http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982010000100014
Queima e aditivos químicos e bacterianos na ensilagem de cana-de-açúcar1
Gustavo Rezende SiqueiraI, II; Ricardo Andrade ReisII, III; Ruben Pablo Schocken-IturrinoII, III; Aureliano José Vieira PiresIII, IV; Thiago Fernandes BernardesV, Marcella de Toledo Piza RothII
IApta - Pólo Regional da Alta Mogiana. Av. Rui Barbosa, s/nº, Caixa Postal 35, CEP: 14.770-000, Colina,SP
IIFaculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias - Unesp - Campus de Jaboticabal, SP
IVDepartamento de Tecnologia Rural e Animal/UESB, Campus de Itapetinga,BA
VDepartamento de Zootecnia - UFRA
Palavras-chave: estabilidade aeróbia, fermentação, inoculantes, perdas, silagem
Key Words: aerobic stability, fermentation, inoculants, losses, silage
Um dos entraves à utilização de cana-de-açúcar na forma de capineira é o risco de fogo acidental. Após a queima, o canavial não pode ser mantido no campo, pois sofrerá deterioração e tornar-se-á impróprio para a alimentação animal. Além do risco de fogo, há várias justificativas para se ensilar a cana-de-açúcar: dificuldade logística de se estabelecer o corte diário, utilização na época das águas; facilidade operacional da propriedade; prevenção de sobra de um ano para outro, entre outras.
Nesse sentido, Bernardes et al. (2007) avaliaram a ensilagem da cana-de-açúcar crua e queimada e observaram elevação no teor de etanol e na população de leveduras nas silagens que passaram pelo processo de queima. Atribui-se a elevação desses parâmetros a possível recontaminação por leveduras decorrente da exudação do colmo após o processo de queima.
Segundo Rooke & Hatfield (2003), a rota metabólica predominante das leveduras é a piruvato descarboxilase acetaldeído e a subsequente redução do acetaldeído a etanol. De acordo com McDonald et al. (1991), essa rota fermentativa ocasiona perdas de 48,9% de matéria seca e 0,2% de energia. A pequena perda energética resulta da contabilização do etanol como fonte de energia. No entanto, nem todo etanol produzido estará presente na silagem no momento da alimentação dos animais. Pedroso et al. (2005) observaram redução da concentração do etanol com o aumento do tempo de armazenamento da silagem de 45 para 180 dias, possivelmente por a taxa de volatilização ter sido maior que a síntese nesse período.
De acordo com Nussio & Schmidt (2004), o principal foco dos estudos com ensilagem de cana-de-açúcar e a busca de aditivos que, associados à ensilagem, inibam a fermentação alcoólica dessa forragem com vistas à redução dessas perdas. Com este intuito, vários aditivos têm sido estudados na ensilagem de forrageiras em geral, entre eles, a ureia (Hill & Leaver, 2002); o NaOH (Castrillón et al., 1978); o benzoato de sódio (Warth, 1988); o Propionibacterium (Flores-Galarza et al., 1985) e o L. buchneri (Driehuis et al., 2001). O L. plantarum é o microrganismo mais utilizado na ensilagem de forrageiras tropicais e, segundo Pedroso et al. (2007), pode promover elevação das perdas, em razão do aumento da produção de ácido lático. Bravo-Martins et al. (2006) demonstraram que é o ácido lático é substrato da maioria das leveduras presentes na cana-de-açúcar.
Neste trabalho objetivou-se avaliar o efeito da queima e do tratamento com aditivos químicos (ureia, benzoato de sódio e NaOH) e com inoculantes microbiológicos (Propionibacterium acidipropionici + Lactobacillus plantarum e Lactobacillus buchneri) sobre as perdas na ensilagem da cana-de-açúcar nas fases de fermentação e no pós-abertura.
A cana-de-açúcar (Saccharum officinarum L.) utilizada foi o cultivar SP70-1143, proveniente da Usina Andrade Açúcar e Álcool, localizada no município de Pitangueiras, distrito de Ibitiuva, São Paulo. A colheita manual foi realizada no mês de outubro, quando a cana-de-açúcar estava apta para o quarto corte, com produção estimada de 80 t de matéria verde (MV)/ha aos 15 meses de crescimento vegetativo, com 16% de pol (% sacarose da cana-de-açúcar) e 35,3% de matéria seca (MS).
