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Análise da imunogenicidade e eficácia empregando-se as vacinas LBSap, Leishmune e Leish-Tec em uma plataforma de testes in vivo
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Zilda Sanches Castanho
1 UNIVERSIDADE FEDERAL DE OURO PRETO NÚCLEO DE PESQUISAS EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOTECNOLOGIA Análise da imunogenicidade e eficácia empregando-se as vacinas LBSap, Leishmune e Leish-Tec em uma plataforma de testes in vivo Ludmila Zanandreis de Mendonça Ouro Preto, MG 2013
2 UNIVERSIDADE FEDERAL DE OURO PRETO NÚCLEO DE PESQUISAS EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOTECNOLOGIA Análise da imunogenicidade e eficácia empregando-se as vacinas LBSap, Leishmune e Leish-Tec em uma plataforma de testes in vivo Ludmila Zanandreis de Mendonça Dissertação apresentada ao Programa de Pós- Graduação em Biotecnologia do Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas da Universidade Federal de Ouro Preto, como parte integrante dos requisitos para obtenção do Título de Mestre em Biotecnologia. Orientador: Prof. Rodolfo Cordeiro Giunchetti Laboratório de Biologia das Interações Celulares (ICB/UFMG) e Laboratório de Imunopatologia (NUPEB/UFOP). Co-Orientadores: Prof. Alexandre Barbosa Reis Laboratório de Imunopatologia (NUPEB/UFOP) Dr a. Denise da Silveira Lemos Giunchetti Laboratório de Imunogenômica de Parasitos (ICB/UFMG). Ouro Preto, MG 2013
3 M539a Mendonça, Ludmila Zanandreis de. Análise da imunogenicidade e eficácia empregando-se as vacinas LBSap, Leishmune, Leish-Tec em uma plataforma de testes in vivo [manuscrito] / Ludmila Zanandreis de Mendonça f.: il., color.; grafs.; tabs. Orientador: Prof. Dr. Rodolfo Cordeiro Giunchetti. Coorientadores: Prof. Dr. Alexandre Barbosa Reis. Profª Drª Denise Lemos Giunchetti. Dissertação (Mestrado) - Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia. Área de concentração: Biotecnologia Aplicada a Processos e ao Tratamento de Doenças. 1. Vacinas - Teses. 2. Imunoparasitologia - Teses. 3. Parasitologia - Teses. 4. Leishmaniose visceral - Teses. 5. Leishmania chagasi - Teses. I. Giunchetti, Rodolfo Cordeiro. II. Reis, Alexandre Barbosa. III. Giunchetti, Denise Lemos. IV. Universidade Federal de Ouro Preto. V. Título. CDU: : Catalogação: CDU: CDU:
5 Mendonça, L.Z. Colaboradores Ms. Bruno Mendes Roatt 1 Ms. Lucilene Aparecida Resende 1, 4 Ms. Mariana Ferreira Lanna 1, 4 Renata Alves de Oliveira e Castro 3 Ms. Rodrigo Dian O. A. Soares 1 Dra. Juliana de Assis Silva Gomes Estanislau 4 Dr. Márcio Sobreira Araújo 6 Dr. Olindo Assis Martins Filho 5 Dr. Rodrigo Corrêa Oliveira 6 Dra. Sandra Aparecida de Lima Moura 2 Dra. Simone Aparecida Resende 3 Dra. Walderez Ornelas Dutra Laboratório de Imunopatologia e 2 - Laboratório de Imunoparasitologia, Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas, Universidade Federal de Ouro Preto, Ouro Preto, Minas Gerais. 3 - Laboratório de Pesquisas Clínicas, Programa de Pós-Graduação de Ciências Farmacêuticas, Universidade Federal de Ouro Preto, Ouro Preto, Minas Gerais. 4 - Laboratório de Biologia das Interações Celulares, Departamento de Morfologia, Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte, Minas Gerais. 5 - Laboratório de Imunologia Celular e Molecular, Centro de Pesquisas René Rachou, Fundação Oswaldo Cruz, Belo Horizonte, Minas Gerais. 6 - Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração, Centro de Pesquisas René Rachou Fiocruz MG, Fundação Oswaldo Cruz, Belo Horizonte, Minas Gerais. III
