MAFF211272株より単離され、RSA1と命名されたバクテリオファージ。請求項1記載のバクテリオファージを有効成分として含有する青枯れ病の防除剤。請求項1記載のバクテリオファージを土壌に添加することを特徴とする土壌の改良方法。solanacearum))に対して溶菌性を示すバクテリオファージ(以下、単に「ファージ」とも言う)、及びその利用に関する。【背景技術】【0002】青枯れ病菌は、トマト、ナス、タバコなどに青枯れ病(立ち枯れ病)を引き起こす土壌細菌である。比較的温暖な地域を中心に世界中に分布し、ナス科やマメ科の他、経済的に重要な農作物多種を含む33科200種以上の植物に感染し、甚大な被害をもたらす。一度汚染された土壌から病原菌を除去することはきわめて困難である。考案されているが、その発生を安定的に抑えることはほとんどできていない。【0003】また、植物細菌病に関しては、病原細菌を溶菌するバクテリオファージを利用した防除方法が、病原細菌を選択的に溶菌して防除できる手段として古くから期待され、青枯れ病についても、P4282ファージ、PK101ファージ等の青枯れ病菌感染性バクテリオファージが報告されている(非特許文献1、非特許文献2)。最近、本発明者らは、青枯れ病菌に対して溶菌性を示し、その宿主特異性から3種類に大別される十数種のバクテリオファージを自然界より単離することに成功し、先に特許出願している(特許文献1)。多くの系統が存在する青枯れ病菌を有効に防除するには十分なものではない。131:11-21【発明の開示】【発明が解決しようとする課題】【0004】本発明は、新規な青枯れ病菌感染性バクテリオファージを用いて、青枯れ病を効果的に防除する手段を提供することを目的とする。solanacearum)より、青枯れ病菌に感染性の広い溶菌スペクトルを示すバクテリオファージを単離することに成功し、これを用いることにより青枯れ病を効果的に防除できることを見出した。【0006】すなわち、本発明は以下の(1)~(6)に係るものである。ソラナセラムのC-319株、M4S株、Ps29株、Ps65株、Ps72株、Ps74株、MAFF106603株、MAFF106611株、MAFF211270株、MAFF211271株、MAFF211272株、MAFF301556株、MAFF301558株、MAFF730138株及びMAFF730139株のすべてに溶菌性を示すバクテリオファージ。(2)上記バクテリオファージを有効成分として含有する青枯れ病の防除剤。(3)上記バクテリオファージを有効成分として含有する土壌改良剤。(4)上記バクテリオファージを植物又は土壌に散布することを特徴とする青枯れ病の防除方法。(5)上記バクテリオファージを水耕栽培又は溶液栽培の培養液に添加することを特徴とする青枯れ病の防除方法。(6)上記バクテリオファージを土壌に添加することを特徴とする土壌の改良方法。【発明の効果】【0007】本発明のバクテリオファージは、公知の青枯れ病菌感染性バクテリオファージに比べて、広い作用スペクトルを示す。従って、これを用いることにより、多くの青枯れ病に有効な防除剤を提供することができ、また青枯れ病菌で汚染された土壌の改良に有効な土壌改良剤を提供することができる。solanacearum)から単離されるものである。solanacearum)は、トマト、ナス、タバコなど200種以上の農作物に対して、青枯れ病(立ち枯れ病)を引き起こす多犯性の土壌伝染細菌である。本明細書においては、「青枯れ病菌」とも云う。solanacearum)のC-319株、M4S株、Ps29株、Ps65株、Ps72株、Ps74株、MAFF106603株、MAFF106611株、MAFF211270株、MAFF211271株、MAFF211272株、MAFF301556株、MAFF301558株、MAFF730138株及びMAFF730139株のすべてに溶菌性を示すという、宿主特異性を有する。