Utilizou-se o delineamento experimental inteiramente casualizado em esquema fatorial de 2 × 6, com os fatores: queima (com e sem) e aditivos (controle, ureia, benzoato de sódio, NaOH, P. acidipropionici + L. plantarum e L. buchneri), com três repetições.
A forragem foi cortada e transportada até as dependências da Unesp-Jaboticabal. No dia posterior ao corte, parte da cana-de-açúcar foi colocada em forma de pilhas e queimada. A cana-de-açúcar, crua e queimada, foi processada em picadora estacionária em partículas de 1 a 3 cm, sem sofrer despalhamento.
Foram avaliadas 12 silagens: seis de cana-de-açúcar crua e seis de cana-de-açúcar queimada, uma sem aditivo e cinco com 0,1% de benzoato de sódio, 1,5% de ureia, 1% de NaOH, P. acidipropionici + L.plantarum e L. buchneri em cada tipo de cana-de-açúcar.
Os microrganismos Propionibacterium acidi propionici (Cepa MS 01) e Lactobacillus plantarum (Cepa MA 18/50) utilizados são encontrados no inoculante comercial Propiolact® (PROP). O microrganismo Lactobacillus buchneri (Cepa NCIMB 40788) é encontrado no inoculante comercial LalsilCana® (BUCH). O P. acidipropionici e o L. plantarum foram aplicados na dose de 1,5 × 105 ufc/g de forragem e o L. buchneri na dose de 5 × 104 ufc/g de forragem. A ureia foi diluída em água e aplicada em solução de 35 L/t de forragem, o benzoato de sódio foi aplicado por meio de solução de 15 L/t e o NaOH foi utilizado em solução de 33,3%. Todos os inoculantes e aditivos químicos foram aplicados com base na matéria natural.
Como silos experimentais, foram utilizados tubos de PVC de 50 cm de altura e 10 cm de diâmetro, com tampas com válvulas de Bunsen para permitir o escape dos gases. No fundo dos silos, foi colocado 1,2 kg de areia seca, separada da forragem por uma tela e um tecido de náilon, para quantificação do efluente produzido.
A compactação da forragem picada foi realizada com auxílio de bastões de ferro, objetivando alcançar densidade de 650 kg de forragem verde/m3. Determinou-se o volume de cada silo experimental descontando-se o espaço ocupado pela areia e pesou-se a quantidade de forragem necessária para obter a densidade desejada. Após a compactação da forragem, os silos foram vedados com fita adesiva, pesados e armazenados. Decorridos 60 dias de fermentação, foram novamente pesados para determinação das perdas por gases e abertos.
Após a retirada da silagem, o conjunto silo, areia, tela e tecido de náilon foi pesado para quantificação do efluente produzido. A determinação da perda gasosa foi calculada pela seguinte fórmula:
PG = (PSI - PSF)/MSI × 100,
em que: PG = perda por gases (% MS); PSI = peso do silo no momento da ensilagem (kg); PSF = peso do silo no momento da abertura (kg); e MSI: matéria seca ensilada (quantidade de forragem em kg × % MS).
A determinação da produção de efluente foi calculada pela equação:
PE = (PSAF - PSAI)/MNI × 1000,
em que: PE: produção de efluente (kg de efluente/t de matéria verde ensilada), PSAF: peso do conjunto silo, areia, tela e náilon após a abertura (kg), PSAI: peso do conjunto silo, areia, tela e náilon antes da ensilagem (kg) e MNI: quantidade de forragem ensilada (kg).
A variação dos teores de matéria seca (VMS) foi calculada como a diferença em módulo da porcentagem de MS no momento da ensilagem e da porcentagem de MS na abertura.
Antes da ensilagem, após a aplicação dos inoculantes ou aditivos, a forragem foi amostrada três vezes em cada tratamento e cada amostra foi fragmentada ainda em duas subamostras. Uma subamostra foi destinada à quantificação da capacidade-tampão, segundo metodologia descrita por Playne & McDonald (1966), enquanto a outra foi pesada e levada para estufa de ventilação forçada a 55 ºC durante 72 horas.
