いずれかまたは両方を用いることができる。動植物性粉末、タルク、カオリン、ベントナイト、ゼオライト、珪藻土、ホワイトカーボン、クレー、アルミナ、炭酸カルシウム、塩化カリウム、硫安などの鉱物性粉末が挙げられる。N-メチル-2-ピロリドンなどのアミド類、脂肪酸のグリセリンエステルなどのエステル類、大豆油、ナタネ油などの植物油が挙げられる。して、例えば、澱粉、デキストリン、セルロース、メチルセルロース、エチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルデンプン、プルラン、アルギン酸ナトリウム、アルギン酸アンモニウム、アルギン酸プロピレングリコールエステル、グアーガム、ローカストビーンガム、アラビアゴム、キサンタンガム、ゼラチン、カゼイン、ポリビニルアルコール、ポリエチレンオキサイド、ポリエチレングリコール、エチレン・プロピレンブロックポリマー、ポリアクリル酸ナトリウム、ポリビニルピロリドンなどが挙げられる。【0052】本防除剤の剤型は、特に限定されない。フロアブル剤、顆粒水和剤、エアゾール剤、ペースト剤、油剤、乳濁剤などの形態を適用できる。マイコウイルス生産方法は、マイコウイルスを含有する植物病害真菌を液体培地などで培養し、その培養上清からマイコウイルスを回収する手順を少なくとも含むものを全て包含する。【0054】上述の通り、本発明に係るマイコウイルスは、宿主菌の細胞外にも存在しうる。従って、例えば、マイコウイルスが感染した植物病害真菌を液体培地などで培養し、遠心分離により菌体を分離した後、その培養上清からウイルスを分離・回収することにより、簡易かつ比較的大量にウイルスを回収できる。【0055】但し、本発明に係るマイコウイルスは、この生産方法により得られたものに狭く限定されない。マイコウイルスを内在するイネいもち病菌から分離・回収して取得したものも、本発明に広く包含される。上述の通り、例えば、本発明に係るマイコウイルスを特定の植物病害真菌に感染などさせることにより、その宿主菌の生育などを抑制し、その菌を弱毒化させることができる。マイコウイルスの感染手段については、上述と同様の方法を採用できる。本発明に係る植物病害防除方法は、上述のイネいもち病防除剤を特定の植物(イネなど)に付加する工程を少なくとも含むものを全て包含する。【0058】植物に防除剤を付加させる手段として、例えば、防除剤を葉の表面又は裏面に塗布する方法、所定の担体などを用いて防除剤を葉の表面又は裏面に付着させる方法、防除剤を葉に散布又は供給する方法などが挙げられる。する薬剤や肥料などの使用量、種類などの種々の条件に応じて、適宜選択すればよい。【0060】例えば、1×103~1×1010個/mLに調整したイネいもち病菌弱毒菌株の分生子含有液を一葉当たり1~1,000mL噴霧又は供給することにより、また、葉1mm2当たり1×103~1×1010個、イネいもち病菌弱毒菌株の分生子を葉表面又は裏面に塗布する又は付着させることにより、植物病害を抑制できる可能性がある。【0061】本発明は、真菌を主な病因とする全ての植物病害に適用できる可能性がある。適用可能性のある植物病害として、例えば、以下のものが挙げられる(それらに限定されない)。graminis」)。brassicaeなど」)。【実施例1】【0064】実施例1では、イネいもち病菌57株から内在性二本鎖RNAの検出を試みた。NucleaseによりDNAと一本鎖核酸を選択的に分解し、菌体内在性の二本鎖RNA液を得た。1%アガロースゲルで、20V、18時間、電気泳動し、エチジウムブロマイドで染色した。【0066】その結果、57株のうち、11株で二本鎖RNAのバンドを検出した。そのうち、7株では2.8~3.6kbに4成分のバンドを、3株では1.0~2.6kbに3成分のバンドを、1株では1.0~3.6kbに8成分のバンドを、それぞれ検出した。【0067】なお、図1はイネいもち病菌57株のうち9株についての二本鎖RNA検出結果を表す電気泳動写真である。