斯かる宿主特異性は、後記実施例3に示すように、特開2005-278513号公報(特許文献1)に記載のタイプ1、タイプ2及びタイプ3に属するバクテリオファージとは、異なるものである。【0010】ここで、M4S株は、タバコより分離されたレース1の菌株であり、前記非特許文献1に記載の菌株である。265:95-101に記載の菌株である。C-319株、Ps65株、Ps72株及びPs74株は、タバコより分離されたレース1の菌株である。C-319株、M4S株、Ps29株、Ps65株、Ps72株及びPs74株は、山陰建設工業(島根県出雲市)より分譲された菌株である。ジーンバンクより分譲が可能である。MAFF211272株より単離されるものが好ましい。ジーンバンクより分譲が可能である。このうち、「RSA1」と命名されたバクテリオファージが特に好ましい。RSA1は、本出願人において分譲可能な状態で保管されている。AP-210(平成18年2月22日))したが、拒否された。【0012】以下、バクテリオファージRSA1が有するこの他の特徴について説明する。図1に示すとおり、バクテリオファージRSA1は、正二十面体型の頭部と線上の尾部とから構成されるものである。これは、前記非特許文献1に記載のP4282ファージとは、P4282ファージは頭部の直径が約70nm、尾部が約20nmであるのに対して、RSA1は頭部の直径が約40nm、尾部が約100nmである点で異なる。バクテリオファージRSA1のゲノムは、2本鎖DNAよりなり、制限酵素(SmaI)処理による断片のパターンは、図2に示すとおりであり、特許文献1に記載のタイプ1~3のバクテリオファージとは異なる(実施例5)。電気泳動により決定したRSA1のゲノムサイズは、約39Kbpであり(図2)、非特許文献2のPK101ファージ(約35Kbp)、とは異なる。solanacearum)のゲノム中に溶原化され保持される可能性を示している。以上より、バクテリオファージRSA1は、文献未記載の新規な青枯れ病菌感染性バクテリオファージであると云える。【0014】本発明のバクテリオファージは、プラークアッセイ・分離方法を用いることにより、青枯れ病菌より分離することができる。agarに混合して、CPG寒天培地上に広げる。0.2μm孔のフィルター等で濾過滅菌することにより、バクテリオファージRSA1を分離することができる。【0015】本発明のバクテリオファージは、一般的なバクテリオファージと同様の方法で増殖させることができる。solanacearum)を培養し、十分に増殖させた後、本発明のバクテリオファージを接種し、培養を継続することにより、大量のファージ溶液を得ることができる。solanacearum)の培養は、定法に従って行うことができ、例えば、CPG液体培地などを用い、温度27~37°Cで旋回又は振とう培養すればよい。solanacearum)が十分増殖している時期であれば特に限定されないが、菌体濃度が1×104~1×108cfu/ml程度まで増殖した時期に接種するのが望ましい。ファージ接種から6~12時間の培養で、ほぼすべての菌が溶菌し、ファージ溶液を得ることができる。【0016】本発明のバクテリオファージは、上述したように、公知の青枯れ病菌感染性バクテリオファージに比べて、広い作用スペクトルを有し(実施例3)、圃場や水耕栽培等に適用した場合に、優れた青枯れ病防除効果を発揮する(実施例8)。従って、このバクテリオファージは、青枯れ病の防除、青枯れ病菌で汚染された土壌の改良及び水耕栽培や溶液栽培の培養液の当該細菌の駆除等に利用できる。ここでいう「防除」とは、感染した青枯れ病菌の「駆除」と感染の「予防」の双方を含む意味である。【0017】本発明のバクテリオファージを青枯れ病の防除剤又は土壌改良剤として利用する場合、上述した増殖方法によって得られるファージ溶液、あるいはファージ溶液を遠心分離等によって培養残渣と分離したものを使用してもよいが、展着剤を配合した溶液として使用しても、植物体への付着をよくすることができ好ましい。