Na abertura dos silos, após homogeneização da silagem, retiraram-se duas subamostras de cada silo. Uma das amostras coletadas foi preparada, segundo metodologia descrita por Kung Jr. et al. (1984), para determinação do pH, em potenciômetro (Silva & Queiroz, 2002) e nitrogênio amoniacal em relação ao nitrogênio total (N-NH3), conforme descrito por Chaney & Marbach (1962). A outra subamostra foi levada para estufa de ventilação forçada seguindo os mesmos procedimentos das subamostras colhidas antes da ensilagem. As amostras que foram levadas para estufa, colhidas antes da ensilagem e após a abertura dos silos, foram novamente pesadas, moídas em moinho de faca até as partículas atingirem menos de 1 mm e armazenadas em potes de plástico, para determinação da matéria seca segundo o método descrito por Silva & Queiroz (2002).
Após a abertura dos silos, amostras foram colocadas em baldes plásticos, que foram pesados e armazenados em câmara climática à temperatura de 25 ± 1 ºC, para avaliação da estabilidade aeróbia. As temperaturas das silagens após abertura foram obtidas a cada 12 horas durante cinco dias por meio de um termômetro inserido na massa de silagem contida nos baldes. A estabilidade aeróbia foi calculada como o tempo gasto em horas para a massa de forragem elevar em 1 ºC a temperatura acima da temperatura ambiente (Driehuis et al., 2001). Decorridos cinco dias de exposição aeróbia, os baldes com as amostras foram novamente pesados para determinação da recuperação de MS e as silagens foram amostradas para determinação dos teores de MS e uma amostra foi coletada para determinação dos valores de pH.
Os dados foram analisados estatisticamente pelos procedimentos da análise de variância e as médias comparadas pelo teste Tukey a 5% de significância, utilizando-se o programa de SAS (1999), versão 8.
A capacidade-tampão das forragens antes da ensilagem foi alterada (P<0,05) pelo efeito da queima, à exceção daquelas tratadas com ureia. Os maiores valores foram observados na cana-de-açúcar tratada com NaOH (Tabela 1). Bernardes et al. (2007) observaram redução na capacidade-tampão da cana-de-açúcar sem aditivo após a queima de 9,2 para 3,8 e.mg HCl/100g de MS.
O nitrogênio amoniacal em relação ao nitrogênio total (N-NH3) é associado à qualidade fermentativa da silagem, pois esse composto é proveniente da degradação da fração proteica pelos clostrídeos (McDonald et al., 1991). Na ensilagem da cana-de-açúcar, essa degradação é inibida pela rápida queda do pH, devido à baixa capacidade tampão e elevada presença de carboidratos solúveis. As silagens tratadas com ureia apresentaram N-NH3 superior às demais silagens (Tabela 1). Segundo Sundstol & Coxworth (1984), a ureia, na presença da enzima urease, é transformada em amônia, que, em contato com a água, transforma-se em hidróxido de amônio. Essa substância apresenta em sua constituição 29 a 30% de amônia (NH3), consequentemente, silagens tratadas com ureia têm N-NH3 superior ao das não-tratadas com esse aditivo. No entanto, ao se proceder à queima, possivelmente parte da enzima urease foi inativada, por isso, a cana-de-açúcar queimada e tratada com ureia resultou em silagens com menores valores de N-NH3.
A queima antes da ensilagem propiciou valores de pH inferiores (P<0,05), no entanto, a diferença de 0,1 unidade de pH é de pequena magnitude (Tabela 2). Diferenças estatísticas em relação à queima dentro de cada aditivo também foram observadas após a abertura, porém todas inferiores a 0,2 unidade de pH, o que não representa grandes variações.
Os maiores valores de pH foram observados nas silagens tratadas com NaOH, seguidas das aditivadas com ureia, tanto nas silagens de cana-de-açúcar crua quanto na cana queimada. Silagens tratadas com ureia apresentam transformação dessa fração em hidróxido de amônio, um composto alcalino que inibe a queda do pH. Hill & Leaver (2002), estudando a ensilagem da planta de trigo tratada com ureia (0, 2 e 4%), observaram elevação do pH de 3,87 para 4,07 e 4,28 com o aumento das doses.