6 Mendonça, L.Z. Suporte Financeiro Edital de Demanda Universal 01/2012 da Fundação de Amparo a Pesquisa de Minas Gerais (FAPEMIG) - Processo APQ Projeto: Análise comparativa de imunogenicidade e eficácia empregando-se o candidato vacinal KMP-11 e as vacinas LBSap, Leishmune, Leish-Tec em uma plataforma de testes in vivo; Edital Universal 14/2012 do Conselho Nacional de Pesquisa (CNPq) - Processo / Projeto: Estabelecimento da plataforma de testes destinada aos ensaios pré-clínicos vacinais contra leishmanioses; Universidade Federal de Minas Gerais (UFMG) Belo Horizonte, Minas Gerais; Universidade Federal de Ouro Preto (UFOP) Ouro Preto, Minas Gerais. IV
7 Mendonça, L.Z. Dedicatória Dedico este trabalho em especial ao meu pai, Nilton; a minha mãe, Denise (in memorian); a minha irmã, Larissa; a minha avó, Guilhermina e as minhas tias. V
8 Mendonça, L.Z. Prefácio Ele faria da queda um passo de dança, do medo uma escada, do sono uma ponte, da procura um encontro Fernando Sabino VI
9 Mendonça, L.Z. Agradecimentos Agradecimentos Agradeço a Deus por me iluminar a cada dia, pela saúde, por me dar força nos momentos de fraqueza e me fazer acreditar em dias melhores e crer que todo esforço vale a pena. Gostaria também de agradecer as pessoas que fizeram parte desta história: A minha família: meu pai que nunca poupou esforços para me ajudar e nesta caminhada esteve sempre do meu lado me dando apoio. Ele foi e está sendo o melhor pai que eu poderia ter. A minha mãe que sempre foi meu exemplo de superação, força e de pessoa. Sei que ela me iluminou em todas as situações que enfrentei neste período e estará sempre presente em meus pensamentos. A minha irmã que tanto me aconselhou, me deu apoio, carinho e puxões de orelha quando foi preciso. A minha avó que me ajudou nesta caminhada, nunca poupou esforços para me ver bem, sempre me ouviu e me apoiou em minhas decisões. Agradeço as minhas tias: Mônica, Gaida, Terezinha, Luisa e Silvana por estarem sempre tão presentes e pela constante preocupação com meu bem estar. Agradeço também minhas primas Mariana e Giovana e a todos os meus familiares. Minha família foi e sempre será o meu alicerce; A Lucilene e a Mariana, que tanto me ajudaram nos experimentos. Vocês foram fundamentais para a execução deste projeto. Obrigada pelo apoio, conselhos e momentos que nunca serão esquecidos, serei eternamente grata a vocês; A Aline, Natália e Gleise por tornarem esta caminhada mais leve, me fazendo ver a vida de outro ponto de vista, me ajudando nos momentos difíceis e me fazendo rir nos momentos de descontração; Ao Kelvinson por estar sempre disposto a ajudar e pelos momentos agradáveis; A Carolzinha, pela solidariedade, apoio e amizade; Ao Rodrigo e Bruno que me ajudaram em diversas etapas deste projeto, estavam sempre dispostos a tirar uma dúvida, discutir sobre os experimentos; A Denise, por me ajudar nos experimentos de citometria, na redação da dissertação e pelo exemplo de profissionalismo, conselhos e paciência; A Erica, Lilian e a todos os funcionários do biotério, que ajudaram na manutenção dos camundongos e sempre estiveram dispostos a nos ajudar; VII
10 Mendonça, L.Z. Agradecimentos Ao Josino e a todos do Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia e do Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas, por estarem sempre dispostos a nos atender e ajudar no que for preciso; A minha amiga Ana Claudia. Sem ela este mestrado não teria acontecido, obrigada por me acolher em Ouro Preto e pela amizade; A Renata Rocha, por me ajudar com os hemogramas; A Tânia por estar sempre disposta a nos ajudar e por me ensinar como trabalhar nas normas de biossegurança; A Renata e a Simone pela ajuda na parte experimental; Ao Maurício pelos conselhos, ajuda e momentos agradáveis; Agradeço ao João, Wendel, Diego, Paula, Jamille, Flávia, Fernando, Levi, Ana, Rory, Kátia, Juliana, Henrique, Maria Alice, Marina, Sandra, Leoneide, Laser, Dani, Maria e a todos que de alguma forma me auxiliaram nesta caminhada; Aos professores da Pós-Graduação: Luís, Denise, Simone, Teresinha, Marta, André, Evandro e Riva pelos ensinamentos compartilhados; Ao Alexandre, co-orientador deste projeto, pelos ensinamentos e por ter me dado a oportunidade de fazer parte do LIMP; Ao Rodolfo por tamanho ensinamento, por me fazer amadurecer tanto como pessoa como profissionalmente. Agradeço pela oportunidade, pela paciência e por tudo que ele fez por mim. Ele é um exemplo de pesquisador, sempre ético, profissional e solícito aos seus alunos. VIII
