A fungicultura, além de contribuir para a manutenção do equilíbrio ecológico e diminuição dos impactos sobre o meio ambiente, é uma das melhores formas de eliminar os resíduos e convertê-los em produtos orgânicos de alto valor gastronômico e nutricional (López, 1995; Regés, 1999).
De acordo com Dias et al. (2003), o consumo de cogumelos no Brasil é muito baixo. A falta de tradição e o preço relativamente elevado dos cogumelos no mercado são fatores determinantes dessa realidade. Entretanto, houve um aumento na produção de cogumelos nas últimas décadas, mantendo como ponto estratégico para seu consumo a redução dos custos de produção e baixos preços para o consumidor.
Os relatos dos primeiros povos a consumir cogumelos foram dos egípcios, romanos e gregos, na antiguidade. Já, o cultivo de cogumelos como o shiitake teve seu início há 1500
anos a.C. na China (Chang e Miles, 1987). Assim como o cultivo de champignon iniciou-se no século XVI na França, e em períodos mais recentes o cultivo de fungos difundiu-se pelos Estados Unidos, Canadá, México, Argentina, Colômbia, Brasil e Chile; e na década de 50 o cultivo de cogumelos foi introduzido no Brasil pelos asiáticos na região Mogi das Cruzes (Abe, 2006), mas ainda não constitui commodity importante no país.
“Semente-inóculo”, spawn (em inglês), é o termo comumente utilizado pelos produtores de cogumelos no Brasil para se referir ao micélio do fungo desenvolvido em substratos como grãos e/ou serragens que são utilizados para iniciar o cultivo de cogumelos.
Na fungicultura, a elaboração da “semente-inóculo” é o primeiro passo para se iniciar o cultivo de uma espécie de cogumelo, assim como a produção e a qualidade das mudas são importantes para o processo de reflorestamento.
A “semente-inóculo” constitui a base para o cultivo comercial dos fungos comestíveis e sua elaboração e/ou obtenção é um dos principais problemas dos produtores comerciais de fungos (Guzmán et al., 1993). Para garantir a alta qualidade da “semente-inóculo” são necessárias condições estéreis e alto conhecimento do processo (Przybylowicz e Donoghue, 1990). Segundo Chang e Hayes (1978) a manutenção e produção de “semente-inóculo” de alta qualidade é o primeiro ponto crítico para o sucesso do cultivo de fungos comestíveis.
Para o preparo da “semente-inóculo” de diferentes espécies de cogumelos, pode-se utilizar uma grande variedade de substratos. Segundo Salmones et al. (1999), pode-se utilizar material lignocelulósico como palha de arroz, palha de trigo, resíduos de algodão,
Philippoussis et al. (2001) e Silva et al. (2007) testaram substratos de sabugo de milho, palha de milho e casca de cevada, e obtiveram uma rápida colonização de micélios consistentes de Pleurotus eryngii e P. sajor-caju. Já Pedra e Marino (2006), utilizaram serragem de casca de coco verde para o preparo de inóculo de P. ostreatus, obtendo melhor crescimento micelial quando a serragem foi suplementada com farelo de trigo e/ou de arroz.
A fungicultura é desenvolvida em diferentes países utilizando substratos de origem florestal e resíduos agroindustriais disponíveis localmente, considerando-se a espécie de cogumelo.
Na Amazônia Central existe uma grande diversidade de espécies florestais Vianez e Barbosa (2002) realizaram um estudo de alternativas de uso de resíduos gerados pela indústria madeireira e uma dessas alternativas foi o uso de resíduos para o cultivo de cogumelos. Pleurotus ostreatus e L. edodes foram cultivados em serragens de Maquira coriacea (Karsten) C.C. Berg (muiratinga), Simarouba amara Aubl. (marupá), Brosimum parinarioides Ducke (amapá), Anacardium sp. L. (cajuí) e Protium sp. Burm. (breu) e os melhores resultados foram obtidos com serragem de S. amara (Hanada, 2003).
Existe uma flexibilidade de uso de materiais na formulação de substratos para a produção de fungos comestíveis, sem que estes materiais alterem as características e qualidade das espécies (Royse e Sanchez, 2007). Assim, para a seleção do substrato, é
necessário conhecer os requerimentos para o melhor desenvolvimento do fungo e a disponibilidade do substrato.
Além das serragens de madeira foi testada a utilização de casca, polpa de café e grãos de sorgo para a elaboração do inóculo secundário de L. edodes, que foi inoculado em substratos de palha de cevada, sabugo de milho, farelo de arroz, brácteas da coroa de abacaxi, casca de café, bagaço e folhas de cana-de-açúcar avaliando a melhor eficiência biológica (Salmones et al., 1999; Morais et al., 2000; Eira et al., 2005).
Investigações sobre o uso de misturas de substratos vegetais, com leguminosas como: Guadua angustifólia Kunth, Leucaena leucocephala (Lam.) De Wit. e casca de arroz, no cultivo de L. edodes, forneceram indícios da melhor eficiência biológica (Sharma e Madan, 1993); também foi testado o uso de gramíneas como Pennisetum purpureum Schum. e Brachiaria sp. como substrato de P. ostreatus (Philippoussis et al., 2001; Donini et al., 2006; Bernardi et al., 2007). Na região Sul de Minas Gerais foram avaliados diferentes resíduos agrícolas disponíveis para o cultivo de P. sajor-caju e a palha de feijão foi considerado o melhor resíduo para a produção deste cogumelo (Dias et al., 2003). O uso da
serragem da casca de coco verde com suplementação de farelo de arroz e/ou trigo no cultivo de isolados de P. ostreatus foi favorável para a sua produção (Pedra e Marino, 2006).
Com relação aos substratos oriundos de madeiras amazônicas há grande carência de informações sobre os que melhor se adaptam ao processo de formação de “semente-inóculo” do cogumelo L. strigosus, de ocorrência natural na Amazônia. Esta pesquisa estabeleceu como prioridade identificar quais espécies madeireiras disponíveis na região possibilitam a formulação de substrato para a elaboração de “semente-inóculo” com potencial e uso para a produção deste cogumelo.
Kendrick (2000) define como fungos filamentosos termófilos, as espécies que apresentam temperatura mínima de crescimento acima de 20°C, máxima acima de 50°C, e temperatura ótima entre 35-50°C. Mswaka e Magan (1999), em estudos com basidiomicetos, determinaram três grupos baseados nas temperaturas ótima e máxima para o crescimento: (1) grupo de temperatura baixa com crescimento entre 25-30°C e sem crescimento acima de 37°C; (2) grupo intermediário com temperatura ótima entre 30-37°C sem crescimento a 45°C; e (3) grupo de temperatura alta com crescimento entre 37-40°C e sem crescimento a 55°C.
Lentinus strigosus é uma espécie exposta a grandes variações de temperatura (Castillo et al., 2004). Estudos de Vargas-Isla e Ishikawa (in press) indicam L. strigosus como uma espécie termófila com crescimento micelial ótimo na temperatura a 35°C.