た。1)で精製して、化合物4として黄色オイル状溶液を得た。g(収率81%)であった。MeOCOCH2*)であった。680.4[(M+H)+]であった。【0115】また、化合物5を得るために、具体的に次のような操作を行った。mL)を加えてアルゴンガス雰囲気下0°Cで2時間撹拌し、化合物4/水酸化ナトリウム反応溶液を得た。mL)を加えてpH試験紙でpH3を確認後、化合物4/水酸化ナトリウム反応溶液を減圧濃縮し、残渣の水溶液を凍結乾燥させた。~メタノール)で精製し、H2O/メタノールで溶出させた画分を集め減圧濃縮した。その後、減圧濃縮した残渣を凍結乾燥して、化合物5として淡黄色結晶を得た。mg(収率96%)であった。MeOCOCH2*)であった。624.3[(M+H)+]であった。【0117】なお、本実施例では、化合物5はカルボキシル基が4単位のものまでしか合成していないが、必要であれば、化合物4のメチルエステルを加水分解せずに、エチレンジアミンを再び縮合させ、アクリル酸メチルを付加させる反応を続ければ、末端に8、16、32単位のカルボキシル基を有する骨格構造を容易に合成することが可能である。【0118】次いで、下記一般式(12)にて示すように、5当量の1-ヒドロキシベンゾトリアゾール(式中、HOBt)及び、10当量のジイソプロピルエチルアミン(式中、DIPEA)を含むN,N-ジメチルホルムアミド(DMF)中にて、0°Cから40°Cに温度変化させながら、活性化剤として5当量のo-[7-アザベンゾトリアゾール-1-イル]-N,N,N’,N’-テトラメチルウロニウムヘキサフルオロフォスフェート(式中、HATU)を用いて、上記化合物5の末端のカルボキシル基に、一方のアミノ基がt-ブトキシカルボニル基(式中Boc、以下、Boc基と記載)にて保護されたフェニレンジアミン誘導体(化合物6、5当量)を縮合させて、化合物7を得た(収率57%)。続いて、水素雰囲気下、50°Cのメタノール中にて、パラジウム(10%のPd-C)を用いて化合物7の接触還元を行って、該化合物7の二級アミノ基の保護基であるベンジル基を脱保護し、収率80%にて化合物8を得た。【0119】【化16】【0120】化合物6を得るために、具体的に次のような操作を行った。71.5mmol)とを加え、アルゴンガス雰囲気下、遮光して0°Cで30分撹拌し、その後室温で終夜撹拌し、m-フェニレンジアミン反応溶液を得た。1)で精製して、化合物6として黄白色結晶を得た。g(収率88%)であった。209.1[(M+H)+]であった。【0122】また、化合物7を得るために、具体的に次のような操作を行った。mL)に窒素雰囲気下で溶解させて、0°Cで15分撹拌し化合物5/1-ヒドロキシベンゾトリアゾール反応溶液を得た。μmol)とを加えて室温で終夜撹拌し、50°Cで5時間撹拌して化合物5/化合物6反応溶液を得た。1)で精製して、化合物7として白色結晶を得た。mg(収率57%)であった。693.3[(M+2H)2+]であった。【0124】化合物8を得るために、具体的に次のような操作を行った。終夜撹拌し、化合物7反応溶液を得た。化合物7反応溶液をメンブランフィルターでろ過しろ液を減圧濃縮して、化合物8として白色結晶を得た。mg(収率80%)であった。647.9[(M+2H)2+]であった。【0126】次に、下記一般式(13)にて示すように、温度50°C、トリエチルアミン(式中、TEA)の存在下、DMF中にて、脱保護されてフリーになった化合物8のアミノ基に、ペンタフルオロフェニル基(Pfp)にて活性化したビオチンを縮合させ、化合物9を得た(収率63%)。その後、0°Cの温度条件下、トリフルオロ酢酸(式中、TFA)を含むCH2Cl2中にて、化合物9のBoc基を脱保護して、化合物10を本発明のリンカー化合物として得た。【0127】【化17】【0128】化合物9を得るために、具体的に次のような操作を行った。mmol)を加えて50°Cで終夜撹拌し、ビオチン反応溶液を得た。mmol)を加え、50°Cで終夜撹拌し化合物8反応溶液を得た。mL×3)で洗浄後、有機相に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した。