O NaOH tem grande capacidade de elevar o pH, como observado para a cana-de-açúcar antes de ensilar. Além disso, a elevação da capacidade-tampão, propicia os maiores valores de pH após a abertura. No entanto, comparando-se a redução do pH das silagens controle (2,1 unidades de pH) com a redução das silagens tratadas com NaOH (7 unidades de pH), nas silagens tratadas com NaOH, ocorreu maior extensão de fermentação, pois o pH após a abertura é resultante do pH antes da ensilagem, associado à capacidade-tampão e modificado pelos ácidos orgânicos produzidos. Nessa condição, as silagens tratadas com NaOH tiveram maiores teores de ácido orgânicos, principalmente o lático, que tem a maior capacidade de redução do pH. Castrillón et al. (1978) trataram a cana-de-açúcar com 4% de NaOH na matéria seca e observaram que as silagens controle e tratadas apresentaram, respectivamente, 1,6 e 12,2% de ácido lático. Mesmo com essa alta produção de ácido lático, as silagens tratadas apresentaram pH de 4,41e as não-tratadas, 4,12.
As perdas por gases foram menores (P<0,05) nas silagens de cana-de-açúcar queimada e tratadas com NaOH ou L. buchneri (Tabela 3) e, entre as silagens de cana-de-açúcar crua, foram menores naquelas tratadas com NaOH, seguidas das silagens tratadas com benzoato, ureia e L. buchneri e não diferiram (P>0,05) entre si. O NaOH tem como objetivo tradicional de uso a hidrólise alcalina das frações fibrosas, no entanto foi um eficiente redutor de perdas por gases. Nos estudos de Castrillón et al. (1978) e Nieblas et al. (1982), a ensilagem da cana-de-açúcar tratada com NaOH reduziu o teor de etanol de aproximadamente 5% para menos que 1%. A produção de etanol está intimamente correlacionada às perdas por gases. Pedroso et al. (2005) observaram correlação de 0,89 entre etanol e perdas por gases. Segundo McDonald et al. (1991), a fermentação de carboidratos solúveis por leveduras durante a estocagem das silagens tem como produto o etanol e pode ser descrita pela seguinte equação:
Glicose + 2ADP + 2Pi → 2 Etanol + 2 CO2 + 2 ATP +2 H2O
A inclusão de NaOH, como mencionado, possivelmente propiciou aumento no teor de ácido lático, em decorrência do estímulo de desenvolvimento de bactérias homofermentativas. Essas bactérias são inibidas em pH abaixo de 3,8 (McDonald et al., 1991). Na ensilagem da cana-de-açúcar, segundo Evangelista et al. (2009), os valores de pH reduzem a valores inferiores a 3,8 em menos de três dias. Quando se acrescenta um aditivo, como o NaOH, que eleva os valores do pH e da capacidade-tampão iniciais, aumenta-se o tempo de atuação das bactérias homofermentativas, permitindo maior produção de ácido lático. No metabolismo de bactérias homofermentativas, a fermentação de glicose com síntese de ácido lático não gera produção de CO2. Pode-se inferir que a redução das perdas por gases foi resultado do aumento da população de bactérias homofermentativas, que consumiram com maior eficiência os carboidratos solúveis, reduzindo a atuação das leveduras.
O Lactobacillus buchneri, principalmente nas silagens de cana-de-açúcar queimada, mostrou-se eficiente em reduzir as perdas por gases. Esse microrganismo tem capacidade de converter ácido lático em ácido acético e 1,2 propanodiol em condições de anaerobiose, eficiência que é maior em pH baixo, próximo a 3,8 (Oude Elferink et al., 2001). Segundo Moon (1983), o ácido acético em pH inferior ao seu pKa, é um potente inibidor do desenvolvimento de leveduras.
Segundo McDonald et al. (1991), a fermentação de carboidratos solúveis por bactérias heterofermentativas produz 1 mol de CO2 para cada mol de glicose fermentada ou para cada 3 moles de frutose. Assim, a redução das perdas por gases pelo L. buchneri, mesmo sendo produtor de CO2, na sua fermentação deu-se principalmente pela inibição do desenvolvimento de leveduras que produzem o dobro ou seis vezes mais gases por mol de substrato.
P. acidipropionici possui o mesmo princípio teórico de atuação que L. buchneri e produz mais ácido propiônico. No entanto, esses microrganismos não foram eficientes na redução das perdas por gases. Pahlow et al. (2003), em extensa revisão sobre microbiologia de silagem, sugeriram que as bactérias do gênero Propionibacterium são eficientes no controle de leveduras desde que o pH da silagem seja superior a 4,5. Neste estudo, o pH final, aos 60 dias, das silagens tratadas com P. acidipropionici foi 3,55 e 3,66 nas silagens de cana-de-açúcar crua e queimada, respectivamente. Além do pH final, é interessante avaliar a taxa de redução do pH. No estudo realizado por Evangelista et al. (2009), observou-se queda do pH de silagens de cana-de-açúcar de 5,2 para 3,5 nos cinco primeiros dias de fermentação. Consequentemente, as bactérias P. acidipropionici provavelmente foram inibidas pela rápida queda do pH.