11 Mendonça, L.Z. Índice Índice Lista de figuras... XI Lista de diagrama e tabelas... XII Lista de abreviaturas e siglas... XIII Resumo... XV Abstract... XVI 1. Introdução Aspectos gerais relacionados à Leishmania e as leishmanioses Revisão de Literatura Fatores imunológicos relacionados a leismaniose visceral murina Modelos experimentais para vacinas anti-lv Adjuvantes em vacinas anti-leishmaniose visceral em modelos experimentais Estratégias imunoprofiláticas anti-leishmaniose visceral em modelos experimentais Justificativa Objetivos Objetivo Geral Objetivos Específicos Animais, Material e Métodos Desenho experimental Grupos experimentais e imunobiológicos empregados Avaliação da inocuidade dos imunobiológicos Desafio experimental Avaliação dos parâmetros hematológicos Imunofenotipagem, ex vivo, de leucócitos circulantes, por citometria de fluxo Estudo do perfil imunofenotípico ex vivo de leucócitos circulantes Análise, ex vivo, do fenótipo celular de leucócitos circulantes, por citometria de fluxo Análise Quantitativa da Carga Parasitária por Real-Time Polymerase Chain Reaction Extração do Deoxyribonucleic acid (DNA) de amostras de tecidos Construção de curvas-padrão para qpcr e reação de qpcr Análises estatísticas Resultados IX
12 Mendonça, L.Z. Índice 6.1 Avaliação do local de inóculo, comportamento e peso dos animais vacinados Avaliação dos parâmetros hematológicos Estudo do perfil imunofenotípico ex vivo de leucócitos circulantes Quantificação da carga parasitária tecidual por qpcr Resumo dos Resultados Discussão Conclusões Perspectivas Referências Bibliográficas Anexo X
13 Mendonça, L.Z. Lista de figuras Lista de figuras Figura 1: Análise da imunofenotipagem de leucócitos circulantes, pelo software Flow- Jo, para avaliação da população de linfócitos totais e suas subpopulações; células NK e monócitos Figura 2: Perfil hematológico de leucócitos circulantes de camundongos submetidos a diferentes protocolos vacinais: Controle (C), Leish-Tec (LT), Leishmune (LM) e LBSap em diferentes tempos: T0=antes da primeira imunização, T1=14 dias após 3º e última dose vacinal e T2=30 dias após a infecção por L. chagasi Figura 3: Percentual de leucócitos circulantes, obtidos através da imunofenotipagem por citometria de fluxo de leucócitos de camundongos submetidos a diferentes protocolos vacinais: Controle (C), Leish-Tec (LT), Leishmune (LM) e LBSap. T0=antes da primeira imunização, T1=14 dias após 3º e última dose vacinal e T2=30 dias após a infecção experimental por L. chagasi Figura 4: Percentual da razão dos valores de linfócitos T CD3 + e de linfócitos B CD19 + ; e valores da razão dos valores de linfócitos T CD4 + e linfócitos T CD8 + de camundongos submetidos a diferentes protocolos vacinais: Controle (C), Leish-Tec (LT), Leishmune (LM) e LBSap. T0=antes da primeira imunização, T1=14 dias após 3º e última dose vacinal e T2=30 dias após a infecção experimental por L. chagasi Figura 5: Quantidade de amastigotas por miligrama de tecido do baço e do fígado de camundongos submetidos a diferentes protocolos vacinais: Controle (C), Leish-Tec (LT), Leishmune (LM) e LBSap. A análise foi realizada 30 dias após o desafio experiental com L. chagasi XI