微生物製剤において一般的に使用される固体担体又は液体担体を配合して、水和剤、粉剤、カプセル剤等の製剤形態に調製したものを使用してもよい。pfu/mlとするのが更に好ましい。【0019】防除の対象となる植物としては、ジャガイモ、ナス、トマト、トウガラシ、ピーマン、タバコ、シソ、ダイコン、イチゴ、バナナ、マーガレット、キク、ヒマワリ等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。solanacearum)によって引き起こされる病害であれば限定されず、例えば、ナス科植物の青枯れ病、タバコ立枯れ病などを挙げることができる。pfuのファージを散布するのが好適である。水耕栽培又は溶液栽培での防除に用いる場合は、ファージを1×103~1×1010pfu/mlになるように培養液に添加するのが好ましい。【0021】また、本発明の土壌改良剤を土壌に添加する場合、その添加量は特に限定されないが、通常、土壌1kg当り1×1010~1×1012pfuのファージを添加するのが好適である。【実施例】【0022】以下、実施例により本発明を更に詳しく説明する。Ltd.などの標準的なプロトコール集に記載の方法、あるいはそれを修飾したり、改変した方法を用いる。市販の試薬キットや測定装置を用いる場合には、特に説明が無い場合、それらに添付のプロトコールを用いる。ポリペプトン10.0g、カザミノ酸1.0g、及びグルコース5.0gを、蒸留水1,000mlに加えて、CPG液体培地を調製した。このCPG液体培地を用いて、青枯れ病菌の各菌株を28°Cで旋回培養(200rpm)又は振とう培養(300rpm)した。プラークアッセイ・分離方法により青枯れ病菌MAFF211272株よりバクテリオファージRSA1を分離した。agarに混合して、CPG寒天培地(上記CPG液体培地に17.0gの寒天を添加した培地)上に広げた。28°Cで12時間~48時間培養後、プラークを検出した。0.2μm孔のフィルターで濾過滅菌し、バクテリオファージRSA1を分離した。MAFF211272株に溶原化していた可能性がある。AP-210(平成18年2月22日))、平成18年3月28日に受託の拒否がなされた。バクテリオファージRSA1の青枯れ病菌の各菌株に対する宿主特異性をプラークアッセイ法によって調べた。agarに混合してCPG寒天培地上に広げ、プラークアッセイを行った。solanacearum)C319株、M4S株、Ps29株、Ps65株、Ps72株、Ps74株、MAFF106603株、MAFF106611株、MAFF211270株、MAFF211271株、MAFF211272株、MAFF301556株、MAFF301558株、MAFF730138株、MAFF730139株を用いた。本発明者が青枯れ病菌からすでに単離している3種類のバクテリオファージ(特許文献1)との相同性を比較・検討するために、L-type(タイプ1ファージ)、M-type(タイプ3ファージ)、S-type(タイプ2ファージ)のバクテリオファージについても、同様の実験を行った。【0026】【表1】【0027】表1に示すように、バクテリオファージRSA1は検定に用いた全ての菌株を宿主とし、すでに単離している3種類のバクテリオファージ(特許文献1)とは宿主特異性が異なっていた。バクテリオファージRSA1の形態を透過型電子顕微鏡を用いて観察した。実施例2で示すバクテリオファージRSA1の濾過滅菌液10mlを、40,000gで1時間、遠心分離し、バクテリオファージRSA1を沈殿として得た。この沈殿を0.01mol/lのMgSO4を含む100μlのPBSに懸濁した。この結果を図1に示す。【0029】図1に示すように、バクテリオファージRSA1は正二十面体型の頭部と線状の尾部から構成されていた。尾部の末端は太くなっていた。この形態は、非特許文献1で報告されているものとは異なっていた。solanacearum)に感染する類似ファージの報告は文献等では見あたらない。バクテリオファージRSA1より核酸を単離し解析した。