1)で精製して、化合物9として白色結晶を得た。mg(収率63%)であった。CH2CH2*CH2CH2CO)であった。761.4[(M+2H)2+]であった。【0130】また、化合物10を得るために、具体的に次のような操作を行った。)を加え0°Cで1時間撹拌し、化合物9/トリフルオロ酢酸反応溶液を得た。メタノール溶出)を用いて精製して、化合物10として黄色結晶を得た。mg(収率94%)であった。COCH2CH2*CH2*CH2*)であった。1142.6[(M+Na)2+]であった。【0132】また、得られた化合物10は、ESI-MS(positive)m/z=1120.62[M+H]+であり、一般式(13)にて化合物10として示す構造を有していることを確認した。NMR測定を行い、得られたNMRデータからも、上記化合物10として示す構造を有していることを確認した。【0133】〔実施例2・リガンドの合成〕実施例1にて得られたリンカー化合物(化合物10)を用いて、前記一般式(3)にて表される構造を備えているリガンドを以下の手順にて合成した。【0134】下記一般式(14)にて示すように、溶媒として、水:酢酸(AcOH):メタノール=12:1:15(5%の酢酸溶液、pH4)を用い、上記化合物10に対して、9当量のマルトースを加えて、室温にて1.5日間撹拌した。4単位のシッフ塩基が形成されたことを確認した後、還元剤として20当量のNaBH3CNを2回に分けて加え、室温にて4日間撹拌し、還元アミノ化反応を行った。得られた化合物を、HP-20(ダイアイオン)を用いて精製し、本発明のリガンドとして化合物11を得た(収率89%)。この化合物11は、マルトースが5単位~7単位集合してなる混合物として得られた。【0135】【化18】【0136】〔実施例3・リガンドの合成〕実施例2にて得られたリンカー化合物(化合物10)を用いて、前記一般式(5)にて表される構造を備えているリガンドを以下の手順にて合成した。【0137】下記一般式(15)にて示すように、マルトースに代えて、前記一般式(8)にて表される糖分子を用いた以外は、実施例2と同様に操作を行い、化合物12を得た。【0138】【化19】【0139】具体的に化合物12を得るために、以下の操作を行った。mL)に溶解させ室温で2日撹拌した。μmol)を加えて室温で終夜撹拌し、還元した。vol.)混合溶液]を用いて精製し、254nmでのUV吸収が認められた画分を集めて濃縮し、残渣を凍結乾燥させた。mL)を用いて脱塩し、水/メタノール=1/1で溶出させた画分を集めて濃縮し、凍結乾燥させた。mL)を用いて再度脱塩し、254nmでのUV吸収が認められた画分を集めて濃縮し、凍結乾燥させて、化合物12として白色結晶を得た。mg(収率42%)であった。COCH2CH2CH2*CH2)であった。【0141】このように、重水(D2O)中で500MHzでNMR測定を行って目的物を同定した。集合化度はNMRのイズロン酸部分の1位プロトンと、リンカー構造内の芳香族プロトン(16Hを基準)の強度比から計算した。両者の強度比は4.1:16となり、GlcNS6S-IdoA2S-Glcが平均して4.1分子集合していると見積もった。GlcNS6S-IdoA2S-Glcがn分子集合した化合物の分子量(Mw)は、化合物10の分子量1120.4とGlcNS6S-IdoA2S-Glcが1分子集合する際の分子量増加840.97とを用いて、式▲6▼のように表される。(式▲6▼)上式▲6▼にn=4.1を代入し、分子量4568.4を得て、これを基に収率を計算すると上記のように42%と求められた。【0143】〔実施例4・リガンドの合成〕実施例1で得られたリンカー化合物である化合物10(以降ビオチンリンカー10と呼ぶ)に関して、糖分子の集合度の違いによるレクチンとの相互作用をSPR測定するために、リガンドを合成した。糖分子の単位を定めていないリガンドの合成)ビオチンリンカー10を用いて糖分子を集合化させリガンドを得た。