O fator queima elevou a produção de efluente de forma geral (Tabela 3) provavelmente ocorreu em virtude da redução ou até mesmo da eliminação da palhada pela queima, pois a presença da palha eleva o teor de matéria seca promove a absorção de líquidos. O NaOH destacou-se com inibidor da produção de efluente, tanto nas silagens de cana-de-açúcar crua quanto na cana queimada. Vale ressaltar ainda os altos valores observados neste estudo, 58,4 e 85,0 kg/tMV nas silagens de cana-de-açúcar crua e queimada, respectivamente, em comparação a outros trabalhos (Pedroso et al., 2005; Siqueira et al., 2007), como o de Pedroso et al. (2005), que observaram produção de efluente de 13,3 kg/tMV em silagens de cana-de-açúcar aos 90 dias de armazenagem. No entanto, esse fato pode ser explicado pelo processo de ensilagem realizado em silos experimentais de PVC. Neste estudo, foram utilizados bastões de ferro (material e métodos) na compactação da forragem e esses bastões apresentavam diâmetro próximo ao dos silos utilizados, consequentemente, esse fato propiciava compactação sobre toda a superfície do silo, não permitindo refluxo da forragem. Essa forma de compactação pode ter provocado maior dilaceramento das partículas ensiladas e aumentado a produção de efluente.
As silagens submetidas à queima apresentaram recuperação de MS média superior (P<0,05) à das silagens de cana-de-açúcar crua (Tabela 4). A utilização dos aditivos NaOH e L. buchneri elevou as recuperações de MS das silagens de cana-de-açúcar queimada em relação às produzidas com cana-de-açúcar crua e com os demais aditivos, que não apresentaram diferenças significativas.
No processo de queima, pode ocorrer transformação de sacarose em glicose e frutose, consequentemente, poderia ter ocorrido alteração no substrato disponível. Segundo McDonald et al. (1991), L. buchneri fermenta tanto sacarose quanto glicose e frutose. No entanto, a eficiência na fermentação de monossacarídeos (glicose e frutose) por esse microrganismo é maior que na de dissacarídeos (sacarose). Neste caso, a possível elevação da disponibilidade de monossacarídeos (glicose e frutose) estimulou o desenvolvimento do L. buchneri com consequente incremento na produção de acido acético, que segundo Moon (1983), é considerado inibidor de leveduras.
Em relação ao NaOH, dois fatores podem ter contribuído para elevação da recuperação de MS. O primeiro é a elevação do pH, que possibilita maior tempo de atuação de bactérias homofermentativas, já citado na anteriormente, o segundo, é a maior disponibilidade de substratos (glicose e frutose), visto que várias bactérias homofermentativas fermentam com baixa eficiência ou não fermentam sacarose (McDonald et al., 1991).
As perdas por gases (Tabela 3) nas silagens de cana-de-açúcar queimada foram numericamente maiores que nas silagens de cana-de-açúcar crua e a produção de efluente foi significativamente maior nas silagens de cana-de-açúcar queimada. No entanto, houve inversão de perdas, e as silagens de cana-de-açúcar queimada apresentaram maiores recuperação de MS (P<0,05). Esse fato pode ser correlacionado à variação da matéria seca (Tabela 4), que foram menores nas silagens de cana-de-açúcar queimada apresentaram menores VMS, entretanto, as silagens confeccionadas com cana-de-açúcar queimada já haviam sofrido redução nos teores de MS, devido às perdas inerentes ao processo de queima.
Houve diferença (P<0,05) entre a cana-de-açúcar crua e queimada antes da ensilagem. O processo de queima elimina a palha da cana-de-açúcar, material com alto teor de MS, reduzindo o teor de MS na cana-de-açúcar queimada (Tabela 5).