14 Mendonça, L.Z. Lista de diagrama e tabelas Lista de diagrama e tabelas Diagrama 1: Esquema do desenho experimental para avaliação de camundongos submetidos a diferentes protocolos vacinais: Controle (C), Leish-Tec (LT), Leishmune (LM) e LBSap. T0=Tempo antes da 1º imunização, T1=14 dias após a 3º imunização; T2=30 dias após o desafio com L. chagasi Tabela 1: Anticorpos monoclonais conjugados com fluorocromos utilizados para imunofenotipagem das populações celulares Tabela 2: Resumo dos principais resultados obtidos 14 dias após as 3 doses de imunização (T1), trinta dias após o desafio experimental com L. chagasi (T2), bem como a avaliação da carga parasitária por qpcr XII
15 Mendonça, L.Z. Lista de abreviaturas e siglas Lista de abreviaturas e siglas APC Aloficocianina BCG Bacillus Calmette-Guérin BSA Albumina sérica bovina C Grupo controle CD Cluster of differentiation CD14 Marcador de superfície celular de monócitos CD19 Marcador de superfície celular de linfócitos B CD21 Marcador de superfície celular de linfócitos B de cães CD21 Marcador de superfície celular de linfócitos B em cães CD3 Marcador de superfície celular de linfócitos T totais CD4 Marcador de superfície celular de linfócitos T auxiliares CD49b Marcador de superfície celular de células Natural Killer CD5 Marcador de superfície celular de linfócitos T totais em cães CD8 Marcador de superfície celular de linfócitos T citotóxicos de BSA de BSA e 0,5% de saponina DNA Deoxyribonucleic acid e.v. via endovenosa EDTA Ácido etilendiminotetraacético sal dissódico ELISA Enzyme linked immunosorbent assay FACS Fluorescence Activated Cell Sorter FITC Isotiocianato de fluoresceína FL1 Canal para leitura da Fluorescência do tipo 1 (FITC) FL3 Canal para leitura da Fluorescência do tipo 3 (PE-Cy5) FL4 Canal para leitura da Fluorescência do tipo 4 (APC) FML Fucose-manose ligant FSC Forward Scatter (Tamanho celular) GAPD Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase HEL Lisozima de Clara de Ovo i.p. via intraperitoneal IFN-γ Interferon gamma Ig Imunoglobulina IgE Imunoglobulina da classe E IgG Imunoglobulina da classe G IgG1 Imunoglobulina da subclasse G1 IgG2a Imunoglobulina da subclasse G2 IgG2b Imunoglobulina da subclasse G2 IgM Imunoglobulina da classe M IL Interleucina inos Enzima óxido nítrico sintase induzível LBSap antígeno de Leishmania braziliensis + saponina LC Leishmaniose cutânea XIII
16 Mendonça, L.Z. Lista de abreviaturas e siglas LDU Leishman Donovan Unit LVM Leishmaniose visceral murina LIT Liver Infusion Tryptose MAPA Ministério da Agricultura, LM Grupo Leishmune Pecuária e Abastecimento LT Grupo Leish-Tec MHC-II complexo de LV Leishmaniose visceral histocompatibilidade principal de classe LVC Leishmaniose visceral canina II LVH Leishmaniose visceral humana NK Células Natural Killer NO Óxido Nítrico PBS Tampão Fosfato Salínico PBS-W Tampão Fosfato Salínico com 0,5% de BSA e 0,1% de Azida sódica PCR Polymerase Chain Reaction PE-Cy5 Ficoeritrina-Cianina 5 rpm rotação por minuto s.c. via subcutânea Sb5 + N-metil glucamina pentavalente SSC Side Scatter (Granulosidade celular) T0 Tempo antes da imunização T1 Tempo 14 dias após a 3º dose de imunização T2 Tempo 30 dias após a infecção Th1 T helper 1 Th17 T helper 17 Th2 T helper 2 Th9 T helper 9 TLR2 Toll-like receptor 2 TNF-α Fator de Necrose Tumoral-alfa Treg Células T regulagoras WHO World Health Organization XIV
17 Mendonça, L.Z. Resumo Resumo É consenso que a estratégia mais racional para o controle da leishmaniose visceral, que tem como agente etiológico a Leishmania chagasi (sinonímia L. infantum), seria o emprego de uma vacina que proteja o cão impedindo o seu papel de reservatório doméstico do parasito. Assim, considerando o camundongo como modelo experimental amplamente utilizado em ensaios pré-clínicos vacinais anti-leishmania, é de extrema importância analisar, neste modelo, candidatos vacinais de forma pareada e simultânea. Neste sentido, este projeto avaliou um ensaio pré-clínico vacinal, para análise comparativa de aspectos relacionados a imunogenicidade e eficácia dos candidatos vacinais contra leishmaniose visceral, entre