図1中、レーン1はDNAマーカーをアプライしたもの、レーン2からレーン10は菌体から調製したサンプルをアプライしたものである。図1において、レーン6及びレーン8では二本鎖RNAのバンドを検出しなかったのに対し、レーン2、レーン3、レーン4、レーン5、及びレーン10では2.8~3.6kbに4成分のバンドを、レーン7では1.0~2.6kbに3成分のバンドを、レーン9では1.0~3.6kbに8成分のバンドを、それぞれ検出した。【0068】上述の実験結果において、一つの株から複数のバンドが検出された点、及び、二本鎖RNAの長さを考慮すると、イネいもち病菌11株から検出された二本鎖RNAは、マイコウイルスを構成する二本鎖RNAである可能性が高い。本実施例の結果は、これらのイネいもち病菌株に、新規なマイコウイルスが内在することを示唆する。【実施例2】【0069】実施例2では、実施例1の結果に基づき、二本鎖RNAを内在する菌株と内在しない菌株の成長速度を比較した。【0070】実施例1において、内在性二本鎖RNAを検出しなかった菌株と検出した菌株について、それぞれ、PDA培地で培養し、培養開始から6日後及び10日後にコロニーを観察した。RNAを検出した菌株では、検出しなかった菌株よりも成長が遅く、菌糸が非同心円状に成長し、色素沈着も不均一であった。気中菌糸の異常な発達が見られ、セクター形成や溶菌も観察された。【0072】即ち、二本鎖RNAを内在する菌株では、内在しない菌株と比較して生育抑制が見られた。これらの実験結果は、実施例1で得られた二本鎖RNA(マイコウイルス)が、イネいもち病菌の生育抑制因子(弱毒化因子)であることを示唆する。【実施例3】【0073】実施例3では、二本鎖RNAを内在する菌株を低濃度のサイクロヘキシミド(タンパク質合成阻害剤)で処理し、マイコウイルス治癒株の作製を試みた。【0074】サイクロヘキシミドを0.25~0.50μg/ml加えたYGプレートを作製し、そこに実施例2で培養した菌株(内在性二本鎖RNAを検出した菌株)を移植した。形成されたコロニーのうち、正常な生育に回復した部位を、さらに、別のYGプレートに移植し、サイクロヘキシミド処理菌株を得た。その結果、サイクロヘキシミド処理菌株は、通常のイネいもち病菌株よりも良好な生育を示した。【0075】次に、得られたサイクロヘキシミド処理菌株から、実施例1と同様の方法で二本鎖RNAを抽出し、電気泳動により、二本鎖RNAのバンドの検出を試みた。その結果、サイクロヘキシミド処理菌株から二本鎖RNAのバンドが検出されなかった。【0076】また、別手法でも、マイコウイルス治癒菌株を作製し、同様の実験を行った。【0077】実施例2で培養した菌株をPDA培地又はオートミール培地上で約1~3週間生育させた後、分生子を単離し、その分生子を一つずつ新しいPDA培地に移植し、マイコウイルスが脱落した菌コロニーを選抜し、マイコウイルス治癒菌株とした。【0078】その結果、その治癒菌株でも、ウイルス保持菌株よりも明らかに生育が良好となった。上記と同様、電気泳動により、二本鎖RNAのバンドの検出を試みた結果、治癒菌株からは二本鎖RNAのバンドが検出されなかった。【0079】これらの結果は、イネいもち病菌に内在した二本鎖RNAがマイコウイルスであること、及び、このマイコウイルスがイネいもち病菌の生育抑制因子であることを示す。【実施例4】【0080】実施例4では、本発明に係るマイコウイルスがイネいもち病菌の菌体外にも存在するかどうかを調べた。【0081】実施例1において2.8~3.6kbに4成分の内在性二本鎖RNAのバンドを検出した菌株のうち、3株を液体培地に移植・培養した後、培養液を遠心し、その培養上清を回収した。次に、得られた培養上清を1%アガロースゲルで、20V、18時間、電気泳動し、エチジウムブロマイドで染色した。【0082】その結果、これらの菌株の培養上清中にも、菌内在性二本鎖RNAと同じ位置に、二本鎖RNAのバンドを検出した。【0083】この結果は、本発明に係るマイコウイルスが、イネいもち病菌の菌体内だけでなく、菌体外にも存在しうることを示す。