Entre os aditivos, não houve diferença estatística no teor MS (P>0,05) e, após a abertura dos silos, observou-se redução em todos os teores de MS (P<0,05). Excetuando as silagens tratadas com P. adicipropionici +L. plantarum ou ureia, todas as demais apresentaram maiores teores de MS quando a cana-de-açúcar foi queimada. Destacam-se os teores de MS das silagens tratadas com L. buchneri (crua e queimada) e das silagens de cana-de-açúcar queimada tratadas com NaOH. A redução nos teores de MS pode ser associada às perdas por gases e por efluente e à recuperação de MS.
Um fato interessante foi relatado por Driehuis et al. (2001) em estudo com silagens de gramíneas de boa qualidade como azevém-perene. Esses autores observaram maiores perdas de MS nas silagens inoculadas com L. buchneri em comparação à silagem controle, como constatado em silagens de trigo, milho e sorgo (Filya, 2003). Essa perda é associada à fermentação heterolática desse microrganismo, que, nestes estudos, foi comparada à de microrganismos homoláticos, como o Lactobacillus plantarum. No entanto, menores reduções dos teores de MS e maiores recuperações de MS na ensilagem da cana-de-açúcar foram observadas com a inoculação do L. buchneri, pois nesse caso as perdas estão associadas à fermentação por leveduras que provocam perdas de MS superiores às bactérias heterofermentativas. Em suma, na ensilagem de plantas em que a fermentação é controlada por bactérias homoláticas, a inclusão do L. buchneri promove redução da recuperação de MS, em silagens onde a fermentação é controlada por leveduras, ele pode atuar elevando a recuperação de MS.
Destaca-se como inibidor da elevação do pH a queima em relação às silagens de cana-de-açúcar crua (Tabela 6). Já em relação aos aditivos químicos, a menor variação no pH foi observada nas silagens tratadas com benzoato (0,05), seguidas daquelas tratadas com L. buchneri (0,18) e P. acidipropionici + L. plantarum (0,21). Segundo McDonald et al. (1991), o metabolismo do ácido lático pelos microrganismos aeróbios eleva o pH. Nesse sentido, as silagens que tiveram menores variações do pH foram mais estáveis, preservando com maior eficiência os substratos produzidos durante a fermentação.
O L. buchneri, propiciando elevação de ácido acético, o P. acidipropionici, de ácido propiônico, e o benzoato de sódio, têm como semelhança o aumento da produção de ácidos orgânicos na silagem. Esses ácidos orgânicos, em solução com pH inferior ao pKa, encontram-se não-dissociados, permitindo sua entrada por difusão passiva nas células das leveduras. No interior do microrganismo, o pH é por volta de 7,0, fazendo com que haja dissociação desses ácidos e liberação do íon H+, que é tóxico às leveduras. Éntão, é necessário às leveduras gastarem energia (ATP) para expulsar o H+, promovendo decréscimo no crescimento desses microrganismos e até mesmo a morte (Walker, 1998).
Ainda em relação a variação do pH, às silagens contendo L. buchneri ou benzoato de sódio, baseando-se em resultados encontrados na literatura (Driehuis et al., 1999 e Wooford et al., 2001) e com base nas perdas ocorridas durante a fermentação, acredita-se que houve efeito dos aditivos da forma citada anteriormente. Na silagem P. acidipropionici + L. plantarum, se fosse avaliado apenas a fase pós-abertura, a explicação seria com base no aumento do ácido propiônico. Entretanto, provavelmente acontecido é que as silagens tratadas com esse aditivo já se encontravam com baixo conteúdo de substratos, principalmente carboidratos solúveis, para permitir o desenvolvimento dos microrganismos aeróbios, pois sofreram elevadas perdas de matéria seca durante a fermentação.
Nas silagens de cana-de-açúcar queimada, os teores de MS após cinco dias de exposição (35,3%) foram mais próximos ao da abertura (34,1%) que nas silagens de cana-de-açúcar crua, 35,6 (abertura) e 40,5 (cinco dias de exposição). Para os aditivos, não foi encontrada diferença estatística (P>0,05) e a média geral foi de 37,9% (Tabela 7).
A recuperação de matéria seca no pós-abertura é definida pela intensidade metabólica de microrganismos aeróbios (Muck et al., 1991). Foram observadas, de maneira geral, maiores recuperações de MS nas silagens produzidas com cana-de-açúcar queimada. Não houve diferença estatística (P>0,05) entre silagens com aditivos e controle, contudo as silagens inoculadas com P. acidipropionici + L. plantarum apresentaram maior recuperação de MS, em razão da limitação de substratos pós-abertura, uma vez que essas silagens apresentaram extensas perdas de MS durante a fermentação.