os quais: Leish-Tec (LT), Leishmune (LM) e vacina LBSap (composta de antígeno bruto de L. braziliensis e saponina). Dessa forma, camundongos BALB/c foram imunizados com três doses de cada vacina e, após trinta dias da última dose vacinal, os animais foram desafiados experimentalmente com promastigotas de L. chagasi. Trinta dias após o desafio, os animais foram submetidos a eutanásia. Nos tempos antes da 1 dose vacinal (T0), 14 dias após a 3 dose (T1) e antes da eutanásia (T2), amostras de sangue foram coletadas do plexo orbital para realização do leucograma e avaliação do perfil imunofenotípico, ex vivo, de leucócitos circulantes. O baço e o fígado foram coletados no tempo T2 para avaliação da carga parasitária pela técnica de PCR em tempo real. Os resultados obtidos indicam que todas as vacinas são incócuas e seguras para a administração. Dentre as principais alterações relacionadas ao estabelecimento de mecanismos imunoprotetores destaca-se o aumento dos níveis de células NK CD3 - CD49b + observado em T2 para os diferentes grupos vacinais (LT, LM, LBSap). Além disto, ao se avaliar a imunidade adaptativa, foi observado no grupo LT aumento de linfócitos T totais CD3 + em T2, que pode ser associado ao aumento da subpopulação de linfócitos T CD3 + CD4 + no mesmo período. De forma interessante, a imunização com vacina LBSap induziu aumento da população de linfócitos T totais CD3 + tanto após o protocolo vacinal (T1) como após o desafio experimental (T2). Este aumento relatado no grupo LBSap parece ser reflexo da expansão da população de linfócitos T CD4 + nos mesmos tempos (T1 e T2). Semelhantemente, o grupo LM apresentou este mesmo perfil de reposta imune com aumento de linfócitos T CD4 + tanto em T1 como em T2. Este perfil imunofenotípico parece ter favorecido o controle do parasitismo tecidual tanto no baço como no fígado para as diferentes vacinas avaliadas. Neste contexto, foi observada redução da carga parasitária esplênica de 36% (LT), 63% (LM) e 42% (LBSap). Além disto, a análise da carga parasitária hepática revelou redução do parasitismo de 48% (LT), 71% (LM) e 62% (LBSap). Estes resultados parecem indicar o estabelecimento de mecanismos imunoprotetores pelos diferentes imunobiológicos avaliados, compatível com a redução da carga parasitária no baço e figado de camundongos imunizados com as vacinas LT, LM e LBSap. Buscando ampliar a identificação de biomarcadores associados a indução de imunoproteção, será realizada como perspectiva a dosagem de imunoglobulinas anti-leishmania (IgG, IgG1, IgG2a e IgG2b), bem como a análise do perfil de citocinas. XV
18 Mendonça, L.Z. Abstract Abstract The most rational strategy to control visceral leishmaniasis, that presented Leishmania chagasi (syn. L. infantum) as etiological agent, would be the vaccine for protecting the dog and blocking the domestic parasite reservoir status. Thus, considering the experimental mouse model is widely used in anti-leishmania vaccine pre-clinical trials, it is extremely important to analyze, in this model, vaccine candidates in a simultaneous approach. In this sense, a vaccine pre-clinical trial was performed, including analysis of immunogenicity and protection levels, in different groups, as follows: Leish-Tec, Leishmune and LBSap (composed by L. braziliensis antigens plus saponin). Thus, BALB/c mice were inoculated with three doses of each vaccine and challenged with L. chagasi. Thirty days post-challenge all animals were submitted to euthanasia. At the time points before the first dose (T0), after third dose (T1; 14 days after the last dose) and 30 days after L. chagasi challenge (T2) the blood was collected in order to evaluate the hemogram and ex vivo immunophenotyping in whole blood leukocytes. The spleen and liver were collected at T2 for analyzing parasite load quantified by real time PCR. Results