【実施例5】【0084】実施例5では、菌体外に存在するマイコウイルスに、正常の菌株(マイコウイルスを保持しない菌株)に対する感染能力があるかどうかについて調べた。【0085】まず、実施例1において2.8~3.6kbに4成分以上の内在性二本鎖RNAのバンドを検出した菌株を液体培地に移植し、4週間培養した後、培養液を遠心し、その培養上清を回収した。この培養上清について、実施例4と同様の手順で、1%アガロースゲルで電気泳動した結果、二本鎖RNAのバンドを確認できた。得られた培養上清については、0.22μLのフィルターを用いてろ過滅菌を行った。【0086】次に、100mlコルベンにYG培地50mlを入れ、そこにイネいもち病菌の正常菌株(マイコウイルスを保持しない菌株)を接種し、3日間培養した後、得られた培養上清を500μL添加し、菌体の生育を観察した。【0087】その結果、観察3日目において、培養上清を添加していない菌株では、菌糸の先端がまっすぐに伸び、正常の生育を示したのに対し、培養上清を添加した菌株では、菌糸の先端があまり伸びずに絡まった状態になった。【0088】この結果は、培養上清中に存在するマイコウイルスがイネいもち病菌正常菌株に感染し、その生育を抑制したためであると考える。本実験結果は、菌体外に存在するマイコウイルスに、正常の菌株に対する感染能力があることを示唆する。【実施例6】【0089】実施例6では、マイコウイルスが感染したイネいもち病菌株について、その分生子数を測定した。【0090】実施例1において2.8~3.6kbに4成分以上の内在性二本鎖RNAのバンドを検出した菌株をYGプレートに移植し、2週間培養した後、直径4mmのコルクボーラーで菌体を抜き取り、採取した。【0091】次に、1.5mlチューブに、5%グリセロールを入れ、採取した菌体を入れ、5分間混和・懸濁した。血球計算盤を用いて、懸濁液中に存在する分生子数を計測した。【0092】その結果、イネいもち病菌の正常菌株(コントロール、マイコウイルスを保持しない菌株)では分生子数が33×104個/mLであったのに対し、マイコウイルスを内在するイネいもち病菌株では分生子数が1×104個/mL以下であった。【0093】この結果は、本発明に係るマイコウイルスが、宿主菌の分生子形成を抑制することを示す。本発明が、植物病害菌の増殖を抑制するとともに、その伝播・感染拡大なども抑制できる可能性を示唆する。【実施例7】【0094】実施例7では、イネいもち病菌から抽出された二本鎖RNAの塩基配列を解析した。はじめに、二本鎖RNAの抽出・精製を以下の手順で行った。【0096】実施例1において二本鎖RNAが検出された一つの菌株について、液体窒素で凍結後摩砕し、抽出バッファー(2×STE、1%SDS、10mMβ-メルカプトエタノール)を菌体0.1gに対し1ml添加した。該溶液に、PCI(50%フェノール、48%クロロホルム、2%イソアミルアルコール)を抽出バッファーと等量加え、室温で30分間よく攪拌し、遠心分離(8,000rpm、20分間、室温)し、その上清(水相)を採取した。次に、採取した上清に等量の100%エタノールを加え(最終濃度で、50%エタノール/1×STE溶液)、エタノール沈殿を行った。急冷し、遠心分離(8,000rpm、10分間、4°C)し、その上清を採取した。その上清に繊維性セルロース充填剤(商品名「CF11」、ワットマン社製)を加え、30~60分間、4°C条件下で攪拌した後、カラム(直径1.5cm、高さ12cm)に充填した。【0098】次に、カラムに17.5%エタノール/1×STE溶液を供給し、非吸着画分を除去した後、1×STE溶液を供給し、吸着画分を溶出・回収した。溶出画分中の混入DNAを除去するため、DNaseI(タカラバイオ株式会社製)を25U加え、37°C、30分間反応させた後、エタノール沈殿を行い、目的の二本鎖RNAを得た。続いて、得られた二本鎖RNAを鋳型としてcDNAを合成した後、cDNAクローニングを行った。