RSA1のゲノムは2本鎖DNAよりなり、電気泳動でファージRSA1のゲノムサイズを決定したところ、図2に示すように約39kbpであった。RSA1より精製した未処理のDNA(図2A)、SmaI消化処理後のDNA(図2B)の電気泳動パターンより、RSA1のゲノムを解析したところ(図2Aにおいては、低濃度アガロースゲルを用いて電気泳動を行うことで、20Kbp以上のDNAを分離)、断片のパターンは、特許文献1及び非特許文献2のファージとは異なっていた(図2)。RSA1の塩基配列を決定したところ、サイズは38,820bpであった。solanacearum)GMI1000株(全ゲノムが決定されている)のゲノム中に、ファージRSA1の配列と非常に高い相同性を示す領域が存在することが判明した。solanacearum)のゲノム中に溶原化され保持される可能性を示している。solanacearum)M4S株のシングルコロニーをCPG液体培地50mlに植菌し、28°Cにて24~48時間旋回培養した。cfu/ml)程度まで28°Cにて4~6時間旋回培養(120rpm)した。infectionの略、細胞一個あたりに対するファージの数)=0.0001~0.1になるようあらかじめ希釈しておいたファージ液を10~100ml添加した。ファージの希釈には、実施例1に示すCPG液体培地に、MgSO4が終濃度0.01mol/lになるように加えた溶液を用いた。28°Cにて1時間静置後、28°Cにて10時間以上旋回培養し(120rpm)、溶菌させることで大量のバクテリオファージ液を調製した。pfu/mlのファージRSA1を含んでいた。solanacearum)M4S株のシングルコロニーをCPG液体培地50mlに植菌し、28°Cにて24時間旋回培養した。cfu/ml)程度まで28°Cにて4~6時間旋回培養(200rpm)した。infectionの略、細胞一個あたりに対するファージの数)が0.01、0.001、0.0001になるよう感染させた。コントロールの試料にはファージを感染させなかった。28°Cにて30分間静置後、28°Cにて16時間、旋回培養し(200rpm)、2時間ごとにOD600を測定し、青枯れ病菌の増殖を記録した。【0034】ファージRSA1の添加により青枯れ病菌の増殖が有意に阻害された。増殖阻害の程度は、ファージ感染時のm.o.i.に依存し、m.o.i.が大きいほうが増殖阻害効果は強かった。圃場に散布する場合は圃場1平方メートル当り1×108~1×1012pfuのファージを散布する。土壌に混合して使用する場合は土壌1Kgあたり1×1010~1×1012pfuのファージを土壌に混合し使用する。ファージRSA1を用いて、水耕栽培又は溶液栽培での青枯れ病菌の防除を行う。水耕栽培又は溶液栽培で用いる培養液に、ファージRSA1を1×103~1×1010pfu/mlになるように添加し栽培する。スケールバーは100nmを示す。【図2】RSA1(Aφ)より精製したDNAの電気泳動パターンを示す写真である。図2A:RSA1より精製した未処理のDNA、図2B:SmaI消化処理後のDNA。λ、λ/StyI、λ/StyI+λ/BglII、λ/HindIII+φX174/HaeIIIで示す各レーンはサイズマーカー。ソラナセラムGMI1000株のゲノム配列の相同性を示す図。図3A:ファージRSA1(全長38.8kbp)のゲノムの塩基配列から得た物理地図。末端の○と□は、ファージゲノムDNAの両末端を表す。ソラナセラムGMI1000株のゲノムで相同性があり、対応する部分を示す。図3B上段:RSA1のゲノムが、青枯れ病菌中では両末端が結合し環状構造をとることを仮定したゲノムの構造を示す。ソラナセラムGMI1000株のゲノムの物理地図を示す。上段の数字:ファージRSA1の末端(○)からの距離をKbpで示したもの。下段の数字:GMI1000株のゲノムの末端(▲)からの距離をKbpで示したもの。【図4】バクテリオファージRSA1による青枯れ病菌の増殖阻害効果を示す図である。