displayed that all vaccines are safe and innocuous to the administration in mice. Among the major changes related to the establishment of imunoprotetor mechanisms NK cells (CD3 - CD49b + ) presented increased levels at T2 in the different vaccine groups (LT, LM, LBSap). Furthermore, the induction of adaptive immunity was observed in LT group showing higher CD3 + T-lymphocytes at T2, which can be associated with CD3 + CD4 + T-subset at same time. Interestingly, LBSap immunizations induced higher CD3 + T-lymphocytes in both after vaccine protocol (T1) and experimental challenge (T2). This data would be associated in LBSap group to increased levels in the CD3 + CD4 + T-subsets at the same time (T1 and T2). Similarly, LM group presented the same immune profile, displaying increased levels in CD3 + CD4 + T-lymphocytes in both T1 and T2. This immunophenotypic profile seems to act in the spleen and liver parasitism control considering the different evaluated vaccines. In this context, the reduction in the spleen parasite load was 36% (LT), 63% (LM) and 42% (LBSap). Moreover, analysis in the liver parasite load demonstrated reduction of 48% (LT), 71% (LM) and 62% (LBSap). These results suggest the establishment of immunoprotection mechanisms in the different evaluated vaccines as related by control in the spleen and liver parasite burden considering LT, LM and LBSap immunized mice. Aiming to further analyze the additional biomarkers associated with immunoprotection, analyzes of anti-leishmania immunoglobulins (IgG, IgG1, IgG2a and IgG2b) and the cytokine profile will be performed as perspective. XVI
19 1. Introdução
20 Mendonça, L.Z. Introdução 1.1 Aspectos gerais relacionados à Leishmania e as leishmanioses A leishmaniose é a segunda mais importante protozoose do mundo, está entre as seis endemias de maior relevância e cerca de 350 milhões de pessoas correm risco de contrair a doença em 88 países do mundo, sendo 72 destes países em desenvolvimento. Atualmente, mais de 12 milhões de pessoas estão infectadas e a cada ano ocorrem aproximadamente 2 milhões de novos casos em todo mundo (Desjeux, 2004; WHO, 2012). A leishmaniose visceral (LV) é endêmica em 65 países, com incidência anual de casos, sendo que 90% dos mesmos estão concentrados na Índia, Nepal, Bangladesh e Brasil, país que concentra cerca de 90% dos casos do continente Americano (Desjeux, 2004). No Brasil, a forma visceral está presente em 21 estados (Harhay et al., 2011) e desde a década de 70 vem se observando a urbanização da doença e o aumento de sua incidência bem como o número de óbitos. Em 2011, foram confirmados casos de LV no país e 262 pessoas vieram a óbito devido a esta doença (Sinan/SVS/MS). Sendo assim, fica claro o caráter emergente/re-emergente desta doença no Brasil e no mundo. Os agentes etiológicos das leishmanioses são protozoários tripanossomatídeos do gênero Leishmania, descritos em 1903 por Ross. Atualmente, a Organização Mundial de Saúde divide as leishmanioses em quatro formas clínicas distintas: forma cutânea, forma mucocutânea, cutâneo-difusa e visceral. Admitem-se que há três espécies de Leishmania que causam a LV incluídas no subgênero Leishmania por Lainson & Shaw (1987). Estas espécies encontram-se agrupadas no complexo Donovani. Entre as espécies que fazem parte deste complexo está a Leishmania (Leishmania) donovani (Laveran & Mesnil,1903), Leishmania (L.) infantum (Nicolle, 1908) ambas do Velho Mundo e Leishmania (L.) chagasi do Novo Mundo. No continente americano Leishmania (L.) chagasi (Cunha et al., 1937) é o agente causador da leishmaniose visceral humana (LVH) e canina (LVC). Embora tenham nomes e origens geográficas diferentes, dados moleculares sugerem que L. (L.) infantum e L. (L.) chagasi sejam a mesma espécie (Maurício et al., 2000). As espécies causadoras da forma visceral são transmitidas por insetos do gênero Phlebotomus no velho mundo (África, Ásia e Europa) e pelo gênero Lutzomia no novo mundo (Américas). As fêmeas destes insetos fazem o repasto sanguíneo nos 2