ビオチンリンカー10はメタノールには溶解するが水には不溶なため、糖を集合させる還元アミノ化反応の溶媒は、水、酢酸、メタノールの混合溶媒とし、pH4の条件で反応を行った。【0145】初めに、ビオチンリンカー10に集合させる糖分子としてグルコースを選択し、下記一般式(19)おいて化合物16にて表されるリガンドを以下の手順にて合成した。44μmol)のグルコースを用い、両者を混合溶媒に溶解させて室温で終夜撹拌し、ビオチンリンカー10/グルコース反応溶液を得た。反応の追跡はESI-MS測定を行った。反応中の上記ビオチンリンカー10/グルコース反応溶液を少量取り出しメタノールで希釈したサンプルを測定して、シッフ塩基の形成を確認したところ、この段階では大部分のビオチンリンカー10はアミノ基が遊離のままで存在し、シッフ塩基の生成率は小さかった。そこで上記ビオチンリンカー10/グルコース反応溶液に、グルコースを順次追加し、最終的に28当量のグルコースを反応させると、ESI-MS測定の結果、ビオチンリンカー10は、シッフ塩基の形で存在していることが分かった。ビオチンリンカー10に4残基あるアミノ基すべてがシッフ塩基になったわけではなく、それ以外に3、または2、または1残基のアミノ基だけがシッフ塩基になった化合物も存在していた。HP-20(商品名)を用いて、還元したビオチンリンカー10/グルコース反応溶液を精製して、本発明のリガンドとして化合物16を得た。【0148】得られた化合物16をESI-MS測定したところ、グルコースが7または8分子集合した化合物が合成されていたことが分かった。これはグルコースを大過剰に加えたため、シッフ塩基が還元されて生じた2級アミノ基に、さらにグルコースが反応したためである。ESI-MS測定の結果から、上記化合物16は、グルコースを7または8単位(分子)有するリガンドの混合物であることがわかった。得られた上記化合物16の収率は、化合物が8分子集合体であると仮定した場合、42%である。この化合物16を以下8-Glcと略称する。【0149】【化20】【0150】化合物16を得るために、具体的に次のような操作を行った。μmol)を加えて終夜撹拌し、ビオチンリンカー10/グルコース反応溶液を得た。μmol)を加えて室温で終夜撹拌し、還元反応させた。mL)を用いて精製し、水/メタノール=1/1で溶出させた画分を集めて濃縮し、凍結乾燥させて、化合物16として白色結晶を得た。8置換体として計算)であった。COCH2CH2*CH2CH2)であった。1135.0[(M7+2H)2+]であった。グルコースを8分子有するリガンドの分子量である。【0152】次に、ビオチンリンカー10にマルトースを集合化させリガンドを得た。【0153】実施例1で得られたビオチンリンカー10を用いて、前記一般式(14)にて表される構造を備えているリガンドを以下の手順にて合成した。【0154】上記一般式(14)にて示すように、マルトースの当量(始め9当量さらに9当量用)を用いた以外は、上記実施例2と同様に操作を行い、本発明のリガンドとして化合物11を得た。【0155】得られた化合物11中のマルトースの集合化度は、その混合物のNMRを測定し、マルトース非還元末端1位プロトンとリンカー内の芳香族プロトン(16Hを基準)との強度比から計算した。両者の強度比は5.3:16となり、マルトースが平均して5.3分子集合していると見積もった。マルトースがn分子集合した化合物の分子量(Mw)はビオチンリンカー10の分子量1120.4とマルトースが1分子集合する際の分子量増加326.3とを用いて、下記の式▲1▼のように表される。(式▲1▼)上記式▲1▼にn=5.3を代入し、分子量2849.8を得て、これを基に上記化合物11の収率を計算すると、88%と求められた。この化合物11を以下5.3-Malと略称する。【0157】化合物11を得るために、具体的に次のような操作を行った。μmol)を加えて室温で終夜撹拌し、ビオチンリンカー10/マルトース反応溶液を得た。μmol)を加えて室温で終夜撹拌し還元した。mL)を用いて精製し、水/メタノール=1/1で溶出させた画分を集めて濃縮し、残渣を凍結乾燥させて、化合物11として白色結晶を得た。