As silagens tratadas com L. buchneri apresentaram recuperação de MS de 92,7 e 97,4% nas silagens de cana-de-açúcar crua e queimada, respectivamente. Acredita-se que, nas silagens produzidas com cana-de-açúcar queimada, o efeito do L. buchneri foi mais pronunciado, como discutido nas interpretações das perdas de gases e recuperação de matéria seca durante a fermentação. Possivelmente nessas silagens ocorreu maior produção de ácido acético, com consequente inibição de leveduras durante a exposição aeróbia. Driehuis et al. (1999) avaliaram a recuperação de MS no pós-abertura de silagens de milho tratadas ou não com L. buchneri e constataram elevação da recuperação de MS nas silagens inoculadas com L.buchneri. Além do efeito sobre a recuperação de MS, foram observadas neste estudo reduções da população de leveduras e maior manutenção do pH durante a exposição aeróbia nas silagens com L. buchneri.
A estabilidade aeróbia, medida como tempo para elevação da temperatura, foi maior nas silagens de cana-de-açúcar queimada (Tabela 8). Segundo Pahlow et al. (2003), ocorre sucessão de espécies de leveduras na transposição da fase anaeróbia (fermentação) para a fase aeróbia (pós-abertura). Mesmo durante a exposição aeróbia, ocorre sucessão de espécies, de modo que primeiro ocorre desenvolvimento de leveduras mesofílicas e, posteriormente, das termofílicas (Pitt et al., 1991) e a maioria das leveduras atuantes no pós-abertura coincide com as leveduras epifíticas, que existiam na planta antes da fase de anaerobiose, representadas pelos gêneros Cryptococcus, Rhodotorula, Candida, Hansenula (Pahlow et al., 2003). Possivelmente o fogo reduziu a população desses microrganismos, consequentemente o tempo necessário para a população de leveduras das silagens de cana-de-açúcar queimada equiparar-se à das silagens de cana-de-açúcar crua foi maior, resultando em maior tempo de estabilidade aeróbia.
A interpretação dos resultados de estabilidade aeróbia (h) considerando os aditivos utilizados deve ser realizada com cautela. Segundo o modelo de deterioração aeróbia de Muck et al. (1991), vários fatores afetam a estabilidade da silagem, entre eles, o pH, os teores de etanol, ácido acético, lático, carboidratos solúveis residuais e a população inicial de leveduras e de fungos filamentosos.
Os valores observados neste trabalho foram de 66, 72 e 78 horas nas silagens controle, tratadas com ureia e inoculadas com P. acidipropionici + L. plantarum, respectivamente. Pedroso et al. (2008) alertaram sobre a hipótese de que o etanol acima de certa concentração tem efeito fungicida e pode elevar a estabilidade das silagens.
O tratamento com benzoato propiciou média de 48 horas, valor inferior ao observado por Pedroso et al. (2008) de 72 horas na dose de 0,1%. A análise dos demais parâmetros avaliados no pós-abertura, como variação do pH e recuperação de MS indicam, que essas silagens deveriam ter estabilidade aeróbia (h) superior à observada. É possível que nessas silagens a temperatura não tenha sido o parâmetro mais indicado para caracterização da estabilidade aeróbia, visto que, nos trabalhos de Woolford et al. (2001) e Lättemand & Lingvall (1996), foi observado efeito do benzoato na redução da população de leveduras no pós-abertura.
Observou-se média de 76 horas nas silagens inoculadas com L. buchneri, resultado semelhante ao obtido por Pedroso et al. (2008), que relataram média de 78 horas nas silagens de cana-de-açúcar tratadas com L. buchneri, um microrganismo que aumenta a estabilidade aeróbia em silagens de milho (Ranjit & Kung Jr. 2000), sorgo (Filya, 2003), cana-de-açúcar (Pedroso et al., 2008), entre outras. Como anteriormente relatado, seu principal efeito é a elevação da produção de ácido acético, com consequente controle da população de leveduras.
A ensilagem da cana-de-açúcar sem aditivos crua ou queimada é uma estratégia que ocasiona elevadas perdas, que podem ser evitadas com o uso de aditivos. Entre os aditivos testados, o L. buchneri é o que atua de forma mais satisfatória nas fases de fermentação e pós-abertura de silagens de cana-de-açúcar crua ou queimada.
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