21 Mendonça, L.Z. Introdução hospedeiros vertebrados e, dessa forma, injetam formas promastigotas metacíclicas em sua pele (Sacks, 1989). Estas formas promastigotas são fagocitadas por células residentes ou por células que são recrutadas para o local da infecção. Entretanto, somente nos macrófagos os parasitos conseguem sobreviver, diferenciando-se de promastigotas para amastigotas dentro do vacúolo parasitóforo. As formas amastigotas sofrem sucessivas divisões binárias simples longitudinal até ocorrer a ruptura do macrófago, quando estas formas são liberadas para o sangue ou fluido intersticial, podendo ser ingeridos pelas fêmeas de flebotomíneos durante o repasto sanguíneo. No intestino médio do hospedeiro invertebrado, as formas amastigotas são diferenciadas em formas promastigotas e através da metaciclogênese se transformam em promastigotas metacíclicos que ao serem injetadas no hospedeiro vertebrado, durante o repasto sanguíneo, concluem um novo ciclo (Sacks, 1989; Kaye et al., 2011). As espécies da forma visceral se propagam sistemicamente em macrófagos de órgãos internos como fígado, baço, linfonodo e medula óssea, causando uma série de alterações sistêmicas e locais (Kumar & Nylén, 2012). No homem a LV apresenta uma ampla diversidade clínica, podendo apresentar desde formas assintomáticas até formas sintomáticas com sinais sistêmicos como febre, anemia, esplenomegalia, hepatomegalia, perda de peso e hipergamaglobulinemia (Ashford, 2000). A redução no número de plaquetas pode causar hemorragias que pode favorecer a ocorrência de septicemia, além da queda do número de leucócitos que pode causar uma imunossupressão, propiciando infecções oportunistas. Caso a doença não seja devidamente tratada o paciente pode ir a óbito (Kaye & Scott, 2011; Kumar & Nylén, 2012). O diagnóstico da doença é complexo porque outras doenças como a malária, febre tifoide, tuberculose, dentre outras, podem compartilhar suas características clínicas e estar presentes juntamente com a LVH, havendo uma co-infecção. Além disto, a localização do parasito no baço, fígado, medula óssea e linfonodos dificulta o diagnóstico parasitológico direto (Singh et al., 2006). O padrão ouro para o diagnóstico é a demonstração do parasito (forma amastigota) em biópsia de tecido, porém, este procedimento necessita ser feito por um médico em um ambiente hospitalar e pode oferecer riscos ao paciente por ser um método invasivo (Sundar & Rai, 2002). Testes sorológicos, como a pesquisa de anticorpos anti-rk39, que é uma proteína recombinante 3
22 Mendonça, L.Z. Introdução de antígenos específicos de parasitos do complexo Donovani, juntamente com os sintomas clínicos podem indicar a presença da LVH e é muito utilizado nas áreas endêmicas (Sundar et al., 2002). As opções de tratamento para a LVH são limitadas e estão longe de serem satisfatórias. Todos os fármacos disponíveis devem ser administrados por via parenteral (exceto a miltefosina) e durante um longo período de tempo (geralmente 20 dias), além de serem potencialmente tóxicos. No Brasil, recomenda-se o tratamento da LVH, com a dose de 20mg/Kg/dia de antimoniato N-metil glucamina pentavalente (Sb 5+ ) por via endovenosa ou intramuscular por no mínimo 20 dias e no máximo 40 dias. O principal efeito colateral do Sb 5+ é decorrente da sua ação no aparelho cardiovascular e outras reações adversas também são observadas como insuficiência renal aguda, icterícia e pancreatite (Ministério da Saúde, 2006). Em nosso país o tratamento com Sb 5+ tem alcançado um bom índice de cura e existem poucos relatos de resistência. Entretanto, na Índia vem se observando uma grande resistência dos parasitos