5.3置換体として換算)であった。COCH2CH2CH2*CH2)であった。1376.9[(M6+2H)2+]であった。マルトースを8分子有するリガンドの分子量である。糖分子が4単位のリガンドの合成)上記では集合させる糖をビオチンリンカー10に対して大過剰に加えたために、必要以上の糖が集合した不均一な集合体が得られた。そこで目的とする糖分子が4単位(分子)のリガンドを得るために、加える糖分子の当量を調製した。ここでは、集合化させる糖分子として、グルコース、マルトース、ラクトースの3種類を選択した。【0160】初めに、実施例1にて得られたビオチンリンカー10を用いて、前記一般式(16)にてYがOで表される構造を備えているリガンドを以下の手順にて合成した。【0161】下記一般式(20)に示すように、グルコースをビオチンリンカー10に対してまず6当量加え、グルコースを順次加え合計で12当量加えたとき、未反応のリンカーがまだ残存しても還元剤を加えた以外は、上記実施例4の(4-1)と同様に操作を行い、本発明のリガンドとして化合物19を得た。【0162】【化21】【0163】終夜還元したビオチンリンカー10/グルコース反応溶液を、HP-20を用いて同様に精製して得られた生成物は、ESI-MS測定の結果、グルコースが4または5分子集合した化合物の混合物であることが確認された。グルコースの集合化度はこの生成物のNMRを測定し、グルコース還元体であるグルシトールの1位プロトンとリンカー内の芳香族プロトン(16Hを基準)の強度比から計算した。両者の強度比は4.2:16となり、グルコースが平均して4.2分子集合していると見積もった。グルコースがn分子集合した化合物の分子量(Mw)はビオチンリンカーの分子量1120.4とグルコースが1分子集合した際の分子量増加164.1を用いて式▲2▼のように表される。(式▲2▼)上記(式▲2▼)にn=4.2を代入し分子量1809.2を得て、これを基に計算すると、化合物19の収率は24%と求められた。収率が低いのはHP-20を用いた精製の際に損失があったためである。このように当量を調整することでグルコースがほぼ4分子集合した化合物を合成することができた。以下、末端にグルシトール型の化合物を4.2分子持つ化合物19を4-Glcと略称する。【0165】化合物19を得るために、具体的に次のような操作を行った。mL)に溶解させ、室温で8時間撹拌し、ビオチンリンカー10/グルコース反応溶液を得た。mmol)を加えて室温で終夜撹拌し、還元した。mL)を用いて精製し、メタノールで溶出させた画分を集めて濃縮し、残渣を凍結乾燥させて、化合物19として白色結晶を得た。mg(収率35%)であった。COCH2CH2CH2CH2*)であった。911.4[(M+2Na)2+]であった。【0167】次に、実施例1にて得られたビオチンリンカー10を用いて、前記一般式(17)にてYがOで表される構造を備えているリガンドを以下の手順にて合成した。【0168】上記一般式(20)に示すように、グルコースに変えてマルトースを8当量用いた以外は、上記実施例4の(4-1)と同様に操作を行い、本発明のリガンドとして化合物20を得た。得られた化合物20は、そのNMRにおいて末端グルコース1位プロトンと、芳香族プロトンの強度比が4.1:16となり、平均してマルトースが4.1分子集合した化合物であると見積もられた。化合物20の収率は上記(式▲1▼)に集合化度4.1を代入して化合物19の場合と同様に計算すると、69%と求められた。以下、末端にα-グルコースを4.1分子持つ化合物20を4-Malと略称する。【0169】化合物20を得るために、具体的に次のような操作を行った。mL)に溶解させて、室温で9時間撹拌し、ビオチンリンカー10/マルトース反応溶液を得た。)を加えて室温で終夜撹拌し、還元させた。mL)を用いて精製し、水/メタノール=1/1及びメタノールで溶出された画分を集めて濃縮し、残渣を凍結乾燥させて、化合物20として白色結晶を得た。mg(収率70%)であった。COCH2CH2CH2CH2*)であった。817.0[(M+3H)3+]であった。