aos compostos de antimoniais (Singh et al., 2006). Vale ressaltar que se não houver tratamento, a pessoa infectada e sintomática pode evoluir para o óbito. Para conter o avanço da doença as medidas de controle são imprescindíveis. O principal objetivo é interromper a cadeia de transmissão do parasito através de um tripé de ações que incluem o diagnóstico precoce e tratamento dos casos humanos, eliminação do inseto vetor através de inseticidas piretróides de ação residual e eutanásia de cães que apresentam sorologia positiva (Tesh, 1995; Ministério da Saúde, 2006). Porém, estas medidas de controle são caras e não tem contribuído de forma efetiva na redução da incidência da doença. Neste sentido, vale ressaltar que os cães exercem importante papel na manutenção do parasito, sendo o principal reservatório doméstico da L. chagasi (Deane & Deane, 1962) e que os casos de LVC precedem a ocorrência de casos humanos. Além disso, é importante salientar que a infecção em cães tem sido mais prevalente do que no homem (Chagas et al., 1938; Deane, 1956; Almeida-Silva, 2002). Atualmente, a medida adotada pelos centros de zoonose quando se constata que o cão está com a sorologia positiva para a L. chagasi é o recolhimento deste animal e a sua eutanásia. Diferentes estudos demonstram que esta medida pode reduzir a incidência da LV em cães e em humanos (Magalhães et al., 1980; Ashford et al.,1993). Entretanto, o que se observa 4
23 Mendonça, L.Z. Introdução anualmente é o aumento da incidência da doença. Alguns autores atribuem este aumento a fatores como a baixa sensibilidade dos testes sorológicos, que podem não detectar cães com baixos níveis de imunoglobulinas anti-l. chagasi, mantendo assim o reservatório do parasito nas áreas endêmicas. Outra possibilidade é o potencial de coexistência de diferentes tipos epidemiológicos da LVH no Brasil com a existência de outros reservatórios (Biagi, 1953; Ashford et al., 1993; Machado Braga et al., 1998). Outro fator importante associado a dificuldade de eliminação do reservatório do parasito é o impacto social e emocional que a prática da eutanásia de cães soropositivos causa em seus donos, que muitas vezes os consideram como parte da família (Dantas- Torres, 2006). É comum em áreas endêmicas como em Belo Horizonte-MG, a prática terapêutica da LVC como rotina nas clínicas veterinárias. Estes tratamentos, quando realizados com produtos de uso humano, são proibidos pelo Ministério da Saúde de acordo com a portaria interministerial do Ministério da Saúde (n 1.426, de 11 de julho de 2008), pois colocam em risco os programas de controle da LV, expondo a população humana e canina ao risco de infecção. Até o momento não existe no mercado esquema terapêutico que seja capaz de promover a cura parasitológica em cães. Assim, diferentes estudos demonstram que estes animais podem até apresentar melhora clínica, mas o parasitismo na pele persiste e este cão continua sendo fonte de transmissão do parasito para o flebotomíneo. Além disso, é importante mencionar que este tratamento pode também selecionar cepas resistentes aos fármacos utilizados para o tratamento humano (Neogy et al., 1994; Noli & Auxilia, 2005; Saridomichelakis et al., 2005; Pasa et al., 2005; Vouldoukis et al., 2006; Ministério da Saúde, 2006). Desta forma, a melhor alternativa para combater a crescente expansão da doença seria uma vacina anti-lvc, que pode contribuir de forma efetiva nos programas de controle do Ministério da Saúde. Nos últimos anos, diversos pesquisadores têm buscado respostas para a prevenção da LVC, porém, até o momento ainda não há uma vacina comprovadamente eficaz para ser recomendada pelo Ministério da Saúde/Brasil nas campanhas de controle nacional (Gradoni, 2001; Mauel, 2002; Ministério da Saúde, 2006; Costa et al., 2011). 5
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